Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Клинышкова Т.В.

ФГБОУ ВО «Омский государственный медицинский университет» Минздрава России

Стратегии цервикального скрининга: современный взгляд

Авторы:

Клинышкова Т.В.

Подробнее об авторах

Прочитано: 2539 раз


Как цитировать:

Клинышкова Т.В. Стратегии цервикального скрининга: современный взгляд. Российский вестник акушера-гинеколога. 2023;23(4):20‑26.
Klinyshkova TV. Cervical screening strategies: a modern perspective. Russian Bulletin of Obstetrician-Gynecologist. 2023;23(4):20‑26. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/rosakush20232304120

Введение

По оценкам ВОЗ, рак является одной из ведущих причин смерти людей в мире, которая в 2020 г. унесла жизни почти 10 млн человек, или почти каждого шестого умершего [1]. Приблизительно 1/3 составляют онкологические заболевания, ассоциированные с инфекционными агентами, включая вирус гепатита и вирус папилломы человека (ВПЧ), являющийся причиной цервикального рака.

По данным ВОЗ, рак шейки матки (РШМ) является четвертым по распространенности видом злокачественных новообразований у женщин во всем мире после рака молочной железы, колоректального рака и рака легких. До 570 тыс. новых случаев РШМ и 311 тыс. смертей, причиной которых был РШМ, зафиксировано в 2018 г. [2]. В 2020 г. было зарегистрировано 604 тыс. новых случаев заболевания и 342 тыс. случаев смерти от РШМ [3]. РШМ является вторым по распространенности видом рака и второй причиной смерти от рака среди женщин репродуктивного возраста из 185 обследованных стран. В Глобальной стратегии по ускорению ликвидации РШМ как проблемы общественного здравоохранения, принятой Всемирной ассамблеей здравоохранения в 2020 г., рекомендуется применять комплексный подход к профилактике РШМ и борьбе с ним. Ликвидация РШМ была определена как достижение порогового значения, составляющего менее 4 случаев заболевания на 100 тыс. женщин в год. Для достижения этого порогового значения к концу XXI века ВОЗ наметила целевые показатели «90—70—90», которые должны быть обеспечены к 2030 г. и стабильно поддерживаться впоследствии: 90% девочек к 15 годам должны быть вакцинированы против ВПЧ; 70% женщин должны пройти скрининг на основе высокоэффективного теста; 90% нуждающихся в лечении женщин (с предраком и инвазивным раком) получить соответствующее лечение. Реализация этой глобальной стратегии может предотвратить более 74 млн новых случаев РШМ и более 62 млн смертей от РШМ в ближайшие 100 лет [4].

Заболеваемость РШМ на протяжении последних лет находится на второй позиции после рака тела матки в структуре рака гениталий в стране, в 2020 г. она составила 19,75 на 100 тыс. женщин [5, 6]. Для сравнения: заболеваемость РШМ в мире составляет 13,1 на 100 тыс. женщин и широко варьирует в разных странах в диапазоне от 2 до 75 на 100 тыс. женщин [2].

В последние годы происходят изменения в отношении стратегии цервикального скрининга, разработанного с целью усовершенствования вторичной профилактики РШМ. Учитывая роль ВПЧ в канцерогенезе и актуальность выявления цервикальной папилломавирусной инфекции, в ряде стран с 2016 по 2017 г. произошел переход на организованный первичный ВПЧ-скрининг (ряд европейских стран, Австралия) либо ко-тестирование (исследование на ВПЧ+цитология) (Германия, США) [7]. Большие рандомизированные исследования демонстрируют высокую эффективность ВПЧ-скрининга для диагностики предрака шейки матки [8—13]. Преимуществом для ВПЧ-теста является также возможность самозабора образцов в отличие от цитологического исследования, что также позволяет расширить охват скринингом [10, 11]. Полагают, что высокая приверженность пациенток к самостоятельному взятию образцов ДНК ВПЧ может повысить численность женщин, участвующих в программах цервикального скрининга [14]. В стадии активного изучения находятся вопросы использования ряда тестов на основе различных методов идентификации ВПЧ в образцах, полученных посредством самозабора, в сравнении с клинически собранными образцами [15, 16]. Последний систематический обзор и метаанализ [15] (2022 г.) посвящены оценке точности нового поколения тестов на ВПЧ, основанных на ПЦР ВПЧ (GP5+/6+, SPF10, non GP5+/6+ PCR), в моче в сравнении с клинически собранными образцами для выявления CIN2+. На основании полученных данных, по мнению H. Cho и соавт. [16], мочевой тест на ВПЧ может стать достойным альтернативным инструментом скрининга для выявления CIN.

Цитологический скрининг

Цитологический метод исследования длительное время оставался единственным вариантом цервикального скрининга. Недостаточная эффективность оппортунистического цитологического скрининга в государственной системе здравоохранения негативно влияла на показатели заболеваемости и запущенности РШМ в различных регионах РФ [5, 6, 17, 18]. Отмечалась тенденция к росту заболеваемости РШМ, а также «омоложение» РШМ, что подтверждалось темпами прироста заболевания среди пациенток репродуктивного возраста. В соответствии с Федеральными клиническими рекомендациями (2020 г.) в качестве цервикального скрининга используются два вида тестирования: цитологическое исследование микропрепарата мазка с поверхности эктоцервикса у всех женщин в возрасте от 21 до 65 лет с интервалом 3 года и молекулярно-биологическое исследование отделяемого из цервикального канала на всю группу ВПЧ высокого риска (ВПЧ ВР) (не менее 12 типов) — с 30 лет [19].

Традиционная (Pap-тест) и жидкостная разновидности цитологического метода имеют различный баланс преимуществ и недостатков. Эффективность традиционной цитологии продолжает обсуждаться, включая вопросы цитолого-гистологического соответствия [20—23]. В 2017 г. опубликованы рекомендации Американского общества цитопатологов (ASC) по цервикальной цитолого-гистологической корреляции (СНС). По данным A. Gupta и соавт. [21], анализ соответствия цитологических заключений гистологическим результатам на основании рекомендаций ASC (341 биопсия шейки матки с соответствующим мазком по Папаниколау) позволил установить совпадение данных в 73% наблюдений. В остальных наблюдениях имелись как значительные расхождения (6,4%), так и незначительные расхождения данных цитологии с гистологическим результатом (20,5%) [21]. Предпринятое в РФ ретроспективное исследование цитолого-гистологического соответствия (2022 г.) на основании СНС (n=273) показало совпадение данных в 57,9% случаев. Значительные и незначительные расхождения данных цитологии (Pap-тест) и гистологии составили 7,6 и 34,1% соответственно [22]. Все перечисленное указывает на несовпадение цитологических данных (Pap-тест) по различным причинам в 1/3 наблюдений в сравнении с верифицирующим методом.

Более информативная жидкостная цитология (Liquid-based cytology, LBC) позволяет идентифицировать не только клеточный состав экзо- и эндоцервикса по системе Бетесда (NILM — негативный в отношении интраэпителиального поражения и рака, ASCUS — атипические клетки многослойного плоского эпителия неясного значения, LSIL — низкая степень интраэпителиального поражения, HSIL — высокая степень интраэпителиального поражения, AGC — атипические железистые клетки), но и проводить ВПЧ-тест, а также оценку экспрессии белков p16/Ki67. В крупном исследовании M. Trzeszcz и соавт. [23]. были продемонстрированы результаты комплексного скрининга 30 066 образцов, при этом комплекс исследований включал LBC, ВПЧ-тест 14 типов ВПЧ ВР, тест двойного окрашивания на p16/Ki67 в рамках оппортунистического цервикального скрининга [23]. Цитологические заключения NILM/ASC-US/LSIL/ASC-H/HSIL/AGC отмечались в 93,9/3,4/2,0/0,22/0,24/0,11% соответственно. Данные LBC коррелировали с результатами ВПЧ-теста. Так, если при NILM положительный ВПЧ-тест отмечался у 8,4%, то при ASC-US — в 48,9%, LSIL — в 77,2%, ASC-H — в 84,6%, при HSIL — в 90,7% обследованных женщин; при AGC позитивный ВПЧ-тест был установлен в 26,7% наблюдений. Значение ВПЧ-теста относительно цитологии в этом исследовании иллюстрируют следующие данные. ВПЧ ВР-позитивным пациенткам выполнялись кольпоскопия и биопсия. Среди ВПЧ ВР-позитивных женщин с NILM гистологические данные позволили установить HSIL(CIN2+) в 28,3% наблюдений. В отличие от изолированного применения метод LBC в комбинации с ВПЧ-тестом демонстрирует высокую эффективность в скрининговых программах Китая [24]. Авторы из Индии признают, что достоинством LBC является меньшее количество неудовлетворительных мазков, но считают целесообразным применение Pap-теста в их стране по экономическим соображениям [25].

ВПЧ-скрининг

По результатам четырех Европейских РКИ (176 464 женщины 20—64 лет) было установлено, что скрининг на ВПЧ обеспечивает на 60—70% большую защиту от инвазивного РШМ по сравнению с цитологическим исследованием. Продемонстрирована высокая эффективность ВПЧ-скрининга для диагностики предрака шейки матки с долговременной защитой от CIN 3+, в том числе при увеличении интервала скрининга до 5 лет [8, 9]. По результатам систематического обзора 2020 г., генотипирование ВПЧ подтверждает высокую клиническую значимость ВПЧ-скрининга для определения степени риска CIN 3+ [26]. В 2021 г. в Германии было выполнено крупное популяционное исследование (n=5275) для сравнения двух стратегий цервикального скрининга — ко-теста и ВПЧ-теста с последующей кольпоскопией при позитивном скрининге. Ко-тест проводился с использованием ВПЧ-генотипирования (Hybrid Capture2, GP5+/6+ PCR-EIA), традиционного Pap-теста и LBC (ThinPrep). По его результатам ко-тест не имел преимуществ перед ВПЧ-тестом для диагностики CIN2+, но имел большее число ложноположительных результатов и направлений на кольпоскопию [27].

Доказано, что отдельные онкогенные генотипы ВПЧ обладают различным канцерогенным потенциалом, при этом ВПЧ-16, 18, 31 и 33 имеют самые высокие абсолютные риски развития CIN 2+ или CIN 3+ [7, 8, 12, 28, 29]. В то же время возможны различия по частоте определенных типов ВПЧ при РШМ и CIN 3, а также возрастные различия. Так, по данным метаанализа P. Guan и соавт. [12] с участием 115 789 ВПЧ-позитивных женщин установлено, что ВПЧ-16 доминирует как при инвазивном РШМ, так и при CIN 3 в 64,7 и 54,5% соответственно, в то время как при CIN 3 генотипы ВПЧ-31, 33, 52 и 58 встречаются чаще, чем ВПЧ-18 (соответственно 10,7; 11,0; 10,9 и 10,8% против 4,9%). В постменопаузе на примере женской популяции Швеции 55—59 лет (n=2946) наиболее значимыми были не ВПЧ-16 и 18, а ВПЧ-53, среди женщин с верифицированными SIL доминировал ВПЧ-31. По данным L. Bergengren и соавт. [30, 31], 70-летним женщинам, вышедшим из скрининга 10 лет назад, выполнялось генотипирование, в результате которого среди ВПЧ ВР-позитивных женщин (3,8%) самыми распространенными генотипами были ВПЧ-16, 33, 52, 56 и 68. Всем инфицированным выполнялась конизация шейки матки; обращает на себя внимание обнаружение LSIL и HSIL (по 23%) [30, 31], что еще раз доказывает значение ВПЧ-теста для профилактики РШМ.

В некоторых странах внедряются в программы скрининга новые технологии выявления ВПЧ [32, 33]. В Канаде тестирование на мРНК ВПЧ показало аналогичную с ДНК ВПЧ-чувствительность и специфичность для CIN2+ и CIN3+ в динамике наблюдения. В Италии оценка риска развития развития CIN2+ в течение 5 лет после установления негативного теста на мРНК ВПЧ была сопоставима с результатами негативного ДНК ВПЧ-теста.

Тактика дальнейшего ведения ВПЧ-позитивных пациенток

Большое внимание уделяется вопросам дальнейшего ведения или распределения (сортировки) ВПЧ-позитивных пациенток — triage1. Стратегии «сортировки» ВПЧ-позитивных женщин четко регламентированы в каждой стране [9, 19, 24], различия касаются возраста начала ВПЧ-скрининга и интервала между исследованиями. Рабочая группа IARC (Международное агентство по исследованию рака) признает, что «сортировка» помогает максимизировать преимущества цервикального скрининга и оказывает значительное влияние на эффективность программы скрининга. Существуют несколько стратегий распределения пациенток, включающие использование генотипирования на ВПЧ-16, 18, цитологическое исследование, использование иммуноцитохимического метода двойного окрашивания p16/Ki67, кольпоскопию, VIA (визуальный метод с использованием раствора уксуса) и их комбинации. Разработанная система ведения ВПЧ-позитивных женщин в динамике направлена на выявление персистенции ВПЧ ВР. Важно, что при типоспецифической персистенции ВПЧ ВР установлен риск развития CIN3+ в 6 раз выше относительно новой ВПЧ-инфекции и в 30 раз выше, чем у женщин в отсутствие ВПЧ-инфекции за 10-летний период [13].

Данные крупных РКИ подтверждают начало скрининга на ВПЧ с возраста 30 лет и увеличение интервалов скрининга до 5 лет [8]. Международный подход к «сортировке» (triage) следующий. Если первичный ВПЧ-тест положительный, то последующая тактика предусматривает проведение цитологического исследования шейки матки у этих пациенток (first triage). При выявлении ASCUS+ пациентка направляется на кольпоскопию (кольпоскопия, биопсия, лечение при верификации предрака или РШМ, при результате NILM — повторное обследование на ВПЧ ВР через 12 мес (second triage)). Если ВПЧ-тест через 12 мес положительный, рекомендуется кольпоскопия, если тест отрицательный, то в последующем — общепринятый скрининг. В некоторых странах при обнаружении ВПЧ-16, 18 пациентка сразу направляется на кольпоскопию (США, Австралия). Если первичный скрининг проводится в варианте ко-теста (Германия, США), то повторный ко-тест рекомендуется через 6—12 мес [9]. На основании данных британского долгосрочного РКИ ARTISTIC (A Randomised Trial In Screening To Improve Cytology) в 2019 г. было выдвинуто предложение о продлении интервала скрининга до 10 лет для женщин с отрицательным ВПЧ-тестом. Авторы обнаружили аналогичный уровень защиты через 10 лет после отрицательного ВПЧ-теста и через 3 года после отрицательного цитологического анализа (10-летний кумулятивный риск CIN 3+). Эти данные подтверждают возможность значительно более длительного интервала последующего скрининга после отрицательного теста на ВПЧ, чем после отрицательного цитологического теста [13].

В РФ рекомендуется молекулярно-биологическое исследование отделяемого из цервикального канала на всю группу ВПЧ ВР (не менее 12 типов) всем женщинам в возрасте от 30 до 65 лет каждые 5 лет (у ВПЧ-негативных женщин) и ежегодно у ВПЧ-позитивных [19]. Обследование в объеме ко-теста (ВПЧ-тест + цитологическое обследование) регламентировано с 30-летнего возраста в рамках скрининга, все инфицированные ВПЧ-16 и/или 18, независимо от результатов цитологии, а также имеющие аномальные результаты цитологического исследования (ASCUS на фоне ВПЧ ВР, ASC-H, LSIL, HSIL) должны быть направлены на кольпоскопию. При верификации CIN2+ рекомендована активная тактика ведения, после выздоровления пациентки скрининг должен быть продолжен до возраста 65 лет.

Значение ВПЧ-теста после лечения пациенток с CIN имеет прогностическое значение. Показано, что неполное иссечение (статус края иссечения) и положительный ВПЧ-тест служат предикторами остаточного или рецидивирующего течения CIN. Чувствительность и специфичность для положительного теста на ВПЧ ВР составила 91,0% (95% доверительный интервал — ДИ 82,3—95,5) и 83,8% (95% ДИ 77,7—88,7) соответственно, эти показатели для края резекции имели меньшую информативность — 55,8% (95% ДИ 45,8—65,5) и 84,4% (95% ДИ 79,5—88,4) соответственно. Отрицательный тест на ВПЧ ВР ассоциирован с CIN2+ лишь в 0,8%, в то время как в отсутствие CIN в крае иссечения риск CIN2+ был выше и составил 3,7% [34—36]. Среди предикторов рецидива CIN-позитивный ВПЧ-тест после эксцизии имеет максимальный риск (отношение шансов — ОШ 5,8; 95% ДИ 2,0—16,8) относительно таких факторов риска, как возраст женщины ≥45 лет (ОШ 3,5; 95% ДИ 1,3—9,9), CIN в одном или двух краях резекции (ОШ 5,3; 95% ДИ 2,0—14,2) и аномальная цитология при последующем контрольном наблюдении (ОШ 3,9; 95% ДИ 1,4—11,0).

Иммуноцитохимический метод двойного окрашивания биомаркеров р16/Ki-67. Известно, что ВПЧ-тест отражает наличие вируса, а цитологическое изучение позволяет установить состояние эпителиальных клеток на момент исследования, в то время как оценка биомаркеров p16/Ki-67 детализирует уровень пролиферативной активности эпителия шейки матки, что имеет прогностическое значение. Белок p16 осуществляет контроль клеточного цикла, относится к ингибиторам циклинзависимых киназ, которые тормозят пролиферацию. Ki-67 является белком клеточной пролиферации с экспрессией в течение всех активных фаз клеточного цикла. При персистирующем течении инфекции, вызванной ВПЧ ВР, уровень экспрессии p16 возрастает, способствуя усилению пролиферации цервикального эпителия.

Уровень биомаркеров можно оценивать в эпителиальных клетках при иммуноцитохимическом исследовании (коричневое цитоплазматическое и/или ядерное окрашивание указывает на наличие p16, красное окрашивание ядра — на присутствие Ki-67), а также посредством иммуногистохимического исследования (ИГХИ). Если иммуноцитохимическое исследование позволяет выявить экспрессию изучаемого маркера, то по данным ИГХИ можно детализировать выраженность признаков окрашивания. Так, при ВПЧ-ассоциированных CIN2—CIN3 выявлены более выраженная интенсивность реакции, протяженность окраски, более высокая частота обнаружения ядерной метки, 3-кратное повышение иммуногистохимического индекса в сравнении с CIN1 [37]. Одновременное определение p16 и Ki-67 имеет очевидные преимущества как с позиции более высокой информативности двух маркеров, так и неинвазивности забора материала, меньшей трудоемкости при выполнении ИГХИ, более быстрого получения результата. Среди пациенток с CIN различной степени позитивный тест двойного окрашивания p16/Ki-67 встречался в ⅓ наблюдений в сравнении с пациентками без цервикальной патологии, при этом степень тяжести CIN коррелировала с частотой экспрессии p16/Ki-67 [38].

Метод оценки двойного окрашивания p16/Ki67 может применяться не только у пациенток с CIN с целью выбора тактики ведения, но и в рамках цервикального скрининга [23, 39—43]. Цитологический метод двойного окрашивания рекомендуется использовать для отбора, или «сортировки» (triage), ВПЧ-позитивных пациенток при первичном ВПЧ-скрининге, поскольку повышает чувствительность цитологии. Популярность такого подхода за рубежом иллюстрирует ряд исследований. По мнению C. Areán-Cuns и соавт. [39], двойное окрашивание для белков p16/Ki-67 является более специфичным тестом, чем цитологический для тактики дальнейшего ведения ВПЧ-позитивных женщин. Так, при сходной чувствительности (99,0% против 98,0%) специфичность цитологического исследования значительно уступала методу двойного окрашивания (6,9% против 39,1%). Тест на p16/Ki67 имел двухкратное преимущество в подтверждении CIN и рака в сравнении с цитологическим исследованием у ВПЧ-позитивных пациенток, что позволило снизить затраты на кольпоскопию. В крупном исследовании ATHENA (n=7727) было показано, что для выявления CIN3+ чувствительность метода p16/Ki-67 была значительно выше Pap-цитологии (74,9% против 51,9%) [40]. Появились также доказательства преимущества оценки p16/Ki-67 для детекции CIN2+/CIN3+ по сравнению с ВПЧ ВР-тестом среди пациенток с начальными признаками аномальных цитологических мазков, таких как ASC-US или LSIL [44].

В рамках оппортунистического скрининга проводилось изучение частоты выявления положительного теста на p16/Ki67 среди женщин с аномальной цитологией. Наблюдалось следующее распределение: при ASC-US положительный тест двойного окрашивания был отмечен в 30,0% случаев, LSIL — в 35,2%; ASC-H — в 87,1%; HSIL — в 91,2%; при AGC — в 62,5%, что находит подтверждение и в ряде других исследований [23, 45, 46]. Немаловажно и то, что получены результаты долгосрочной стратификации риска развития цервикального предрака при использовании данного метода в сравнении с цитологическим. ВПЧ-позитивные пациентки с p16/Ki-67-отрицательными результатами имели значительно более низкий 5-летний риск развития CIN2+ по сравнению с таковыми, имевшими нормальный результат цитологического исследования [44, 47].

Заключение

Итак, в настоящее время система цервикального скрининга располагает различными возможностями в отношении выявления ВПЧ-ассоциированного предрака. Наиболее перспективным является комплексный подход, направленный на выявление персистирующей цервикальной папилломавирусной инфекции. Очевидна необходимость продолжения исследований с целью повышения эффективности стратегий цервикального скрининга и взаимодействия с системой здравоохранения для снижения заболеваемости и смертности, связанных с РШМ.

Автор заявляет об отсутствии конфликта интересов.

Author declares lack of the conflicts of interests.


1англ. triage — установление очередности оказания помощи больным с целью оптимизации исхода.

Литература / References:

  1. Ferlay J, Ervik M, Lam F, Colombet M, Mery L, Piñeros M. Global cancer observatory: Cancer today. Lyon: International Agency for Research on Cancer; 2020. https://gco.iarc.fr/today
  2. Arbyn M, Weiderpass E, Bruni L, de Sanjosé S, Saraiya M, Ferlay J, Bray F. Estimates of incidence and mortality of cervical cancer in 2018: a worldwide analysis. Lancet Glob Health. 2020;8:2:191-203.  https://doi.org/10.1016/S2214-109X(19)30482-6
  3. Sung H, Ferlay J, Siegel RL, Laversanne M, Soerjomataram I, Jemal A. Global cancer statistics 2020: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA Cancer J Clin. 2021;71:209-249.  https://doi.org/10.3322/caac.21660
  4. World Health Organization. Global strategy to accelerate the elimination of cervical cancer as a public health problem. https://www.who.int/publications/i/item/9789240014107
  5. Состояние онкологической помощи населению России в 2021 году. Под ред. Каприна А.Д., Старинского В.В., Шахзадовой А.О. М.: МНИОИ им. П.А. Герцена — филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России. 2020;239. 
  6. Злокачественные новообразования в России в 2020 году (заболеваемость и смертность). Под ред. Каприна А.Д., Старинского В.В., Шахзадовой А.О. М.: МНИОИ им. П.А. Герцена — филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России. 2021;252. 
  7. Wentzensen N, Arbyn M, Berkhof J, Bower M, Canfell K, Einstein M, Farley C, Monsonego J, Franceschi S. Eurogin 2016 Roadmap: how HPV knowledge is changing screening practice. Int J Cancer. 2017;140:10:2192-2200. https://doi.org/10.1002/ijc.30579
  8. Ronco G, Dillner J, Elfström KM, Tunesi S, Snijders PJ, Arbyn M, Kitchener H, Segnan N, Gilham C, Giorgi-Rossi P, Berkhof J, Peto J, Meijer CJ. Efficacy of HPV-based screening for prevention of invasive cervical cancer: follow-up of four European randomised controlled trials. Lancet. 2014;383:524-532.  https://doi.org/10.1016/S0140-6736(13)62218-7
  9. Cuschieri K, Ronco G, Lorincz A, Smith L, Ogilvie G, Mirabello L, Carozzi F, Cubie H, Wentzensen N, Snijders P, Arbyn M, Monsonego J, Franceschi S. Eurogin 2017 Roadmap: Triage strategies for the management of HPV-positive women in cervical screening programs. Int J Cancer. 2018;143:4:735-745.  https://doi.org/10.1002/ijc.31261
  10. Arbyn M, Verdoodt F, Snijders PJ, Verhoef VM, Suonio E, Dillner L, Minozzi S, Bellisario C, Banzi R, Zhao FH, Hillemanns P, Anttila A. Accuracy of human papillomavirus testing on selfcollected versus clinician-collected samples: a meta-analysis. Lancet Oncol. 2014;15:172-183.  https://doi.org/10.1016/S1470-2045(13)70570-9
  11. Verdoodt F, Jentschke M, Hillemanns P, Racey CS, Snijders PJ, Arbyn M. Reaching women who do not participate in the regular cervical cancer screening programme by offering self-sampling kits: a systematic review and meta-analysis of randomised trials. Eur J Cancer. 2015;51:2375-2385. https://doi.org/10.1016/j.ejca.2015.07.006
  12. Guan P, Howell-Jones R, Li N, Bruni L, de Sanjosé S, Franceschi S, Clifford GM. Human papillomavirus types in 115,789 HPV-positive women: a meta-analysis from cervical infection to cancer. Int J Cancer. 2012;131:2349-2359. https://doi.org/10.1002/ijc.27485
  13. Gilham C, Sargent A, Kitchener HC, Peto J. HPV testing compared with routine cytology in cervical screening: long-term follow-up of ARTISTIC RCT. Health Technol Assess. 2019;23:28:1-44.  https://doi.org/10.3310/hta23280
  14. Белокриницкая Т.Е., Фролова Н.И., Туранова О.В., Шемякина К.Н., Плетнева В.А., Самбуева Н.Б., Мальцева Е.Е. Результативность и приемлемость обследования на вирус папилломы человека при самостоятельном и врачебном заборе вагинального отделяемого. Акушерство и гинекология. 2017;2:97-105.  https://doi.org/10.18565/aig.2017.2.97-105
  15. Arbyn M, Castle PE, Schiffman M, Wentzensen N, Heckman-Stoddard B, Sahasrabuddhe VV. Meta-analysis of agreement/concordance statistics in studies comparing self-vs clinician-collected samples for HPV testing in cervical cancer screening. Int J Cancer. 2022;151:2:308-312.  https://doi.org/10.1002/ijc.33967
  16. Cho HW, Shim SR, Lee JK, Hong JH. Accuracy of human papillomavirus tests on self-collected urine versus clinician-collected samples for the detection of cervical precancer: a systematic review and meta-analysis. J Gynecol Oncol. 2022;33:1:e4.  https://doi.org/10.3802/jgo.2022.33.e4.
  17. Волков В.Г., Сурвилло Е.В. Анализ региональных особенностей заболеваемости раком шейки матки. Акушерство и гинекология. 2020;1(Прил.):69-73.  https://doi.org/10.18565/aig.2020.1suppl.69-73
  18. Клинышкова Т.В., Турчанинов Д.В., Буян М.С. Эпидемиологические аспекты рака шейки матки в Омской области. Акушерство и гинекология. 2018;3:102-108.  https://doi.org/10.18565/aig.2018.3.102-108
  19. Адамян Л.В., Аполихина И.А., Артымук Н.В., Ашрафян Л.А., Баранов И.И., Байрамова Г.Р., Белокриницкая Т.Е., Долгушина Н.В., Зароченцева Н.В., Краснопольский В.И., Короленкова Л.И., Кузнецов И.Н., Минкина Г.Н., Мингалева Н.В., Назарова Н.М., Прилепская В.Н., Уварова Е.В., Филиппов О.С., Шабалова И.П. Цервикальная интраэпителиальная неоплазия, эрозия и эктропион шейки матки. Клинические рекомендации. М. 2020;59. 
  20. Goodman S, Mody RR, Coffey D, Gorman BK, Luna E, Armylagos D, Schwartz MR, Mody DR, Ge Y. Negative Pap tests in women with high-grade cervical lesions on follow-up biopsies: Contributing factors and role of human papillomavirus genotyping. Diagn Cytopathol. 2018;46:3:239-243.  https://doi.org/10.1002/dc.23874
  21. Gupta R, Hariprasad R, Dhanasekaran K, Sodhani P, Mehrotra R, Kumar N, Gupta S. Reappraisal of cytology-histology correlation in cervical cytology based on the recent American Society of Cytopathology guidelines (2017) at a cancer research centre. Cytopathology. 2020;31:1:53-58.  https://doi.org/10.1111/cyt.12774
  22. Asaturova A, Dobrovolskaya D, Magnaeva A, Tregubova A, Bayramova G, Sukhikh G. Cervical cytology-histology correlation based on the American Society of Cytopathology Guideline (2017) at the Russian National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology, and Perinatology. Diagnostics (Basel). 2022;12:1:210.  https://doi.org/10.3390/diagnostics12010210
  23. Trzeszcz M, Mazurec M, Jach R, Mazurec K, Jach Z, Kotkowska-Szeps I, Kania M, Wantuchowicz M, Prokopyk A, Barcikowski P, Przybylski M, Wach J, Halon A. Liquid-Based screening tests results: HPV, Liquid-Based Cytology, and P16/Ki67 dual-staining in private-based opportunistic cervical cancer screening. Diagnostics (Basel). 2021;11:8:1420. https://doi.org/10.3390/diagnostics11112012
  24. Pan QJ, Hu SY, Guo HQ, Zhang WH, Zhang X, Chen W, Cao J, Jiang Y, Zhao FH, Qiao YL. Liquid-based cytology and human papillomavirus testing: a pooled analysis using the data from 13 population-based cervical cancer screening studies from China. Gynecol Oncol. 2014;133:2:172-179.  https://doi.org/10.1016/j.ygyno.2014.03.008
  25. Pankaj S, Nazneen S, Kumari S, Kumari A, Kumari A, Kumari J, Choudhary V, Kumar S. Comparison of conventional Pap smear and liquid-based cytology: A study of cervical cancer screening at a tertiary care center in Bihar. Indian J Cancer. 2018;55:1:80-83.  https://doi.org/10.4103/ijc.IJC_352_17
  26. Bonde JH, Sandri MT, Gary DS, Andrews JC. Clinical utility of human papillomavirus genotyping in cervical cancer screening: a systematic review. J Low Genit Tract Dis. 2020;24:1:1-13.  https://doi.org/10.1097/LGT.0000000000000494
  27. Liang LA, Einzmann T, Franzen A, Schwarzer K, Schauberger G, Schriefer D, Radde K, Zeissig SR, Ikenberg H, Meijer CJLM, Kirkpatrick CJ, Kölbl H, Blettner M, Klug SJ. Cervical cancer screening: comparison of conventional pap smear test, liquid-based cytology, and human papillomavirus testing as stand-alone or cotesting strategies. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 2021;30:3:474-484.  https://doi.org/10.1158/1055-9965.EPI-20-1003
  28. Прилепская В.Н. ВПЧ-ассоциированные заболевания шейки матки: скрининг, методы обследования, принципы лечения. Гинекология. 2019;21:3:6-8.  https://doi.org/10.26442/20795696.2019.3.190595
  29. Зароченцева Н.В., Джиджихия Л.К., Набиева В.Р., Джавахишвили М.Г. Значение генотипирования вируса папилломы человека в диагностике предраковых поражений шейки матки. Российский вестник акушера-гинеколога. 2021;21:5:30-40.  https://doi.org/10.17116/rosakush20212105130
  30. Bergengren L, Lillsunde-Larsson G, Helenius G, Karlsson MG. HPV-based screening for cervical cancer among women 55—59 years of age. PLoS One. 2019;14:6:e0217108. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0217108
  31. Bergengren L, Karlsson MG, Helenius G. Prevalence of HPV and pathological changes among women 70 years of age, 10 years after exclusion from the Swedish cervical cancer screening program. Cancer Causes Control. 2020;31:4:377-381.  https://doi.org/10.1007/s10552-020-01278-0
  32. Cook DA, Smith LW, Law JH, et al. Comparative performance of human papillomavirus messenger RNA versus DNA screening tests at baseline and 48 months in the HPV FOCAL trial. J Clin Virol. 2018;108:32-37.  https://doi.org/10.1016/j.jcv.2018.09.004
  33. Zorzi M, Del Mistro A, Giorgi-Rossi P, Laurino L, Battagello J, Lorio M, Soldà M, Gabellotti EM, Maran M, Dal Cin A, Fiore A, Rugge M, Maggino T. Risk of CIN2 or more severe lesions after negative HPV-mRNA E6/E7 overexpression assay and after negative HPV-DNA test: concurrent cohorts with a 5-year follow-up. Int J Cancer. 2020;146:3114-3123. https://doi.org/10.1002/ijc.32695
  34. Arbyn M, Redman CWE, Verdoodt F, Kyrgiou M, Tzafetas M, Ghaem-Maghami S, Petry KU, Leeson S, Bergeron C, Nieminen P, Gondry J, Reich O, Moss EL. Incomplete excision of cervical precancer as a predictor of treatment failure: a systematic review and meta-analysis. Lancet Oncol. 2017;18:12:1665-1679. https://doi.org/10.1016/S1470-2045(17)30700
  35. Alder S, Megyessi D, Sundström K, Östensson E, Mints M, Belkić K, Arbyn M, Andersson S. Incomplete excision of cervical intraepithelial neoplasia as a predictor of the risk of recurrent disease-a 16-year follow-up study. Am J Obstet Gynecol. 2020;222:2:172.e1-172.e12.  https://doi.org/10.1016/j.ajog.2019.08.042
  36. Andersson S, Megyessi D, Belkić K, Alder S, Östensson E, Mints M. Age, margin status, high-risk human papillomavirus and cytology independently predict recurrent high-grade cervical intraepithelial neoplasia up to 6 years after treatment. Oncol Lett. 2021;22:3:684.  https://doi.org/10.3892/ol.2021.12945
  37. Клинышкова Т.В., Самосудова И.Б. Результаты оценки E7 ВПЧ, p16, Ki67 при цервикальном предраке, ассоциированном с папилломавирусной инфекцией. Российский вестник акушера-гинеколога. 2012;12:4:21-24. 
  38. Клинышкова Т.В., Самосудова И.Б., Буян М.С. Сравнительная оценка результатов иммуноцитохимического исследования коэкспрессии p16/Ki-67 среди больных с цервикальными интраэпителиальными неоплазиями, ассоциированными с вирусом папилломы человека. Гинекология. 2021;23:4:341-345.  https://doi.org/10.26442/20795696.2021.4.200949
  39. Areán-Cuns C, Mercado-Gutiérrez M, Paniello-Alastruey I, Mallor-Giménez F, Córdoba-Iturriagagoitia A, Lozano-Escario M, Santamaria-Martínez M. Dual staining for p16/Ki67 is a more specific test than cytology for triage of HPV-positive women. Virchows Arch. 2018;473:5:599-606.  https://doi.org/10.1007/s00428-018-2432-z
  40. Wright TC Jr, Behrens CM, Ranger-Moore J, Rehm S, Sharma A, Stoler MH, Ridder R. Triaging HPV-positive women with p16/Ki-67 dual-stained cytology: Results from a sub-study nested into the ATHENA trial. Gynecol Oncol. 2017;144:1:51-56.  https://doi.org/10.1016/j.ygyno.2016.10.031
  41. Wentzensen N, Clarke MA, Bremer R, Poitras N, Tokugawa D, Goldhoff PE, Castle PE, Schiffman M, Kingery JD, Grewal KK, Locke A, Kinney W, Lorey TS. Clinical evaluation of human papillomavirus screening with p16/Ki-67 dual stain triage in a large organized cervical cancer screening program. JAMA Intern Med. 2019;179:7:881-888.  https://doi.org/10.1001/jamainternmed.2019.0306
  42. Gustinucci D, Giorgi Rossi P, Cesarini E, Broccolini M, Bulletti S, Carlani A, D’angelo V, D’amico MR, Di Dato E, Galeazzi P, Malaspina M, Martinelli N, Spita N, Tintori B, Giaimo MD, Passamonti B. Use of cytology, E6/E7 mRNA, and p16INK4a-Ki-67 to define the management of human papillomavirus (HPV)-positive women in cervical cancer screening. Am J Clin Pathol. 2016;145:1:35-45.  https://doi.org/10.1093/ajcp/aqv019
  43. Benevolo M, Allia E, Gustinucci D, Rollo F, Bulletti S, Cesarini E, Passamonti B, Giovagnoli MR, Carico E, Carozzi FM, Mongia A, Fantacci G, Confortini M, Rubino T, Fodero C, Prandi S, Marchi N, Farruggio A, Coccia A, Macrì L, Ghiringhello B, Ronco G, Bragantini E, Polla E, Maccallini V, Negri G, Giorgi Rossi P. Interobserver reproducibility of cytologic p16INK4a /Ki-67 dual immunostaining in human papillomavirus-positive women. Cancer Cytopathol. 2017;125:3:212-220.  https://doi.org/10.1002/cncy.21800
  44. Peeters E, Wentzensen N, Bergeron C, Arbyn M. Meta-analysis of the accuracy of p16 or p16/Ki-67 immunocytochemistry versus HPV testing for the detection of CIN2+/CIN3+ in triage of women with minor abnormal cytology. Cancer Cytopathol. 2019;127:3:169-180.  https://doi.org/10.1002/cncy.22103
  45. Ebisch RM, van der Horst J, Hermsen M, Rijstenberg LL, Vedder JE, Bulten J, Bosgraaf RP, Verhoef VM, Heideman DA, Snijders PJ, Meijer CJ, van Kemenade FJ, Massuger LF, Melchers WJ, Bekkers RL, Siebers AG. Evaluation of p16/Ki-67 dual-stained cytology as triage test for high-risk human papillomavirus-positive women. Mod Pathol. 2017;30:1021-1031. https://doi.org/10.1038/modpathol.2017.16
  46. Donà MG, Vocaturo A, Giuliani M, Ronchetti L, Rollo F, Pescarmona E, Carosi M, Vocaturo G, Benevolo M. p16/Ki-67 dual staining in cervico-vaginal cytology: Correlation with histology, human papillomavirus detection and genotyping in women undergoing colposcopy. Gynecol Oncol. 2012;126:198-202.  https://doi.org/10.1016/j.ygyno.2012.05.004
  47. Clarke MA, Cheung LC, Castle PE, Schiffman M, Tokugawa D, Poitras N, Lorey T, Kinney W, Wentzensen N. Five-Year Risk of Cervical Precancer Following p16/Ki-67 dual-stain triage of HPV-positive women. JAMA Oncol. 2019;5:2:181-186.  https://doi.org/10.1001/jamaoncol.2018.4270

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.