Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Толгаева Е.А.

ГБУЗ МО «Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского» Минздрава Московской области, Москва, Россия

Локтионова А.С.

МГУ им. М.В. Ломоносова, Москва;
ГБУЗ МО МОНИКИ им. М.Ф. Владимирского, Москва

Иловайская И.А.

Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского

Взаимодействие пролактина и кисспептина в условиях нормо- и гиперпролактинемии

Авторы:

Толгаева Е.А., Локтионова А.С., Иловайская И.А.

Подробнее об авторах

Прочитано: 4086 раз


Как цитировать:

Толгаева Е.А., Локтионова А.С., Иловайская И.А. Взаимодействие пролактина и кисспептина в условиях нормо- и гиперпролактинемии. Российский вестник акушера-гинеколога. 2020;20(2):35‑40.
Tolgaeva EA, Loktionova AS, Ilovaĭskaia IA. The interaction of prolactin and kisspeptin in conditions of normo- and hyperprolactinemia. Russian Bulletin of Obstetrician-Gynecologist. 2020;20(2):35‑40. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/rosakush20202002135

Рекомендуем статьи по данной теме:
Кли­ни­чес­кий слу­чай лак­та­ци­он­но­го мас­ти­та пос­ле мам­моп­лас­ти­ки. Плас­ти­чес­кая хи­рур­гия и эс­те­ти­чес­кая ме­ди­ци­на. 2025;(2):128-133

Пролактин

История пролактина начинается в 30-х годах прошлого века, когда этот полипептидный гормон был обнаружен Оскаром Ридли у млекопитающих. Спустя примерно 40 лет гормон был выделен и у человека [1]. Пролактин синтезируется и выделяется преимущественно лактотрофами передней доли гипофиза. Классическая роль гормона у млекопитающих — лактация, но в настоящее время насчитывается более 300 функций этого гормона как у женщин, так и у мужчин [2—4]. Помимо лактации он также участвует в формировании полового и родительского поведения, в процессах нейрогенеза, сна, обучения, памяти [5—9]. Рецепторы к нему были найдены во многих тканях: костях, жировой ткани, коже, тимусе, селезенке, матке и яичниках [10—14]. Не так давно рецепторы пролактина были обнаружены в различных областях мозга, таких как кора, обонятельная луковица, гипоталамус, гиппокамп и миндалина [15—19]. Результаты изучения механизмов влияния пролактина на нейропротекцию могут быть использованы для лечения нейродегенеративных заболеваний [20].

У человека пролактин кодируется геном, расположенным на 6-й хромосоме. Рецептор гормона относится к классу цитокиновых, и связывание с ним пролактина приводит к активации экспрессии генов в ядре клетки. У здоровых женщин увеличение секреции пролактина происходит во время стимуляции сосков молочных желез, при стрессе, половом акте, физических нагрузках, а также во время сна. ГнРГ, эстрогены, серотонин, окситоцин, вазопрессин, эндогенные опиоиды и некоторые другие вещества стимулируют секрецию гормона, а дофамин, вырабатываемый несколькими популяциями нейронов гипоталамуса, ингибирует [21]. Дофамин через гипофизарную портальную систему активирует D-дофаминовые рецепторы лактотрофов, что приводит к снижению экспрессии гена пролактина и, соответственно, снижению его секреции [22]. При этом пролактин способен осуществлять гипоталамический контроль своей собственной регуляции через прямое воздействие на клетки некоторых дофаминсекретирующих популяций нейронов: было показано, что нейроны одной из этих популяций имеют рецепторы к пролактину. Синтез и высвобождение дофамина увеличиваются в ответ на увеличение уровня пролактина в крови (одномоментное или длительное), тогда как гипопролактинемия приводит к подавлению секреции дофамина; таким образом, замыкается гомеостатическая регуляторная система [23, 24].

Кисспептин

Кисспептин был открыт в 1996 г. как супрессор метастазирования меланомы, в связи с чем поначалу получил название «метастатин». мРНК новой субстанции была выделена из тканей неметастазирующей меланомы, в то время как в тканях метастазирующей опухоли ее выявлено не было. Последующие эксперименты показали, что этот пептид подавляет метастазирование рака молочной железы, а также была выявлена обратная связь между экспрессией гена метастатина и метастазированием и/или прогрессированием меланомы, феохромоцитомы, плоскоклеточного рака пищевода, рака мочевого пузыря, молочной железы, желудка и поджелудочной железы [25]. В дальнейшем была открыта важнейшая роль этого пептида в половом созревании и репродукции, что привело к его переименованию. Свое романтичное название пептид и его ген получили в честь знаменитых шоколадных конфет под названием Kiss (поцелуй), фабрика по производству которых «The Hershey company» находилась в том же городе Херши, где и лаборатория.

Кисспептин кодируется геном Kiss, расположенным на 1-й хромосоме. Этот ген кодирует 145-аминокислотный пропептид (кисспептин-1), который затем расщепляется на четыре части: 54-аминокислотный кисспептин-54 и три более коротких — кисспептин-14, кисспептин-13 и кисспептин-10, содержащие соответствующее количество аминокислот; все эти пептиды проявляют примерно одинаковое сродство к общему рецептору KISS1R. Этот рецептор известен также как GRP54 (галанинподобный G-белоксвязанный рецептор-54), и до открытия кисспептина считался орфанным. Несмотря на то что все перечисленные пептиды биологически активны, наиболее изучена роль кисспептина-54, который и является основной активной формой кисспептина у человека.

Расположение кисспептиновых нейронов в гипоталамусе у человека ограничено преоптической зоной и инфундибулярными ядрами [26—28]. Связывание кисспептина с рецептором KISS1R активирует систему G-белков и вторичных посредников фосфолипазы С, что приводит к дальнейшему воздействию на клетку. В настоящее время кисспептин больше известен как непосредственный стимулятор ГнРГ и важнейший регулятор репродуктивной системы человека [29].

Так как напрямую в крови измерить содержание ГнРГ технически сложно, стимулирующее влияние кисспептина на ГнРГ оценивают по изменению уровня лютеинизирующего гормона (ЛГ). В исследовании с участием здоровых мужчин было продемонстрировано значительное дозозависимое увеличение уровня ЛГ при введении им кисспептина-10 (0,3 мкг/кг внутривенно болюсно и 4 мкг/кг/ч в течение 11 ч), а также — в меньшей степени — прирост уровней фолликулостимулирующего гормона (ФСГ) и тестостерона [30].

В инфундибулярных ядрах гипоталамуса расположены также KNDy-нейроны, которые помимо кисспептина коэкспрессируют нейрокинин В и динорфин. Аутосинаптически они регулируют секрецию кисспептина. Так, нейрокинин В является стимулятором, а динорфин — ингибитором секреции кисспептина. KNDy-нейроны играют важнейшую роль в обеспечении обратной связи — как отрицательной, так и положительной — между секрецией ГнРГ, ЛГ, ФСГ и половых стероидов у человека [31, 32]. Аксоны этих нейронов и нейронов ядер преоптической зоны идут к нейронам, вырабатывающим ГнРГ, обеспечивая его импульсную секрецию. Имеются данные о том, что KNDy-нейроны могут играть роль в обеспечении преовуляторной эстрогензависимой положительной обратной связи у человека [31, 33, 34].

Увеличение импульсной секреции кисспептина знаменует собой начало пубертатного периода у человека [35]; то же самое было показано в исследованиях на крысах и обезьянах [34, 36]. Инактивирующие мутации гена KISS1 или гена, кодирующего рецептор KISS1R, приводят к нарушению становления пубертатного периода и идиопатическому гипогонадотропному гипогонадизму как у животных, так и у человека. Активирующие мутации рецептора KISS1R, напротив, приводят к преждевременному половому развитию [37—39].

Секреция кисспептина, как и стимуляция выработки ГнРГ, зависит от концентрации периферических половых стероидов (эстрогены и прогестерон стимулируют активность Kiss-нейронов в обоих ядрах гипоталамуса) [34]. Наличие подобной регуляции свидетельствует о посреднической роли кисспептина в обеспечении механизма отрицательной обратной связи внутри гипоталамо-гипофизарно-яичниковой оси [32]. Согласно данным литературы, эстрадиол регулирует экспрессию гена рецептора кисспептина (KISS1R), а также синтез мРНК гена KISS1. Это также указывает, что кисспептин действует как регулятор в механизме обратной связи между периферическими половыми стероидами и ГнРГ-нейронами [40].

Гиперпролактинемия

Гиперпролактинемия — стойкое повышенное содержание пролактина в сыворотке крови, которое может быть физиологическим (например, у женщин во время беременности и лактации) или патологическим (например, при наличии пролактин-секретирующей аденомы гипофиза). Физиологическая гиперпролактинемия ведет к подавлению импульсов секреции ГнРГ, снижению продукции ЛГ, ФСГ и, как следствие, — к ановуляции. Вероятно, этот механизм эволюционно обоснован блокированием повторной беременности во время лактации для предупреждения дополнительных энергозатрат [21].

Секрецию пролактина регулируют три популяции гипоталамических дофаминергических нейронов: тубероинфундибулярные (TIDA), туберогипофизарные (THDA) и перивентрикулярные гипофизарные дофаминергические (PHDA). Дофамин, секретируемый этими нейронами, транспортируется в аденогипофиз посредством коротких портальных сосудов, и здесь способствует базальной регуляции секреции пролактина; при возрастании концентраций дофамина секреция пролактина подавляется [41]. В то же время исследования показали, что пролактин способен стимулировать синтез и обмен гипоталамического дофамина и его секрецию в систему портальных сосудов гипофиза, воздействуя главным образом на TIDA-нейроны [42]. Таким образом, между дофамином и пролактином существует короткая петля механизма обратной связи. Патологическая гиперпролактинемия приводит к нарушению в системе упомянутой короткой петли.

Патологическая гиперпролактинемия приводит к гипогонадизму и ановуляторному бесплодию. Характерными симптомами патологической гиперпролактинемии у женщин являются нарушения менструального цикла (аменорея, олигоопсоменорея, ановуляторные циклы, недостаточность лютеиновой фазы), галакторея, бесплодие, снижение полового влечения, фригидность. У мужчин в подобном состоянии часто наблюдается снижение либидо и потенции, бесплодие вследствие патоспермии. Наиболее часто — около половины всех случаев выявления гиперпролактинемии — причиной этого синдрома служит пролактинсекретирующая опухоль гипофиза пролактинома [43]. Пациенты также могут предъявлять жалобы, связанные со значительными размерами опухоли, на головные боли, сужение полей зрения [41, 44, 45]. Фармакологическое лечение больных с пролактинóмами в настоящее время осуществляется агонистами дофамина: бромокриптином и каберголином. Зная механизмы взаимного влияния пролактина и кисспептина, можно воздействовать на другие звенья патогенеза гиперпролактинемии, а также изучить возможность использования кисспептина в лечении больных с дофаминрезистетными пролактиномами.

Влияние пролактина на кисспептин

В исследованиях было показано, что очень небольшое число ГнРГ-нейронов экспрессируют рецепторы к пролактину; кроме того, пролактин не влияет на мембранную возбудимость ГнРГ-нейронов [46, 47]. Из этого следует, что пролактин оказывает влияние на секрецию ГнРГ опосредованно, а именно — через кисспептин [48]. Исследования на животных продемонстрировали, что большинство аркуатных Kiss-нейронов ко-экспрессируют рецепторы пролактина [12, 13, 24]. Данные иммуногистохимических исследований показывают, что высокий уровень пролактина подавляет экспрессию кисспептина [11]. У лактирующих крыс, а также нерожавших овариэктомированных крыс после введения овечьего пролактина фиксируются сниженные уровни экспрессии кисспептина нейронами аркуатного ядра и снижение уровня ЛГ в плазме крови. Индуцированная бромокриптином блокада действия пролактина в обеих упомянутых группах крыс значительно увеличивала экспрессию киссептина в аркуатном ядре и ЛГ в плазме, но не восстанавливала ее до уровней, которые фиксируются у этих животных вне лактации [11]. Аналогичные результаты были получены в исследованиях на овцах [13, 49, 50]. На основании этих данных можно детерминировать кисспептин-опосредованный путь, через который гиперпролактинемия блокирует секрецию ГнРГ и ЛГ и вызывает бесплодие [51].

Влияние кисспептина на пролактин

Имеются противоречивые данные об изменении уровня пролактина в плазме крови в ответ на введение кисспептина у человека и животных [24, 50—53]. В одной из работ [54] было продемонстрировано, что подкожное введение в течение недели кисспептина-54 здоровым женщинам в дозе, стимулирующей секрецию гонадотропинов (37 мкг/кг2 раза в день с 7-го по 14-й день менструального цикла), не вызывало увеличения уровня пролактина в периферической крови. Возможно, способность кисспептина стимулировать секрецию пролактина напрямую зависит от уровня эстрогенов [48, 50]. Было показано, что кисспептин-10 в дозе 0,6 и 3 нмоль увеличивал плазменный уровень пролактина и снижал уровень 3,4-дигидроксифенилацетиловой кислоты (основного метаболита дофамина) у овариэктомированных крыс, которым вводился эстрадиол. В то же время у овариэктомированных крыс в условиях дефицита эстрогенов подобный эффект отсутствовал, что демонстрирует эстрогензависимый механизм регуляции [24]. Наличие рецептора эстрогенов на нейронах TIDA было также подтверждено иммуногистохимически [55, 56].

Известно, что дофамин ограничивает избыточное выделение пролактина и снижает родительскую мотивацию. Кисспептин же снижает активность тубероинфундибулярных дофаминергических нейронов у мышей, уменьшая секрецию дофамина и вызывая увеличение секреции пролактина лактотрофами аденогипофиза [24]. Увеличение секреции пролактина лактотрофами в ответ на воздействие кисспептина было также продемонстрировано на культуре клеток аденогипофиза крупного рогатого скота [57].

Таким образом, для обеспечения репродуктивной функции необходим нормальный базальный уровень пролактина, который, по всей вероятности, обеспечивается кисспептином посредством ингибирующего влияния последнего на дофаминергические нейроны. В условиях же гиперпролактинемии снижается продукция кисспептина, что приводит к активации дофаминергических нейронов [24]. Секреция пролактина закономерно должна снижаться и ослаблять ингибирующее влияние на репродуктивную ось, однако этого не происходит. Возможно, что в условиях гиперпролактинемии ингибирующее влияние пролактина на Kiss-нейроны оказывается больше, чем влияние кисспептина на нейроны TIDA. Следовательно, есть вероятность, что ингибирующее действие пролактина на аркуатные/инфундибулярные нейроны кисспептина может быть также вовлечено в регуляцию своей собственной секреции через обратную связь [11].

Перспективы использования кисспептина при лечении пациенток с бесплодием

Гиперпролактинемия стала первым клиническим синдромом, при котором были изучены терапевтическое влияние кисспептина на организм человека [48]. В ряде исследований было продемонстрировано увеличение уровня ЛГ в ответ на введение кисспептина пациенткам как с нормальным (при гипоталамической аменорее), так и повышенным уровнем пролактина [54, 58—61]. Количество работ, подтверждающих эту взаимосвязь, неуклонно растет. В работе [58] было зафиксировано 10-кратное увеличение уровня ЛГ и 2,5-кратное увеличение уровня ФСГ в ответ на подкожное введение 6,4 нмоль/кг кисспептина-54 у женщин с аменореей на фоне гиперпролактинемии. После введения кисспептина-54 пациенткам с гипоталамической аменореей также получены позитивные результаты — выявлен преовуляторный уровень ЛГ [59].

Полученные данные о стимулированных уровнях гонадотропинов разнятся в зависимости от способов введения кисспептина (подкожно или внутривенно), его доз, кратности и длительности лечения. У женщин с патологической гиперпролактинемией уровень ЛГ в ответ на введение кисс-пептина увеличивается примерно в 5 раз по сравнению с таковым у здоровых женщин в раннюю фолликулярную фазу [61], что было подтверждено во всех исследованиях вне зависимости от кратности и доз введения, а также длительности терапии. Возможно, длительный дефицит кисспептина в условиях хронической гиперпролактинемии приводит к компенсаторному повышению чувствительности к нему.

Исследования влияния кисспептина и пролактина на репродукцию открывают большие возможности в лечении больных с бесплодием вследствие овариальной дисфункции, в том числе на фоне гиперпролактинемии [62]. Лечение пролонгированными агонистами дофамина в условиях современной клинической практики позволяет у большинства пациенток с гиперпролактинемией различного генеза нормализовать уровень пролактина в крови, что сопровождается восстановлением овуляторной функции. Тем не менее в случаях гиперпролактинемии, полностью или частично резистентной к лечению агонистами дофамина, возможность применения кисспептина с целью восстановления овуляции может дать шанс пациентке забеременеть вне зависимости от уровня пролактина.

Заключение

Активность Kiss-нейронов является важной составной частью влияния пролактина на репродуктивную ось. Изучение взаимного влияния пролактина и кисспептина расширило знания о регуляции репродуктивной функции, позволило более точно понять механизмы овариальной дисфункции на фоне гиперпролактинемии, и в перспективе может дать новые медикаментозные методы стимуляции овуляции.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования — И.А. Иловайская;

Сбор и обработка материала — Е.А. Толгаева, А.С. Локтионова;

Написание текста — Е.А. Толгаева;

Редактирование — И.А. Иловайская

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Cabrera-Reyes EA, Limón-Morales O, Rivero-Segura NA, Camacho-Arroyo I, Cerbón M. Prolactin function and putative expression in the brain. Endocrine. 2017;57:2:199-213. https://doi.org/10.1007/s12020-017-1346-x
  2. Emanuele N, Jurgens J, Halloran M, Tentler J, Lawrence A, Kelley M. The rat prolactin gene is expressed in brain tissue: detection of normal and alternatively spliced prolactin messenger RNA. Mol Endocrinol. 1992;6:1:35-42. https://doi.org/10.1210/me.6.1.35
  3. Drago F. Prolactin and sexual behavior: a review. Neurosci Biobehav Rev. 1984;8:433-439. https://doi.org/10.1016/0149-7634%2884%2990002-2
  4. Tejadilla D, Cerbón M, Morales T. Prolactin reduces the damaging effects of excitotoxicity in the dorsal hippocampus of the female rat independently of ovarian hormones. Neuroscience. 2010;169:3: 1178-1185. https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2010.05.074
  5. Bates RW, Lahr EL, Riddle O. The gross action of prolactin and follicle-stimulating hormone on the mature ovary and sex accessories of fowl. Am J Physiol. 1935;1:2:361-368. https://doi.org/10.1152/ajplegacy.1935.111.2.361
  6. Love G, Torrey N, McNamara I, Morgan M, Banks M, Hester N, Glasper ER, Devries AC, Kinsley CH, Lambert KG. Maternal experience produces long-lasting behavioral modifications in the rat. Behav Neurosci. 2005;119:4:1084-1096. https://doi.org/10.1037/0735-7044.119.4.1084
  7. Pawluski JL, Vanderbyl BL, Ragan K, Galea LA. First reproductive experience persistently affects spatial reference and working memory in the mother and these effects are not due to pregnancy or «mothering» alone. Behav Brain Res. 2006;175:1:157-165. https://doi.org/10.1016/j.bbr.2006.08.017
  8. Pawluski JL, Walker SK, Galea LA. Reproductive experience differentially affects spatial reference and working memory performance in the mother. Horm Behav. 2006;49:2:143-149. https://doi.org/10.1016/j.yhbeh.2005.05.016
  9. Henry J, Sherwin B. Hormones and cognitive functioning during late pregnancy and postpartum: a longitudinal study. Behav Neurosci. 2012;126:1:73-85. https://doi.org/10.1037/a0025540
  10. Sonigo C, Bouilly J, Carré N, Tolle V, Caraty A, Tello J, Binart N. Hyperprolactinemia-induced ovarian acyclicity is reversed by kisspeptin administration. J Clin Investigat. 2012;122:10:3791-3795. https://doi.org/10.1172/jci63937
  11. Araujo-Lopes R, Crampton JR, Aquino NSS, Miranda RM, Kokay IC, Reis AM, Szawka RE. Prolactin Regulates Kisspeptin neurons in the arcuate nucleus to suppress LH secretion in female rats. Endocrinology. 2014;155:3:1010-1020. https://academic.oup.com/endo/article/155/3/1010/2843336
  12. Kokay IC, Petersen SL, Grattan DR. Identification of prolactin-sensitive GABA and kisspeptin neurons in regions of the rat hypothalamus involved in the control of fertility. Endocrinology. 2011;152:2:526-535. https://doi.org/10.1210/en.2010-0668
  13. Li Q, Rao A, Pereira A, Clarke IJ, Smith JT. Kisspeptin Cells in the ovine arcuate nucleus txpress prolactin receptor but not melatonin receptor. J Neuroendocrinol. 2011;23:10:871-882. https://doi.org/10.1111/j.1365-2826.2011.02195.x
  14. Furigo IC, Kim KW, Nagaishi VS, Ramos-Lobo AM, de Alencar A, Pedroso JA, Metzger M, Donato JrJ. Prolactin-sensitive neurons express estrogen receptor-alpha and depend on sex hormones for normal responsiveness to prolactin. Brain Res. 2014;1566:47-59. https://doi.org/10.1016/j.brainres.2014.04.018
  15. Roselli CE, Bocklandt S, Stadelman HL, Wadsworth T, Vilain E, Stormshak F. Prolactin expression in the sheep brain. Neuroendocrinology. 2008;87:4:206-215. https://doi.org/10.1159/000114643
  16. DeVito W. Distribution of immunoreactive prolactin in the male and female rat brain: effects of hypophysectomy and intraventricular administration of colchicine. Neuroendocrinology. 1988;47:4:284-289. https://doi.org/10.1159/000124926
  17. de Moura AC, Lazzari VM, Becker RO, Gil MS, Ruthschilling CA, Agnes G, Almeida S, da Veiga AB, Luicion AB, Giovenardo M. Gene expression in the CNS of lactating rats with different patterns of maternal behavior. Neurosci Res. 2015;99:8-15. https://doi.org/10.1016/j.neures.2015.05.003
  18. Cabrera-Reyes EA, Vergara-Castañeda E, Rivero-Segura N, Cerbón M. Sex differences in prolactin and its receptor expression in pituitary, hypothalamus, and hippocampus of the rat. Rev Mex Endocrinol Metab Nutr. 2015;2:2:60-67. https://pdfs.semanticscholar.org/21d2/26f316327ebf29bd27cc6ee3c50babadf509.pdf
  19. Bakowska J, Morrell J. The distribution of mRNA for the short form of the prolactin receptor in the forebrain of the female rat. Brain Res. 2003;116:1-2:50-58. https://doi.org/10.1016/s0169-328x%2803%2900213-4
  20. Vergara-Castañeda E, Grattan DR, Pasantes-Morales H, Pérez-Domínguez M, Cabrera-Reyes EA, Morales T, Cerbón M. Prolactin mediates neuroprotection against excitotoxicity in primary cell cultures o hippocampal neurons via its receptor. Brain Res. 2016;1636:192-199. https://doi.org/10.1016/j.brainres.2016.02.011
  21. Романцова Т.И. Репродукция и энергетический баланс: интегративная роль пролактина. Ожирение и метаболизм. 2014; 11:1:5-18. https://doi.org/10.14341/omet201415-18
  22. Freeman ME, Kanyicska B, Lerant A, Nagy G. Prolactin: structure, function, and regulation of secretion. Physiol Rev. 2000;80:4:1523-631. https://doi.org/10.1152/physrev.2000.80.4.1523
  23. Grattan DR, Kokay IC. Prolactin: a pleiotropic neuroendocrine hormone. J Neuroendocrinol. 2008;20:752-763. https://doi.org/10.1111/j.1365-2826.2008.01736.x
  24. Ribeiro AB, Leite CM, Kalil B, Franci CR, Anselmo‐Franci JA, Szawka RE. Kisspeptin regulates tuberoinfundibular dopaminergic neurones and prolactin secretion in an oestradiol‐dependent manner in male and female rats. J Neuroendocrinol. 2015;27:2:88-99. https://doi.org/10.1111/jne.12242
  25. Murphy KG. Kisspeptins: regulators of metastasis and the hypothalamic‐pituitary‐gonadal axis. J Neuroendocrinol. 2005;17:8:519-525. https://doi.org/10.1111/j.1365-2826.2005.01328.x
  26. Fu LY, van den Pol AN. Kisspeptin directly excites anorexigenic proopiomelanocortin neurons but inhibits orexigenic neuropeptide Y cells by an indirect synaptic mechanism. J Neurosci. 2010;28:30:10205-10219. https://doi.org/10.1523/jneurosci.2098-10.2010
  27. Rometo AM, Krajewski SJ, Voytko ML, Rance NE. Hypertrophy and increased kisspeptin gene expression in the hypothalamic infundibular nucleus of postmenopausal women and ovariectomized monkeys. J Clin Endocrinol Metab. 2007;7:2744-2750. https://doi.org/10.1210/jc.2007-0553
  28. Hrabovszky E, Ciofi P, Vida B, Horvath MC, Keller E, Caraty A, Bloom SR, Ghatei MA, Dhillo WS, Liposits Z. The kisspeptin system of the human hypothalamus: sexual dimorphism and relationship with gonadotropin-releasing hormone and neurokinin B neurons. Eur J Neurosci. 2010;11:1984-1998. https://doi.org/10.1111/j.1460-9568.2010.07239.x
  29. Constantin S, Caligioni CS, Stojilkovic S, Wray S. Kisspeptin-10 facilitates a plasma membrane-driven calcium oscillator in gonadotropin releasing hormone-1 neurons. Endocrinology. 2009;3:1400-1412. https://doi.org/10.1210/en.2008-0979
  30. George JT, Veldhuis JD, Tena-Sempere M, Millar RP, Anderson RA. Exploring the pathophysiology of hypogonadism in men with type 2 diabetes: kisspeptin-10 stimulates serum testosterone and LH secretion in men with type 2 diabetes and mild biochemical hypogonadism. Clin Endocrinol (Oxf). 2013;1:100-104. https://doi.org/10.1111/cen.12103
  31. Goodman RL, Lehman MN, Smith JT, Coolen LM, de Oliveira CV, Jafarzadehshirazi MR, Pereira A, Iqbal J, Caraty A, Ciofi P, et al. Kisspeptin neurons in the arcuate nucleus of the ewe express both dynorphin A and neurokinin B. Endocrinology. 2007;12:5752-5760. https://doi.org/10.1210/en.2007-0961
  32. Skorupskaite K, George JT, Anderson RA. The kisspeptin-GnRH pathway in human reproductive health and disease. Human Reprod Update. 2014;20:4:485-500. https://doi.org/10.1093/humupd/dmu009
  33. Burke MC, Letts PA, Krajewski SJ, Rance NE. Coexpression of dynorphin and neurokinin B immunoreactivity in the rat hypothalamus: morphologic evidence of interrelated function within the arcuate nucleus. J Comp Neurol. 2006;5:712-726. https://doi.org/10.1002/cne.21086
  34. Navarro VM, Gottsch ML, Chavkin C, Okamura H, Clifton DK, Steiner RA. Regulation of gonadotropin-releasing hormone secretion by kisspeptin/dynorphin/neurokinin B neurons in the arcuate nucleus of the mouse. J Neurosci. 2009;38:11859-11866. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.1569-09.2009
  35. Cortes ME, Carrera B, Rioseco H, del Río JP, Vigil P. The role of kisspeptin in the onset of puberty and in the ovulatory mechanism: a mini-review. J Pediatr Adolescent Gynecol. 2015;28:5:286-291. https://doi.org/10.1016/j.jpag.2014.09.017
  36. Roseweir AK, Kauffman AS, Smith JT, Guerriero KA, Morgan K, Pielecka-Fortuna J, Pineda R, Gottsch ML, Tena-Sempere M, Moenter SM. Discovery of potent kisspeptin antagonists delineate physiological mechanisms of gonadotropin regulation. J Neurosci. 2009;12:3920-3929. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.5740-08.2009
  37. de Roux N, Genin E, Carel JC, Matsuda F, Chaussain JL, Milgrom E. Hypogonadotropic hypogonadism due to loss of function of the KiSS1-derived peptide receptor GPR54. Proc Natl Acad Sci USA. 2003;100:19:10972-10976. https://doi.org/10.1073/pnas.1834399100
  38. Seminara SB, Messager S, Chatzidaki EE, Thresher RR, Acierno JS Jr, Shagoury JK. The GPR54 gene as a regulator of puberty. N Engl J Med. 2003;349:17:1614-1627. https://doi.org/10.1097/00006254-200405000-00020
  39. Funes S, Hedrick JA, Vassileva G, Markowitz L, Abbondanzo S, Golovko A. The KiSS-1 receptor GPR54 is essential for the development of the murine reproductive system. Biochem Biophys Res Commun. 2003;312:1357-1363. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2003.11.066
  40. Pielecka-Fortuna J, Chu Z, Moenter SM. Kisspeptin acts directly and indirectly to increase gonadotropin-releasing hormone neuron activity and its effects are modulated by estradiol. Endocrinology. 2007;149:4:1979-1986. https://doi.org/10.1210/en.2007-1365
  41. Мельниченко Г.А., Рожинская Л.Я, Дзеранова Л.К., Пигарова Е.А., Романцова Т.И., Гринева Е.Н., Андреева Е.Н., Марова Е.И., Дедов И.И. Гиперпролактинемия. Клиника, диагностика, дифференциальная диагностика, методы лечения. Клинические рекомендации. М. 2013.
  42. Sapsford TJ, Kokay IC, Östberg L, Bridges RS, Grattan DR. Differential sensitivity of specific neuronal populations of the rat hypothalamus to prolactin action. J Comparat Neurol. 2012;520:1062-1077. https://doi.org/10.1002/cne.22775
  43. Иловайская И.А. Гиперпролактинемия без опухоли гипофиза: дифференциальная диагностика и тактика ведения пациентов. РМЖ. 2015;23:8:450-453.
  44. Дедов И.И., Мельниченко Г.А., Романцова Т.И. Синдром гиперпролактинемии. М.: Триада; 2004.
  45. Мельниченко Г.А., Марова Е.И., Дзеранова Л.К., Вакс В.В. Гиперпролактинемия у женщин и мужчин. Пособие для врачей. М. 2008.
  46. Brown RS, Piet R, Herbison AE, Grattan DR. Differential actions of prolactin on electrical activity and intracellular signal transduction in hypothalamic neurons. Endocrinology. 2012;153:5:2375-2384. https://doi.org/10.1210/en.2011-2005
  47. Grattan DR, Jasoni CL, Liu X, Anderson GM, Herbison AE. Prolactin regulation of gonadotropin-releasing hormone neurons to suppress luteinizing hormone secretion in mice. Endocrinology. 2007;148:9:4344-4351. https://doi.org/10.1210/en.2007-0403
  48. Donato JrJ, Frazão R. Interactions between prolactin and kisspeptin to control reproduction. Arch Endocrinol Metab. 2016;60:6:587-595. https://doi.org/10.1590/2359-3997000000230
  49. Brown RSE, Herbison AE. Grattan DR. Prolactin regulation of kisspeptin neurones in the mouse brain and its role in the lactation-induced suppression of kisspeptin expression. J Neuroendocrinol. 2014;26:12:898-908. https://doi.org/10.1111/jne.12223
  50. Szawka RE, Ribeiro AB, Leite CM, Helena CV, Franci CR, Anderson GM. Kisspeptin regulates prolactin release through hypothalamic dopaminergic neurons. Endocrinology. 2010;151:7:3247-3257. https://doi.org/10.1210/edrv.31.3.9988
  51. Kaiser UB. Hyperprolactinemia and infertility: new insights. JCI. 2012;22:3467-3468. https://doi.org/10.1172/jci64455
  52. Hashizume T, Saito H, Sawada T, Yaegashi T, Ezzat AA, Sawai K. Characteristics of stimulation of gonadotropin secretion by kisspeptin-10 in female goats. Anim Reprod Sci. 2010;118:1:37-41. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2009.05.017
  53. Ramaswamy S, Gibbs RB, Plant TM. Studies of the localisation of kisspeptin within the pituitary of the rhesus monkey (Macaca mulatta) and the effect of kisspeptin on the release of non-gonadotropic pituitary hormones. J Neuroendocrinol. 2009;21:10:795-804. https://doi.org/10.1111/j.1365-2826.2009.01905.x
  54. Jayasena CN, Comninos AN, Narayanaswamy S, Bhalla S, Abbara A, Ganiyu‐Dada Z, et al. Acute and chronic effects of kisspeptin‐54 administration on GH, prolactin and TSH secretion in healthy women. Clin Endocrinol. 2014;81:6:891-898. https://doi.org/10.1111/cen.12512
  55. Leite CM, Szawka RE, Anselmo-Franci JA. Alpha-oestrogen and progestin receptor expression in the hypothalamus and preoptic area dopaminergic neurones during oestrous in cycling rats. J Neuroendocrinol. 2008;20:110-119. https://doi.org/10.1111/j.1365-2826.2007.01624.x
  56. Steyn FJ, Anderson GM, Grattan DR. Expression of ovarian steroid hormone receptors in tuberoinfundibular dopaminergic neurones during pregnancy and lactation. Neuroendocrinology. 2007;19:788-793. https://doi.org/10.1111/j.1365-2826.2007.01590.x
  57. Kadokawa H, Suzuki S, Hashizume T. Kisspeptin-10 stimulates the secretion of growth hormone and prolactin directly from cultured bovine anterior pituitary cells. Anim Reprod Sci. 2008;5:105:404. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2007.11.005
  58. Jayasena CN, Nijher GM, Chaudhri OB, Murphy KG, Ranger A, Lim A, et al. Subcutaneous injection of kisspeptin-54 acutely stimulates gonadotropin secretion in women with hypothalamic amenorrhea, but chronic administration causes tachyphylaxis. J Clin Endocrinol Metab. 2009;94:11:4315-4323. https://doi.org/10.1210/endo.150.10.9996
  59. Jayasena CN, Nijher GM, Abbara A, Murphy KG, Lim A, Patel D, et al. Twice-weekly administration of kisspeptin-54 for 8 weeks stimulates release of reproductive hormones in women with hypothalamic amenorrhea. Clin Pharmacol Ther. 2010;88:6:840-847. https://doi.org/10.1038/clpt.2010.204
  60. Jayasena CN, Abbara A, Comninos AN, Nijher GMK, Christopoulos G, Narayanaswamy SI. Kisspeptin-54 triggers egg maturation in women undergoing in vitro fertilization. J Clin Invest. 2014;124:8:3667-3677. https://doi.org/10.3410/f.718496354.793499344
  61. Castellano JM, Navarro VM, Fernandez-Fernandez R, Nogueiras R, Tovar S, Roa J, Vazquez MJ, Vigo E, Casanueva FF, Aguilar E. Changes in hypothalamic KiSS-1 system and restoration of pubertal activation of the reproductive axis by kisspeptin in undernutrition. Endocrinology. 2005;9:3917-3925. https://doi.org/10.1210/en.2005-0337
  62. Nejad SZ, Tehrani FR, Zadeh-Vakili A. The role of kisspeptin in female reproduction. Int J Endocrinol Metab. 2015;15:3. https://doi.org/10.5812/ijem.44337

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.