Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Халиков А.А.

ФГБОУ ВО «Башкирский государственный медицинский университет» Минздрава России

Кильдюшов Е.М.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Кузнецов К.О.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Рахматуллина Г.Р.

ООО «Приволжско-Уральское бюро судебно-медицинской экспертизы»

Определение давности наступления смерти с помощью посмертного микробиома: современный взгляд и подходы к решению проблемы

Авторы:

Халиков А.А., Кильдюшов Е.М., Кузнецов К.О., Рахматуллина Г.Р.

Подробнее об авторах

Прочитано: 1727 раз


Как цитировать:

Халиков А.А., Кильдюшов Е.М., Кузнецов К.О., Рахматуллина Г.Р. Определение давности наступления смерти с помощью посмертного микробиома: современный взгляд и подходы к решению проблемы. Судебно-медицинская экспертиза. 2022;65(3):49‑53.
Khalikov AA, Kildyushov EM, Kuznetsov KO, Rahmatullina GR. Estimation of time since death with the postmortem microbiome: a modern view and approaches to solving the problem. Forensic Medical Expertise. 2022;65(3):49‑53. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/sudmed20226503149

Рекомендуем статьи по данной теме:

Для сотрудников правоохранительных органов давность наступления смерти (ДНС) играет ключевую роль в уголовных расследованиях, особенно если на месте преступления отсутствовали свидетели. Точная оценка ДНС может подтвердить показания свидетелей, упростить расследование преступлений, служить важным доказательством в суде. Сегодня ДНС можно определить с помощью различных методов [1—3], каждый из которых может внести потенциально важную информацию, но в то же время имеет ограничения в применении в зависимости от ситуации.

На протяжении многих лет для оценки ДНС использовали судебно-медицинскую энтомологию, основанную на посмертном наблюдении за динамикой колонизации трупа насекомыми. В последние годы накоплены сведения, доказывающие, что микробные сообщества также имеют свою динамику и преемственность в посмертном периоде [4, 5], что может быть использовано в экспертной практике для определения ДНС.

Цель работы — обобщение и актуализация данных современных исследований, посвященных определению ДНС с использованием микроорганизмов, а также раскрытие перспектив для дальнейшего изучения вопроса.

Посмертный микробиом

Посмертный микробиом — сообщество про- и эукариотических микроорганизмов, которые появляются при разложении трупов людей и животных [6]. Его можно разделить на два компонента: танатомикробиом и эпинекротическое микробное сообщество. Первый состоит из микроорганизмов (бактерии и грибы), которые присутствуют в крови и внутренних органах (мозг, сердце, печень, легкие, селезенка); второй состоит из микроорганизмов, проживающих и/или присутствующих на поверхности (кожа, видимые слизистые оболочки, дистальный отдел прямой кишки) трупа. Танатомикробиом является более стабильным, так как в меньшей степени подвержен влиянию как биотических (насекомые, газы), так и абиотических (влажность, температура, pH) факторов [7].

После смерти человека вследствие прекращения работы иммунной системы микроорганизмы, которые присутствуют в пищеварительном тракте, способны вторгаться не только в окружающие органы, но и перемещаться по кровеносной и лимфатической системам, инициируя процесс разложения [8]. По мере развития гнилостной биотрансформации разнообразие микробных сообществ уменьшается, только несколько родов становятся доминирующими, наблюдается переход от аэробных бактерий (Bacteroidetes: Bacteroides и Parabacteroides; Firmicutes: Faecalibacterium, Phascolarctobacterium, Blautia и Lachnospiraceae incertae sedis) к анаэробным (Bacteroidetes: Clostridium; Firmicutes: Peptostreptococcus и Anaerosphaera; Gammaproteobacteria: Wohlfahrtiimonas, Ignatzschineria, Acinetobacter и Providencia) [9].

Попытки разработки способа определения ДНС с помощью микробиома

J.L. Metcalf и соавт. [10] проводили исследование, пытаясь определить так называемые микробные часы для оценки ДНС в эксперименте. Они разработали впечатляющую модель, которая точно отражала смену микробных сообществ на протяжении 48 сут гниения мышей. Следует отметить, что условия окружающей среды поддерживались стабильными, насекомые были удалены из опыта с целью снижения изменчивости окружающей среды. Контролируемая среда является неточной моделью, так как трупы людей нередко обнаруживают после длительного пребывания в неконтролируемых средах.

J.L. Pechal и соавт. [11] сообщили о последовательности бактериальных таксонов в ходе разложения свиней в неконтролируемой среде. Они построили статистическую модель с использованием метагеномной выборки, которая подтвердила последовательность изменений 95% микробиома в ходе гнилостной биотрансформации трупов свиней. Данное исследование продемонстрировало, что тщательный анализ данных может исключить ошибки, возникающие при действии факторов внешней среды. В более раннем исследовании J.L. Pechal и соавт. [12] привели сезонные изменения посмертного микробиома свиней в умеренной климатической зоне, что также является важным фактором, который может влиять на определение ДНС в условиях посмертного оледенения. D.O. Carter и соавт. [13] доказали, что почвенные микроорганизмы вносят существенный вклад в экосистему разложения трупов свиней, что также необходимо учитывать при диагностике ДНС.

K.L. Cobaugh и соавт. [14] и S.J. Finley и соавт. [15] сообщили, что микробные сообщества трупа и почвы сливаются в одну динамическую систему. Было доказано также, что микроорганизмы трупа могут обнаруживаться в близлежащей почве до года и, возможно, гораздо дольше. Важно отметить, что трупные микроорганизмы в почве характеризуются циклическим развитием, что может помочь в определении ДНС даже после длительного отсутствия трупа на месте преступления.

K.A. Hauther и соавт. [16] многократно брали образцы бактерий из толстой кишки 12 трупов во время их разложения в неконтролируемой среде. Провели количественный анализ бактериальных сообществ с использованием гена 16S рРНК для филогенетической идентификации. Идентифицировали три конкретных рода бактерий, которые продемонстрировали определенные перспективы в качестве маркеров определения ДНС. Похожие исследования проводили и другие авторы [17, 18]. По результатам мониторинга состояния сообщества протеолитиков во времени и пространстве доказана возможность использования протеолитиков как маркера для определения ДНС в позднем постмортальном периоде. Доказано также, что при изучении скелетированных трупов результаты энтомологического и микробиологического исследований являются перспективным направлением в области судебной медицины при установления ДНС.

H.R. Johnson и соавт. [19] исследовали бактериальные образцы из ноздрей и ушных каналов 17 трупов и проанализировали их с помощью секвенирования гена 16S рРНК. Выявили отрицательную корреляцию между разнообразием микрофлоры в ушных раковинах и сроком постмортального периода, а для микрофлоры носа была характерна противоположная картина.

Микробиом кожи человека персонализирован и уникален. Он напрямую зависит от контактов с различными объектами либо от конкретного места, где находился человек [20, 21]. После смерти персонализированные микробные сообщества заменяются другими, для которых более благоприятна среда разложения. Точные сроки такой замены неизвестны, но имеются исследования, в которых сообщается о первых 48 ч после смерти, если труп изолирован от действия факторов окружающей среды [22, 23]. В большинстве исследований, посвященных изучению посмертной динамики микробиома для определения ДНС, которые были приведены ранее, трупы размещали на открытом пространстве, что, вероятно, способствовало появлению другого микробного сообщества и более быстрому разложению [24]. Таким образом, учитывая этот факт, можно сделать вывод, что «микробные часы» можно применить до 48 ч после смерти в случае обнаружения трупа в закрытом пространстве.

Факторы, влияющие на посмертный микробиом, и их анализ

Температура

Температура окружающей среды влияет на состав посмертного микробиома как качественно, так и количественно. Различные микроорганизмы имеют оптимумы своего роста, следовательно, численность и состав микроорганизмов во внутренних органах зависят от температуры трупа, которая играет важную роль в оценке ДНС [25]. Для высокой температуры характерна повышенная скорость разложения трупа в результате усиленной активности микробных ферментов — протеаз и фосфодиэстераз [26]. Следовательно, температура окружающей среды является фактором, который необходимо учитывать при оценке ДНС с помощью посмертного микробиома.

pH

Человеческий труп претерпевает множество физиологических изменений вследствие лизиса клеток, включая изменение pH, которое играет важную роль в определении численности и состава посмертного микробиома. A.E. Donaldson и соавт. [27] доказали, что pH трупа составляет в среднем 5,1, что способствует росту ацидофильной флоры. Дополнительный фактор, снижающий pH, — выделение гнилостных газов [28]. Значимым для оценки ДНС является выделение ацидофильной бактерии Methyloferula stellate [4]. Кислая среда также способствует росту многих липофильных комменсалов на коже: Propionibacterium acnes, сем. Malassezia [29]. Ацидофилы синтезируют ферменты: амилазы, протеазы, лигазы, целлюлазы, ксиланазы, альфа-глюкозидазы, эндоглюканазы и эстеразы, которые стабильны при низком pH, что можно использовать для определения ДНС [30]. Напротив, в эксперименте с моделированием разложения скелетных мышц сообщалось, что продукты распада изменяли почвенную среду на щелочную [31]. Данный фактор является неотъемлемым в изучении посмертного микробиома и обязательно должен быть учтен в последующих исследованиях.

Влажность

Труп разлагается быстрее при повышенной влажности, чем в холодных и сухих местах, поэтому данный фактор влияет на микробное сообщество. Относительная влажность оказывает большое влияние на терморегуляцию и кровообращение человеческого тела [32]. Большинству микроорганизмов для роста требуется 60% относительной влажности, но некоторые виды способны выживать при менее 20%, однако низкая температура и влажность ограничивают их рост [33]. Бактериальное сообщество кожи обладает высокой устойчивостью к влажности и другим экологическим факторам [7], следовательно, они могут являться более точным маркером для определения ДНС.

Употребление антибиотиков и других лекарственных средств

Длительное использование антибиотиков изменяет комменсальную микрофлору человеческого организма, дисбиотический микробиом не выполняет необходимые функции: например, участие в пищеварении, выработку витаминов и защиту от патогенов [34]. Некоторые антибиотикорезистентные микроорганизмы способны колонизировать кишечник и изменять его нормальную микрофлору [35]. A.V. Vila и соавт. [36] показали, что применение слабительных средств снижает содержание бифидобактерий в кишечнике и повышает количество бактероидов. Таким образом, употребление лекарственных средств изменяет нормальную микрофлору человеческого тела. Исследование более 1000 неантибиотических препаратов показало, что 240 (24%) из них подавляют по крайней мере один комменсальный штамм микрофлоры кишечника [37]. Интересно отметить, что род Clostridium превалирует в посмертном микробиоме при наступлении смерти от передозировки наркотическими средствами [38]. Таким образом, при определении ДНС с помощью микробиома по возможности необходимо учитывать факт употребления антибиотиков и/или иных лекарственных средств незадолго до смерти.

Факторы индивидуальности

На процесс разложения человеческого тела влияет физическое состояние человека. Труп с большим количеством жира более устойчив к процессу деградации, тем не менее наличие большого количества жира создает питательную среду для роста разлагающих микроорганизмов. В связи с этим процесс разложения трупов с излишним количеством жира начинается стремительно, но процесс скелетирования таких тел занимает больше времени [39]. C.R. Bell и соавт. [40] провели интересное исследование и выявили преобладание Streptococcus sp. в сердечной мышце у мужчин, в то время, когда у женщин преобладали Clostridium sp. и Pseudomonas sp. Отсюда появляется новый вопрос о половых различиях в посмертном микробиоме. Таким образом, необходимо более подробно изучить влияние факторов индивидуальности на посмертный микробиом, прежде чем уверенно указывать ДНС.

Заключение

Исследование посмертного микробиома — относительно новый, стремительно развивающийся инструмент с потенциальной пользой для судебной медицины. Оценка времени, прошедшего с момента смерти, на основании посмертного микробиома имеет большой потенциал для точного определения ДНС, однако у всех предложенных на сегодняшний день методов есть ограничения. Динамика изменения микробных сообществ вследствие влияния множества внешних и внутренних факторов значительно усложняет процесс интерпретации результатов. Смена микробных сообществ в человеческом трупе показала многообещающие результаты для оценки ДНС, но в настоящее время отсутствуют доказательства повторяемости такой преемственности в различных географических и экологических условиях. Актуально проведение новых масштабных исследований с учетом всех факторов, которые могли бы повлиять на посмертный микробиом.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Индиаминов С.И., Жуманов З.Э., Блинова С.А. Проблемы установления давности наступления смерти. Судебно-медицинская экспертиза. 2020;63(6):45-50.  https://doi.org/10.17116/sudmed20206306145
  2. Кильдюшов Е.М., Ермакова Ю. В., Туманов Э. В., Кузнецова Г.С. Диагностика давности наступления смерти в позднем посмертном периоде в судебно-медицинской практике (обзор литературы). Судебная медицина. 2018;4(1):34-38.  https://doi.org/10.19048/2411-8729-2018-4-1-34-38
  3. Халиков А.А., Канзафарова Г.А., Поздеев А.Р., Кузнецов К.О. Изучение оптической плотности перикардиальной жидкости трупов при различных типах танатогенеза. Современные проблемы науки и образования. 2021.(2). https://doi.org/10.17513/spno.30656
  4. Javan GT, Finley SJ, Smith T, Miller J, Wilkinson JE. Cadaver Thanatomicrobiome Signatures: The Ubiquitous Nature of Clostridium Species in Human Decomposition. Front Microbiol. 2017;30(8):2096. https://doi.org/10.3389/fmicb.2017.02096
  5. Metcalf JL, Xu ZZ, Bouslimani A, Dorrestein P, Carter DO, Knight R. Microbiome Tools for Forensic Science. Trends Biotechnol. 2017;35(9):814-823.  https://doi.org/10.1016/j.tibtech.2017.03.006
  6. Oliveira M, Amorim A. Microbial forensics: new breakthroughs and future prospects. Appl Microbiol Biotechnol. 2018;102(24):10377-10391. https://doi.org/10.1007/s00253-018-9414-6
  7. Javan GT, Finley SJ, Can I, Wilkinson JE, Hanson JD, Tarone AM. Human Thanatomicrobiome Succession and Time Since Death. Sci Rep. 2016;6:29598. https://doi.org/10.1038/srep29598
  8. Carter DO, Tomberlin JK, Benbow EM, Metcalf JL. Forensic Microbiology. New York City: John Wiley & Sons. 2017.
  9. DeBruyn JM, Hauther KA. Postmortem succession of gut microbial communities in deceased human subjects. PeerJ. 2017;5:e3437. https://doi.org/10.7717/peerj.3437
  10. Metcalf JL, Wegener Parfrey L, Gonzalez A, Lauber CL, Knights D, Ackermann G, Humphrey GC, Gebert MJ, Van Treuren W, Berg-Lyons D, Keepers K, Guo Y, Bullard J, Fierer N, Carter DO, Knight R. A microbial clock provides an accurate estimate of the postmortem interval in a mouse model system. Elife. 2013;2:e01104. https://doi.org/10.7554/eLife.01104
  11. Pechal JL, Crippen TL, Benbow ME, Tarone AM, Dowd S, Tomberlin JK. The potential use of bacterial community succession in forensics as described by high throughput metagenomic sequencing. Int J Legal Med. 2014;128(1):193-205.  https://doi.org/10.1007/s00414-013-0872-1
  12. Pechal JL, Crippen TL, Tarone AM, Lewis AJ, Tomberlin JK, Benbow ME. Microbial community functional change during vertebrate carrion decomposition. PLoS One. 2013;8(11):e79035. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0079035
  13. Carter DO, Metcalf JL, Bibat A, Knight R. Seasonal variation of postmortem microbial communities. Forensic Sci Med Pathol. 2015;11(2):202-207.  https://doi.org/10.1007/s12024-015-9667-7
  14. Cobaugh KL, Schaeffer SM, DeBruyn JM. Functional and Structural Succession of Soil Microbial Communities below Decomposing Human Cadavers. PLoS One. 2015;10(6):e0130201. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0130201
  15. Finley SJ, Pechal JL, Benbow ME, Robertson BK, Javan GT. Microbial Signatures of Cadaver Gravesoil During Decomposition. Microb Ecol. 2016;71(3):524-529.  https://doi.org/10.1007/s00248-015-0725-1
  16. Hauther KA, Cobaugh KL, Jantz LM, Sparer TE, DeBruyn JM. Estimating Time Since Death from Postmortem Human Gut Microbial Communities. J Forensic Sci. 2015;60(5):1234-1240. https://doi.org/10.1111/1556-4029.12828
  17. Приходько А.Н., Лаврукова О.С., Лябзина С.Н., Сидорова Н.А., Попов В.Л. Использование микробно-энтомологических данных для установления давности наступления смерти. Судебно-медицинская экспертиза. 2018;61(6):52-56.  https://doi.org/10.17116/sudmed20186106152
  18. Сидорова Н.А., Попов В.Л., Лаврукова О.С. Перспективы молекулярно-генетической поддержки исследований протеолитиков в составе некробиома. Судебно-медицинская экспертиза. 2021;64(2):32-36.  https://doi.org/10.17116/sudmed20216402132
  19. Johnson HR, Trinidad DD, Guzman S, Khan Z, Parziale JV, DeBruyn JM, Lents NH. A Machine Learning Approach for Using the Postmortem Skin Microbiome to Estimate the Postmortem Interval. PLoS One. 2016;11(12):e0167370. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0167370
  20. Lax S, Hampton-Marcell JT, Gibbons SM, Colares GB, Smith D, Eisen JA, Gilbert JA. Forensic analysis of the microbiome of phones and shoes. Microbiome. 2015;3:21.  https://doi.org/10.1186/s40168-015-0082-9
  21. Meadow JF, Altrichter AE, Kembel SW, Moriyama M, O’Connor TK, Womack AM, Brown GZ, Green JL, Bohannan BJ. Bacterial communities on classroom surfaces vary with human contact. Microbiome. 2014;2(1):7.  https://doi.org/10.1186/2049-2618-2-7
  22. Pechal JL, Schmidt CJ, Jordan HR, Benbow ME. A large-scale survey of the postmortem human microbiome, and its potential to provide insight into the living health condition. Sci Rep. 2018;8:5724. https://doi.org/10.1038/s41598-018-23989-w
  23. Kodama WA, Xu Z, Metcalf JL, Song SJ, Harrison N, Knight R, Carter DO, Happy CB. Trace evidence potential in postmortem skin microbiomes: from death scene to morgue. J Forensic Sciences. 2019;64(3):791-798.  https://doi.org/10.1111/1556-4029.13949
  24. Lauber CL, Metcalf JL, Keepers K, Ackermann G, Carter DO, Knight R. Vertebrate decomposition is accelerated by soil microbes. Appl Environ Microbiol. 2014;80(16):4920-4929. https://doi.org/10.1128/AEM.00957-14
  25. Lutz H, Vangelatos A, Gottel N, Speed E, Osculati A, Visona S, Finley SJ, Tuomisto S, Karhunen P, Gilbert JA, Javan GT. Manner of death and demographic effects on microbial community composition in organs of the human cadaver. BioRxiv. 2019. [Preprint]. https://doi.org/10.1101/752576
  26. Carter DO, Yellowlees D, Tibbett M. Temperature affects microbial decomposition of cadavers (Rattus rattus) in contrasting soils. Appl Soil Ecol. 2008;40:129-137.  https://doi.org/10.1016/j.apsoil.2008.03.010
  27. Donaldson AE, Lamont IL. Biochemistry changes that occurafter death: potential markers for determining post-mortem interval. PLoS One. 2013;8:e82011. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0082011
  28. Gill JR, Landi K. Putrefactive rigor: apparent rigor mortis due to gas distension. Am J Forensic Med Pathol. 2011;32:242-244.  https://doi.org/10.1097/PAF.0b013e3181dd17b9
  29. Barton W, O’Sullivan O, Cotter PD. Metabolic phenotyping of the human microbiome. F1000Res. 2019;8:1956. https://doi.org/10.12688/f1000research.19481.1
  30. Sharma A, Kawarabayasi Y, Satyanarayana T. Acidophilic bacteria and archaea: acid stable biocatalysts and their potential applications. Extremophiles. 2012;16:1-19.  https://doi.org/10.1007/s00792-011-0402-3
  31. Haslam TCF, Tibbett M. Soils of contrasting pH affect the decomposition of buried mammalian (Ovis aries) skeletal muscle tissue. J Forensic Sci. 2009;54:900-904.  https://doi.org/10.1111/j.1556-4029.2009.01070.x
  32. Muhamed AMC, Atkins K, Stannard SR, Mündel T, Thompson MW The effects of a systematic increase in relative humidity on thermoregulatory and circulatory responses during prolonged running exercise in the heat. Temperature. 2016;3:455-464.  https://doi.org/10.1080/23328940.2016.1182669
  33. Jordan HR, Tomberlin JK Abiotic and biotic factors regulating inter-kingdom engagement between insects and microbe activity on vertebrate remains. Insects. 2017;8:54.  https://doi.org/10.3390/insects8020054
  34. Langdon A, Crook N, Dantas G The effects of antibiotics on themicrobiome throughout development and alternative approaches for therapeutic modulation. Genom Med. 2016;8:39.  https://doi.org/10.1186/s13073-016-0294-z
  35. Nogueira T, David PHC, Pothier J. Antibiotics as both friends and foes of the human gut microbiome: the microbial community approach. Drug Dev Res. 2019;80:86-97.  https://doi.org/10.1002/ddr.21466
  36. Vila AV, Collij V, Sanna S, Sinha T, Imhann F, Bourgonje AR, Mujagic Z, Jonkers DMAE, Masclee AAM, Fu J, Kurilshikov A, Wijmenga C, Zhernakova A, Weersma RK. Impact of commonly used drugs on the composition and metabolic function of the gut microbiota. Nat Commun. 2020;11:362.  https://doi.org/10.1038/s41467-019-14177-z
  37. Maier L, Pruteanu M, Kuhn M, Zeller G, Telzerow A, Anderson EE, Brochado AR, Fernandez KC, Dose H, Mori H, Patil KR, Bork P, Typas A. Extensive impact of non-antibiotic drugs on human gut bacteria. Nature. 2018;555:623-628.  https://doi.org/10.1038/nature25979
  38. Brackett E. Thanatomicrobiome signatures in drug overdose cases. Thesis presented to the Honors College of Middle Tennessee State University. Knoxville. 2018. https://jewlscholar.mtsu.edu/bitstream/handle/mtsu/5596/BRACKETT%20Final%20Thesis.pdf?sequence=1&isAllowed=y
  39. Hau TC, Hamzah NH, Lian HH, Hamzah SPAA. Decomposition process and post mortem changes: review. Sains Malaysiana. 2014;43:1873-1882.
  40. Bell CR, Wilkinson JE, Robertson BK, Javan GT. Sex-related differences in the thanatomicrobiome in postmortem heart samples using bacterial gene regions V1-2 and V4. Lett Appl Microbiol. 2018;67:144-153.  https://doi.org/10.1111/lam.13005

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.