Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Аракелян А.С.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В.И. Кулакова» Минздрава России

Попрядухин А.Ю.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В.И. Кулакова» Минздрава России

Карапетян Э.А.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Генетические факторы развития синдрома Майера—Рокитанского—Кюстера—Хаузера (аплазии матки и влагалища)

Авторы:

Аракелян А.С., Попрядухин А.Ю., Карапетян Э.А.

Подробнее об авторах

Журнал: Проблемы репродукции. 2020;26(5): 43‑50

Прочитано: 5728 раз


Как цитировать:

Аракелян А.С., Попрядухин А.Ю., Карапетян Э.А. Генетические факторы развития синдрома Майера—Рокитанского—Кюстера—Хаузера (аплазии матки и влагалища). Проблемы репродукции. 2020;26(5):43‑50.
Arakelyan AS, Popryadukhin AYu, Karapetyan EA. Genetic factors in the development of the Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser syndrome (aplasia of the uterus and vagina). Russian Journal of Human Reproduction. 2020;26(5):43‑50. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/repro20202605143

Рекомендуем статьи по данной теме:

История и эмбриогенез

Женская репродуктивная система человека включает в себя матку, шейку матки, фаллопиевы трубы, яичники и влагалище. Принято считать, что фаллопиевы трубы, матка, шейка матки и верхние две трети влагалища берут свое начало из парамезонефрических (мюллеровых) протоков, тогда как нижняя часть влагалища образуется из урогенитального синуса [1, 2]. Формирование мюллеровых протоков начинается примерно на 5—6-й неделе гестации в виде билатеральных краниокаудальных инвагинаций целомического эпителия мочеполовых гребней (промежуточная мезодерма), растущих каудально по мезонефрическим (вольфовым) протокам и достигающих урогенитального синуса. Каудальная часть двух мюллеровых протоков сливается, образуя матку, шейку матки и верхнюю часть влагалища, тогда как верхние части образуют два яйцевода (маточные трубы). Синдром Майера—Рокитанского—Кюстера—Хаузера (МРКХ) вызывается либо полным агенезом, либо аплазией парамезонефрических протоков с образованием матки и верхней части влагалища [3].

Синдром Майера—Рокитанского—Кюстера—Хаузера (СМРКХ) имеет давнюю историю и тем самым оправдывает свое длинное название. Впервые немецкий анатом C. Mayer в 1829 г. описал врожденное отсутствие влагалища как одну из особенностей мертворожденных плодов с множественными врожденными аномалиями [4]. Немного позднее, в 1838 г., австрийский врач и патологоанатом K. Rokitansky определил, что аплазия влагалища часто сочетается с отсутствием матки, однако при этом анатомия и функция яичников не нарушены. H. Küster в 1910 г. описал несколько случаев, отметив типичное сочетание этого порока с аномалиями скелета и почек [5, 6]. И только швейцарский гинеколог G. Hauser в 1961 г. подтвердил связь между аплазией матки и влагалища и аномалиями развития скелета и почек, и синдром получил свое полное название [7].

В зарубежной литературе представлены и другие названия данного синдрома, такие как CAUV-синдром (Congenital Absence of the Uterus and Vagina), MA-синдром (Mullerian Aplasia), GRES-синдром (Genital Renal Ear Syndrome) [8].

Классификация и фенотипические проявления

СМРКХ, который также именуется как аплазия матки и влагалища, является второй по частоте причиной первичной аменореи и вдобавок приводит к проблемам, связанным с половой жизнью. Для него характерно врожденное отсутствие матки, шейки матки и влагалища у фенотипически нормальных девочек с кариотипом 46, XX. Частота встречаемости данного синдрома наблюдается примерно в соотношении 1/4000—5000 новорожденных девочек. В литературе описано два типа СМРКХ: тип I включает только аплазию матки и влагалища с нормальным развитием яичников и других систем, а тип II, или MURCS-ассоциация (Mullerian duct aplasia, Renal dysplasia and Cervical Somite anomalies), включает аплазию матки и влагалища и сопутствующие дефекты, такие как пороки развития почек, скелета (чаще в шейно-грудном отделе), дефекты слуха и редкие сердечные аномалии [9].

Число женщин с I типом составляет примерно 44% случаев СМРКХ, он характеризуется полной аплазией матки при наличии двух симметричных рудиментарных рогов, соединенных перитонеальной складкой. В свою очередь, рудиментарные рога могут быть как функционирующими с эндометриальной тканью, так и нефункционирующими. У таких пациенток поражается только каудальная часть мюллерова протока (верхняя часть влагалища, шейка матки и матка) и нет сопутствующих пороков развития. Зачастую данный порок развития диагностируется в подростковом возрасте из-за первичной аменореи [10].

СМРКХ II типа наблюдается сравнительно чаще — на данную форму приходится примерно 56% случаев [11].

Для этой формы характерна дополнительная асимметричная гипоплазия одной или двух почек с дисплазией или без дисплазии одной или обеих маточных труб. Часто наблюдаются другие сочетанные аномалии, в частности почечные дефекты (у 40—60% пациентов), включая одностороннюю агенезию (23—28%), или эктопию одной или обеих почек (17%), или подковообразную почку [12, 13].

Нередко встречаются различные пороки развития скелета, в то время как пороки развития сердца и нарушения слуха встречаются гораздо реже [8].

Скелетные аномалии обычно затрагивают позвоночник (30—40%) и реже лицо и конечности. Сколиоз встречается в 20% случаев. Аномалия Клиппеля—Фейля представляет собой слияние минимум двух шейных сегментов, короткую шею, низкую линию роста волос и ограничение движений шеи [14]. Деформация Шпренгеля — это врожденное одно- или двусторонее высокое стояние лопаток [15].

В литературе агенезия женских половых органов может встречаться в сочетании с другими редкими синдромами, такими как синдром McKusick—Kaufman (ген MKKS, локус 20p12), для которого характерно сочетание трех признаков: дополнительные пальцы рук и/или ног (полидактилия), пороки сердца и аномалии половых органов; синдром Bardet—Biedl (ген MKKS, локус 20p12 и ряд других генов в разных хромосомах) — потеря зрения, аносмия, ожирение, полидактилия, короткие или сросшиеся пальцы рук или ног, гипогонадизм, бесплодие; синдром Wolf—Hirschhom (делеции хромосомы 4р16.3), основные признаки которого включают характерный внешний вид лица, задержку роста и развития, умственную отсталость, низкий мышечный тонус (гипотонию) и судороги; синдром Goldenhar — редкий врожденный дефект, характеризующийся неполным развитием уха, носа, мягкого нёба, губ и нижней челюсти, как правило, на одной стороне тела [16].

Слуховые дефекты или глухота возникают из-за пороков развития среднего уха или в результате нейросенсорных дефектов различной степени тяжести [17].

Гены и хромосомные аномалии

В настоящее время генетика СМРКХ остается недостаточно изученной, трудности заключаются в выявлении единственной генетической причины данного заболевания. Поиск молекулярной основы СМРКХ продолжается, но в настоящее время лечение включает в себя только метод создания неовлагалища. Такой способ лечения должен быть предложен пациенткам лишь тогда, когда они эмоционально зрелы и готовы начать половую жизнь. На сегодняшний день применяется нехирургический метод кольпоэлонгации и хирургический кольпопоэз из тазовой брюшины / сигмовидной кишки для улучшения качества жизни и удовлетворения сексуальной функции [18].

Клиническое применение трансплантации матки для деторождения пациенток с СМРКХ находится в стадии изучения и клинических испытаний по всему миру. Впервые M. Brännström успешно провел трансплантацию матки человеку в 2013 г. в Швеции. Матка пожертвована живой 61-летней женщиной (донор), родившей двоих детей, 35-летней женщине (реципиент) с аплазией матки и влагалища. Спустя год после трансплантации с помощью процедуры экстракорпорального оплодотворения наступила беременность. В результате пациентка госпитализирована на 31-й неделе беременности с преэклампсией, выполнены оперативные роды с помощью кесарева сечения. Родился здоровый мальчик: 9—10 баллов по шкале APGAR. Следует отметить, что данный метод является перспективным и многообещающим, однако пока широко не применяется. Дороговизна и ряд ограничений, таких как отторжение органа, поиск донора, осложнения во время беременности, обусловливают необходимость дальнейшего изучения этого способа лечения при аплазии матки и влагалища [19].

Гетерогенность СМРКХ предполагает наличие молекулярных дефектов на пути развития внутренних органов, тесно связанных в процессе эмбриогенеза. Действительно, СМРКХ проявляется в результате возникновения повреждений на сроке 5—6 нед беременности, поражая промежуточную мезодерму и приводя к слиянию мюллеровых протоков. Почечная система также развивается из мезодермы, что и объясняет агенезию почек или эктопию, часто ассоциированную с СМРКХ [20].

Долгое время синдром считался спорадической аномалией, но увеличивающееся число семейных случаев подтверждает гипотезу генетической причины. В семейных случаях синдром передается как аутосомно-доминантный признак с неполной пенетрантностью и переменной выразительностью. Это предполагает вовлечение либо мутаций в основном гене развития, либо более ограниченного хромосомного дисбаланса.

Семейство WNT включает группу генов, участвующих в эмбриональном развитии. Более того, гены WNT играют хорошо известную роль в развитии мочеполовой системы млекопитающих [21, 22]. Среди ряда генов данной группы наиболее известный — WNT4 является основным геном, определяющим пол, и необходим для инвагинации целомических эпителиоцитов [23], в то время как WNT9b экспрессируется эпителием вольфовых протоков и способствует удлинению мюллеровых протоков [21]. Нокаутные мыши WNT9b демонстрируют МРКХ-подобный фенотип с отсутствием матки и верхней части влагалища и нормальными яичниками [21]. У человека WNT4 — первый ген, ассоциированный с дефектами развития матки и сопутствующим гиперандрогенизмом. Мутация WNT4 ингибирует репрессию стероидных ферментов яичников и вызывает аномальную экспрессию 17α-гидроксилазы, вызывая у этих пациентов гиперандрогению. В своих исследованиях A. Biason-Lauber и соавт. выявили мутации в гене WNT4 только у 4 пациентов с СМРКХ и гиперандрогенией [23—25].

Известно, что белок Wnt4 подавляет гены, кодирующие стероидогенные ферменты CYP17A1 и HSB3B2, которые необходимы для синтеза тестостерона [23]. Мутировавший WNT4 не может подавлять экспрессию андроген-синтезирующих ферментов в клетках яичников, что приводит к проявлению гиперандрогенного фенотипа [24, 25].

Синонимичные изменения также наблюдались и в исследованиях P. Philibert и соавт., которые провели функциональный анализ ДНК у 28 девочек-подростков с первичной аменореей и аплазией матки и влагалища. Путем прямого секвенирования идентифицирована новая мутация L12P в экзоне 1 гена WNT4. Функциональный анализ показал, что мутация индуцирует значительно повышенную экспрессию ферментов, участвующих в биосинтезе андрогенов (3β-гидроксистероиддегидрогеназы и 17α-гидроксилазы) [26]. Поэтому сделано предположение, что СМРКХ с признаками андрогенизации за счет гетерозиготных мутаций WNT4 — это отдельная клиническая ситуация, которую можно отличить от классического СМРКХ.

Мутации в гене WNT7 вызывают различные пороки развития конечностей с дополнительными пороками развития мочеполовой системы. C. Ravel и соавт. не наблюдали в своей когорте из 11 пациентов с СМРКХ мутации в гене WNT7A [27]. Исследователи утверждают, что мутации WNT7A у человека больше связаны с рядом гиподисплазий конечностей, включая синдром Fuhrmann (нелетальный порок развития конечностей с различной степенью аплазии/гипоплазии конечностей и дисплазии суставов. Основные проявления включают гипоплазию таза, аплазию или гипоплазию малоберцовых костей, сильное искривление бедер, отсутствие ногтей и полидактилию) и Al-Awadi/Raas-Rothschild/Schinzel phocomelia syndrome — AARRS (редкое аутосомно-рецессивное заболевание, характеризующееся тяжелыми пороками развития верхних и нижних конечностей с выраженной гипоплазией таза и аномальными гениталиями) [28].

В 2014 г. M. Wang и соавт. сообщили о первой мутации WNT9B, связанной с СМРКХ в китайской популяции; однако другое исследование не подтвердило эту ассоциацию [29, 30]. Возможная роль мутаций WNT9B в СМРКХ выявлена в недавнем исследовании, в котором авторы обнаружили 5 гетерозиготных миссенс-мутаций и гетерозиготную нонсенс-мутацию у пациентов с СМРКХ I типа [31].

Интересно, что A. Pedersen и соавт. обнаружили дополнительные изменения, возможно, связанные с мутациями WNT9B и фенотипом СМРКХ: делецию в хромосомной области 17q12, включающую ген LHX1, подтвержденную связью этого гена с экспрессией WNT9b в мышиной модели, и мутацию в TBX6. Таким образом, у этих пациентов специфический фенотип может быть результатом совместного возникновения мутаций WNT9B и делеции LHX1 или мутации TBX6 [32].

Гены, содержащие гомеобокс, принадлежат к большому семейству, включающему кластеры HOX. Некоторые из Hox-генов (Hoxa9—13 и Hoxb9—13) играют решающую роль в развитии женских репродуктивных путей и поэтому считаются предполагаемой причиной СМРКХ [33].

У человека мутации в гене HOXA13 или делеция кластера генов HOXA в основном затрагивают мочеполовой тракт и скелет. Мутации в кодирующей области HOXA13 вызывают ладонно-генитальный синдром (HFGS), который характеризуется пороками развития кистей рук, гипоспадией у мужчин, дефектами слияния мюллерова протока у женщин (от продольной перегородки влагалища до удвоения матки и шейки) и пороками развития мочевыводящих путей у женщин [34, 35]. Отмечено, что делеция всего кластера HOXA не вызывает большего количества урогенитальных аномалий, чем одиночные моноаллельные мутации HOXA13 [36]. Либо моноаллельные доминантные мутации в HOXA9, -A10 или -A11 могут быть причиной СМРКХ, либо это может быть связано с другими механизмами, такими как неправильная регуляция генов HOXA, влияющая либо на скорость транскрипции, либо на пространственно-временную экспрессию: недавнее открытие мутации в промоторе гена HOXA13 [37] подтверждает эту гипотезу.

HOXA9 экспрессируется в фаллопиевых трубах, HOXA10 — в матке, HOXA11 — в матке и шейке матки, а HOXA13 — в верхней части влагалища [38].

Самки мышей с нокаутом по HOXA9—13 обнаруживают аномалии развития мочеполового аппарата [39]. Более того, также сообщалось о роли HOXA9—11 в развитии почек [40]. Несмотря на их центральную роль, никаких патогенных мутаций в этих генах у пациентов с СМРКХ не выявлено [41].

Ассоциация SHOX, еще одного члена семейства гомеобокс-содержащих генов, с СМРКХ идентифицирована у пациентов с дупликациями гена SHOX [42]. Мутации SHOX связаны с дефектами развития и аномалиями скелета [43]. У пациентов с СМРКХ гетерозиготная дупликация гена SHOX, включающая экзоны 4 и 5 и часть экзона 6, первоначально обнаружена у двух пораженных сестер и их здорового отца. Включение в анализ еще 28 женщин с СМРКХ привело к выявлению дупликаций HOXA у трех неродственных пациенток [42].

Гены с широким спектром активности в раннем развитии (например, WT1 [44], PAX2 [45], HOXA7, HOXA13 [41] и PBX1 [42]) также предложены в качестве кандидатов на основе наблюдаемых фенотипов у мутантных мышей. Однако их роль в развитии СМРКХ впоследствии не подтверждена.

Научный интерес вызывают данные о том, что у одного из монозиготных близнецов развивается СМРКХ, а у другого нет, это означает, что заболевание обусловлено различиями в фенотипе. Таким образом, патогенетический механизм СМРКХ может включать эпигенетические изменения, обусловленные экологическими факторами [42]. K. Rall и соавт. [46] исследовали различия в продуктах транскрипции и уровнях метилирования у пациентов с СМРКХ и у здоровых добровольцев с помощью общегеномного анализа. Анализ микрочипов выявил 293 продукта транскрипции с различными уровнями экспрессии и 194 CpG-островка с различными паттернами метилирования по сравнению с таковыми у здоровых добровольцев. Оценивали два кластера генов, 9 потенциально причинных генов (HOXA5, HOXA9, WISP2, CDH5, PEG10, MFAP5, LRRC32, RALGPS2 и ralgps2) идентифицированы, 6 из этих генов (CDH5, MFAP5, WISP2, HOXA5, PEG10 и HOXA9) участвуют в развитии женских половых органов. Последующие сетевые анализы выявили WISP2, HOXA5, HOXA9, GATA4 и WT1 в качестве причины развития СМРКХ.

WT1 и GATA4 регулируют определение и дифференцировку пола с помощью антимюллерова гормона (АМГ) [47]. WT1 и GATA4 деметилируются у пациентов с СМРКХ по сравнению со здоровыми добровольцами. WT1 и GATA4 способствуют экспрессии АМГ, что приводит к дегенерации мюллерова протока. Активирующая мутация гена рецептора АМГ, приводящая к неадекватной избыточной продукции АМГ либо самого рецептора, является основной причиной развития СМРКХ [46]. Эктопическая экспрессия HOXA9 приводит к аномалии развития верхнего мюллерова протока [48, 49]. Кроме того, HOXA5 является фактором транскрипции р53 и рецептора прогестерона [50]. Эктопическая экспрессия HOXA5, как и HOXA9, ингибирует дифференцировку мюллеровых протоков [51].

WISP2 играет важную роль в пролиферации и миграции гладкомышечных клеток и индуцируется эстрогеном в матке [52]. Эстроген регулирует уровень экспрессии АМГ [52], а чрезмерное воздействие эстрогена во время развития активирует промоторы АМГ [46]. Воздействие на плод эндокринно-разрушающих химических веществ способствует внематочной экспрессии генов HOXA. K. Rall и соавт. [46] предположили, что чрезмерное воздействие эстрогена и эктопическая экспрессия HOXA могут привести к гипоплазии женских половых органов и вызвать СМРКХ.

Альтернативный подход, основанный либо на очевидной ассоциации с другими генетическими заболеваниями, либо на плейотропном действии во время эмбриогенеза и последующих проявлениях в виде дефектов развития, привел к исследованию нескольких генов [53].

Проанализирована генетическая ассоциация СМРКХ с галактоземией [54] или с муковисцидозом [55], но ни ген галактозо-1-фосфатуридилтрансферазы (GALT) [56], ни ген, кодирующий трансмембранный регулятор муковисцидоза (CFTR) [55], не имели каких-либо мутаций или полиморфизма, связанных с этим заболеванием.

СМРКХ в основном носит спорадический характер, однако описаны семейные случаи, указывающие на то, что по крайней мере у некоторых пациентов СМРКХ может быть наследственным заболеванием [57, 58].

На сегодняшний день зарегистрировано только 68 случаев семейного СМРКХ [58].

Синдром демонстрирует аутосомно-доминантный тип наследования с неполной пенетрантностью и переменной экспрессивностью. Недавно M. Herlin и соавт. (2019) сообщили об уникальной семье из трех поколений, состоящей из двух двоюродных сестер с СМРКХ и односторонней аплазией почки и двух умерших мужчин-родственников, также имевших аплазию почки [58]. Выполнено полное экзомное секвенирование у восьми членов семьи, что привело к идентификации нового патогенного миссенс-варианта в GREB1L, гене, недавно идентифицированном как новая причина аплазии почки. L. De Tomasi и соавт. в своем исследовании описали случаи лиц женского пола с аплазией матки и аплазией почки, подтверждающие, что ген GREB1L играет важную роль в развитии почек и женских половых путей [59]. M. Herlin и соавт. утверждают, что GREB1L — новый и перспективный ген-кандидат в этиологические факторы развития этиологии СМРКХ [58, 60].

Связь гена TCF2 (ранее v-HNF1 или HNF-1β) первоначально обнаружена с сахарным диабетом, почечными кистами и другими нарушениями развития почек [61, 62]. Следует отметить, что генитальные пороки развития, такие как двурогая матка [63], аплазия мюллеровых протоков [64], иногда обнаруживались в сочетании с аномалиями почек в некоторых семейных случаях, демонстрирующих мутации в гене TCF2. Дефектами этого гена можно объяснить некоторые редкие случаи генитальных пороков развития, включая аплазию, что позволяет предположительно подтвердить генетическую связь с СМРКХ, но наблюдения ограничиваются семейными случаями с почечным и/или диабетическим анамнезом.

Сообщалось также о случаях носительства хромосомных аномалий при СМРКХ, затрагивающих хромосомы 1—7, 10—18, 22 и X, но сравнение результатов различных исследований выявило только 5 повторяющихся делеций/дупликаций в хромосомных областях 1q21.1, 16p11.2, 17q12, 22q11.21 и Xp22 [65—71]. В целом эти изменения выявлены у 28 пациентов с СМРКХ и составляют примерно 10% случаев СМРКХ. Подробно описаны 2 делеции 0,4—4,6 Mb [68, 72] и 2 унаследованные дупликации 0,26—2,7 Mb [66, 72], вовлекающие область 1q21. Что касается 16p11.2, такая же делеция 0,6 Mb зарегистрирована у 4 неродственных пациентов с СМРКХ [70]. Делеция 1,2—1,8 Mb в 17q12 является наиболее частой перестройкой, описанной у 11 пациентов и ассоциированной с вариабельным фенотипом СМРКХ [66—68, 70—72]. Область 22q11 участвует в 5 делециях [65, 66, 68, 70] размером от 390 kb до 2,6 Mb и в 2 дупликациях размером 0,6—3,5 Mb [66, 68]. Эти две дупликации составляют часть сложного кариотипа, включающего дополнительные хромосомные аномалии, и у одного из двух пациентов [66] они унаследованы от здоровой матери. Наконец, дупликации Xp22 зарегистрированы в 7 случаях СМРКХ, включая двух сестер [42, 68, 71]. Интересно, что ген SHOX картируется в этой хромосомной области и, по-видимому, дублируется у подгруппы пациентов с СМРКХ [42]. Восемь перестроек считались de novo: 4 делеции 17q12 [66, 67, 71], 1 случай с делецией 22q11 [66], делеции 1q21 и 1q44 [72] и 1 дупликация Xp22 [42]. Напротив, 2 дупликации в 22q11 и 1q21, выявленные у одной и той же пациентки, унаследованы от здоровой матери [66], что ставит под сомнение их роль в патогенезе. Унаследованные от отца хромосомные изменения, о которых сообщалось в 5 случаях (дупликация 1q21, делеции 13q21 и 15q26 и дупликация Xp22 у двух сестер), по-видимому, не были патогенными для здорового отца, но стали причиной развития заболевания у дочери. Несмотря на эти данные, отсутствие информации о наследовании для всех других случаев СМРКХ затрудняет определение четкого патогенетического вклада в эти перестройки. Дополнительная сложность в выявлении патогенных эффектов перестроек возникает из-за фенотипической изменчивости пациентов. Фенотипы пациентов с СМРКХ с хромосомным дисбалансом варьируют от изолированной мюллеровой аномалии до сложных синдромных признаков, включая тип 2/MURCS, и различные клинические проявления также могут быть связаны с одной и той же хромосомной перестройкой.

Заключение

Генетическая гетерогенность, вероятно, недооценена, потому что большинство исследований на сегодняшний день основано на «гене-кандидате», в то время как следует применять более широкие методы, такие как полное секвенирование экзома, особенно в семейных случаях, чтобы идентифицировать новые причинные гены и уточнить характер наследования и пенетрантности. Кроме того, открытие новых генов, вызывающих синдром Майера—Рокитанского—Кюстера—Хаузера, также расширит знания о молекулярных путях, играющих роль в развитии женского репродуктивного тракта. Только анализ больших когорт пациентов с синдромом Майера—Рокитанского—Кюстера—Хаузера, безусловно, поможет определить новые гены-кандидаты в этиологические факторы развития данного заболевания и установить фенотип / генотипические корреляции, необходимые для генетического анализа и диагностики синдрома.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

The authors declare no conflicts of interest.

Литература / References:

  1. Адамян Л.В., Спицын В.А., Андреева Е.Н. Генетические аспекты гинекологических заболеваний. М.: Медицина; 1998.
  2. Kobayashi A, Behringer RR. Developmental genetics of the female reproductive tract in mammals. Nature Reviews. Genetics. 2003;4(12): 969-980.  https://doi.org/10.1038/nrg1225
  3. Cunha GR, Robboy SJ, Kurita T, Isaacson D, Shen J, Cao M, Baskin LS. Development of the human female reproductive tract. Differentiation; Research in Biological Diversity. 2018;103:46-65.  https://doi.org/10.1016/j.diff.2018.09.001
  4. Mayer CAJ. Uher Verdoppelungen des Uterus und ihre Arten, Nebst Bemerkungen über Hasenscharte and Wolfsrachen. Chir Auger. 1829; 13:525-564. 
  5. Rokitansky K. Uber die sogenannten Verdoppelungen des Uterus. Med JB Obst Staat. 1838;26:39-77. 
  6. Kuster H. Uterus bipartitus solidus rudimentarius cum vagina solida. Z Geg Gyn. 1910;67:692-718. 
  7. Hauser GA, Schreiner WE. Das Mayer-Rokitansky-Küster-Syndrom. Schweizerische Medizinische Wochenschrift. 1961;91:381-384. 
  8. Morcel K, Camborieux L. Programme de Recherches sur les Aplasies Mullerienes and Guerrier D. Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser syndrome. Orphanet Journal of Rare Diseases. 2007;2:13.  https://doi.org/10.1186/1750-1172-2-13
  9. Ledig S, Wieacker P. Clinical and genetic aspects of Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser syndrome. Medizinische Genetik. 2018; 30(1):3-11.  https://doi.org/10.1007/s11825-018-0173-7
  10. Strübbe EH, Cremers CW, Willemsen WN, Rolland R, Thijn CJ. The Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser (MRKH) syndrome without and with associated features: two separate entities? Clinical Dysmorphology. 1994;3(3):192-199. 
  11. Duncan PA, Shapiro LR, Stangel JJ, Klein RM, Addonizio JC. The MURCS association: mullerian duct aplasia, renal aplasia, and cervicothoracic somite dysplasia. The Journal of Pediatrics. 1979;95(3): 399-402.  https://doi.org/10.1016/s0022-3476(79)80514-4
  12. Basile C, De Michele V. Renal abnormalities in Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser syndrome. Journal of Nephrology. 2001;14(4): 316-318. 
  13. Pittock ST, Babovic-Vuksanovic D, Lteif A. Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser anomaly and its associated malformations. American Journal of Medical Genetics. Part A. 2005;135(3):314-316.  https://doi.org/10.1002/ajmg.a.30721
  14. Strübbe EH, Lemmens JA, Thijn CJ, Willemsen WN, van Toor BS. Spinal abnormalities and the atypical form of the Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser syndrome. Skeletal Radiology. 1992;21(7):459-462.  https://doi.org/10.1007/BF00190992
  15. Cremers CW, Strubbe EH, Willemsen WN. Stapedial ankylosis in the Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser syndrome. Archives of Otolaryngology — Head and Neck Surgery. 1995;121:800-803.  https://doi.org/10.1001/archotol.1995.01890070086018
  16. Бобкова М.В., Баранова Е.Е., Адамян Л.В. Генетические аспекты формирования аплазии влагалища и матки: история изучения. Проблемы репродукции. 2015;21(3):10-15.  https://doi.org/10.17116/repro201521310-15
  17. Letterie GS, Vauss N. Mullerian tract abnormalities and associated auditory defects. The Journal of Reproductive Medicine. 1991;36(11): 765-768. 
  18. Адамян Л.В., Кулаков В.И., Хашукоева А.З. Пороки развития матки и влагалища. М.: Медицина; 1998.
  19. Brännström M, Johannesson L, Bokström H, Kvarnström N, Mölne J, Dahm-Kähler P, Enskog A, Milenkovic M, Ekberg J, Diaz-Garcia C, Gäbel M, Hanafy A, Hagberg H, Olausson M, Nilsson L. Livebirth after uterus transplantation. The Lancet. 2015; 385(9968):607-616.  https://doi.org/10.1016/S0140-6736(14)61728-1
  20. Ludwig KS. The Mayer—Rokitansky—Küster syndrome. An analysis of its morphology and embryology. Part II: Embryology. Archives of Gynecology and Obstetrics. 1998;262(1-2):27-42.  https://doi.org/10.1007/s004040050225
  21. Carroll TJ, Park JS, Hayashi S, Majumdar A, McMahon AP. Wnt9b plays a central role in the regulation of mesenchymal to epithelial transitions underlying organogenesis of the mammalian urogenital system. Developmental Cell. 2005;9(2):283-292.  https://doi.org/10.1016/j.devcel.2005.05.016
  22. Halt K, Vainio S. Coordination of kidney organogenesis by Wnt signaling. Pediatric Nephrology. 2014;29(4):737-744.  https://doi.org/10.1007/s00467-013-2733-z
  23. Vainio S, Heikkilä M, Kispert A, Chin N, McMahon AP. Female development in mammals is regulated by Wnt-4 signalling. Nature. 1999;397(6718):405-409.  https://doi.org/10.1038/17068
  24. Biason-Lauber A, De Filippo G, Konrad D, Scarano G, Nazzaro A, Schoenle EJ. WNT4 deficiency-a clinical phenotype distinct from the classic Mayer-Rokitansky-Kuster-Hauser syndrome: a case report. Human Reproduction. 2007;22(1):224-229.  https://doi.org/10.1093/humrep/del360
  25. Biason-Lauber A, Konrad D, Navratil F, Schoenle EJ. A WNT4 mutation associated with Müllerianduct regression and virilization in a 46, XX woman. The New England Journal of Medicine. 2004; 351(8):792-798.  https://doi.org/10.1056/NEJMoa040533
  26. Philibert P, Biason-LauberA, Rouzier R, Pienkowski C, Paris F, Konrad D, Schoenle E, Sultan C. Identification and functional analysis of a new WNT4 gene mutation among 28 adolescent girls with primary amenorrhea and Mullerian duct abnormalities: a French collaborative study. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 2008;93:895-900.  https://doi.org/10.1210/jc.2007-2023
  27. Ravel C, Lorenço D, Dessolle L, Mandelbaum J, McElreavey K, Darai E, Siffroi JP. Mutational analysis of the WNT gene family in women with Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser syndrome. Fertility and Sterility. 2009;91(4):1604-1607. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2008.12.006
  28. Woods CG, Stricker S, Seemann P, Stern R, Cox J, Sherridan E, Roberts E, Springell K, Scott S, Karbani G, Sharif SM, Toomes C, Bond J, Kumar D, Al-Gazali L, Mundlos S. Mutations in WNT7A cause a range of limb malformations, including Fuhrmann syndrome and Al-Awadi/Raas-Rothschild/Schinzel phocomelia syndrome. American Journal of Human Genetics. 2006;79(2):402-408.  https://doi.org/10.1086/506332
  29. Wang M, Li Y, Ma W, Li H, He F, Pu D, Su T, Wang S. Analysis of WNT9B mutations in Chinese women with Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser syndrome. Reproductive Biomedicine Online. 2014; 28(1):80-85.  https://doi.org/10.1016/j.rbmo.2013.09.022
  30. Tang R, Dang Y, Qin Y, Zou S, Li G, Wang Y, Chen ZJ. WNT9B in 542 Chinese women with Müllerian duct abnormalities: mutation analysis. Reproductive Biomedicine Online. 2014;28(4):503-507.  https://doi.org/10.1016/j.rbmo.2013.11.011
  31. Waschk DE, Tewes AC, Römer T, Hucke J, Kapczuk K, Schippert C, Hillemanns P, Wieacker P, Ledig S. Mutations in WNT9B are associated with Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser syndrome. Clinical Genetics. 2016;89(5):590-596.  https://doi.org/10.1111/cge.12701
  32. Pedersen A, Skjong C, Shawlot W. Lim 1 is required for nephric duct extension and ureteric bud morphogenesis. Developmental Biology. 2005;288(2):571-581.  https://doi.org/10.1016/j.ydbio.2005.09.027
  33. Massé J, Watrin T, Laurent A, Deschamps S, Guerrier D, Pellerin I. The developing female genital tract: from genetics to epigenetics. The International Journal of Developmental Biology. 2009;53(2-3): 411-424.  https://doi.org/10.1387/ijdb.082680jm
  34. Mortlock DP, Innis JW. Mutation of HOXA13 in hand-foot-genital syndrome. Nature Genetics. 1997;15(2):179-180.  https://doi.org/10.1038/ng0297-179
  35. Goodman FR, Bacchelli C, Brady AF, Brueton LA, Fryns JP, Mortlock DP, Innis JW, Holmes LB, Donnenfeld AE, Feingold M, Beemer FA, Hennekam RC, Scambler PJ. Novel HOXA13 mutations and the phenotypic spectrum of hand-foot-genital syndrome. American Journal of Human Genetics. 2000;67(1):197-202.  https://doi.org/10.1086/302961
  36. Devriendt K, Jaeken J, Matthijs G, Van Esch H, Debeer P, Gewillig M, Fryns JP. Haploin sufficiency of the HOXA gene cluster, in a patient with hand-foot-genital syndrome, velopharyngeal insufficiency, and persistent patent Ductus botalli. American Journal of Human Genetics. 1999;65(1):249-251.  https://doi.org/10.1086/302452
  37. Innis JW, Goodman FR, Bacchelli C, Williams TM, Mortlock DP, Sateesh P, Scambler PJ, McKinnon W, Guttmacher AE. A HOXA13 allele with a missense mutation in the homeobox and a dinu- cleotide deletion in the promoter underlies Guttmacher syndrome. Human Mutation. 2002;19(5):573-574.  https://doi.org/10.1002/humu.9036
  38. Taylor HS, Vanden Heuvel GB, Igarashi P. A conserved Hox axis in the mouse and human female reproductive system: late establishment and persistent adult expression of the Hoxa cluster genes. Biology of Reproduction. 1997;57(6):1338-13345. https://doi.org/10.1095/biolreprod57.6.1338
  39. Raines AM, Adam M, Magella B, Meyer SE, Grimes HL, Dey SK, Potter SS. Recombineering-based dissection of flanking and paralogous Hox gene functions in mouse reproductive tracts. Development. 2013;140(14):2942-2952. https://doi.org/10.1242/dev.092569
  40. Patterson LT, Potter SS. Atlas of Hox gene expression in the developing kidney. Developmental Dynamics. 2004;229(4):771-779.  https://doi.org/10.1002/dvdy.10474
  41. Burel A, Mouchel T, Odent S, Tiker F, Knebelmann B, Pellerin I, Guerrier D. Role of HOXA7 to HOXA13 and PBX1 genes in various forms of MRKH syndrome (congenital absence of uterus and vagina). Journal of Negative Results in Biomedicine. 2006;5:4.  https://doi.org/10.1186/1477-5751-5-4
  42. Gervasini C, Grati FR, Lalatta F, Tabano S, Gentilin B, Colapietro P, De Toffol S, Frontino G, Motta F, Maitz S, Bernardini L, Dallapiccola B, Fedele L, Larizza L, Miozzo M. SHOX duplications found in some cases with type I Mayer-Rokitansky-Kuster-Hauser syndrome. Genetics in Medicine. 2010;12(10):634-640.  https://doi.org/10.1097/GIM.0b013e3181ed6185
  43. Tiecke E, Bangs F, Blaschke R, Farrell ER, Rappold G, Tickle C. Expression of the short stature homeobox gene Shox is restricted by proximal and distal signals in chick limb buds and affects the length of skeletal elements. Developmental Biology. 2006;298(2):585-596.  https://doi.org/10.1016/j.ydbio.2006.07.008
  44. van Lingen BL, Reindollar RH, Davis AJ, Gray MR. Further evidence that the WT1 gene does not have a role in the development of the derivatives of the mullerian duct. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 1998;179(3):597-603.  https://doi.org/10.1016/s0002-9378(98)70051-1
  45. van Lingen BL, Reindollar RH, Davis AJ, Gray MR. Molecular genetic analysis of the PAX2 gene in patients with congenital absence of the uterus and vagina. Fertility and Sterility. 1998;70:S402.
  46. Rall K, Barresi G, Walter M, Poths S, Haebig K, Schaeferhoff K, Schoenfisch B, Riess O, Wallwiener D, Bonin M, Brucker S. A combination of transcriptome and methylation analyses reveals embryologically — relevant candidate genes in MRKH patients. Orphanet Journal of Rare Diseases. 2011;6:32.  https://doi.org/10.1186/1750-1172-6-32
  47. Miyamoto Y, Taniguchi H, Hamel F, Silversides DW, Viger RS. A GATA4/WT1 cooperation regulates transcription of genes required for mammalian sex determination and differentiation. BMC Molecular Biology. 2008;9:44.  https://doi.org/10.1186/1471-2199-9-44
  48. Taylor HS. Endocrine disruptors affect developmental programming of HOX gene expression. Fertility and Sterility. 2008;89(2):57-58.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2007.12.030
  49. Suzuki A, Urushitani H, Sato T, Kobayashi T, Watanabe H, Ohta Y, Iguchi T. Gene expression change in the Müllerian duct of the mouse fetus exposed to diethylstilbestrol in utero. Experimental Biology and Medicine. 2007;232(4):503-514. 
  50. Sauter CN, McDermid RL, Weinberg AL, Greco TL, Xu X, Murdoch FE, Fritsch MK. Differentiation of murine embryonic stem cells induces progesterone receptor gene expression. Experimental Cell Research. 2005;311(2):251-264.  https://doi.org/10.1016/j.yexcr.2005.09.005
  51. Aubin J, Lemieux M, Tremblay M, Behringer RR, Jeannotte L. Transcriptional interferences at the Hoxa4/Hoxa5 locus: Importance of correct Hoxa5 expression for the proper specification of the axial skeleton. Developmental Dynamics. 1998;212(1):141-156. https://doi.org/10.1002/(SICI)1097-0177(199805)212:1<141::AID-AJA13>3.0.CO;2-A "> 3.0.CO;2-A" target="_blank">https://doi.org/10.1002/(SICI)1097-0177(199805)212:1<141::AID-AJA13>3.0.CO;2-A
  52. Mason HR, Lake AC, Wubben JE, Nowak RA, Castellot JJ Jr. The growth arrest — specific gene CCN5 is deficient in human leiomyomas and inhibits the proliferation and motility of cultured human uterine smooth muscle cells. Molecular Human Reproduction. 2004; 10(3):181-187.  https://doi.org/10.1093/molehr/gah028
  53. Chen G, Shinka T, Kinoshita K, Yan HT, Iwamoto T, Nakahori Y. Roles of estrogen receptor alpha (ER alpha) in the regulation of the human Müllerian inhibitory substance (MIS) promoter. The Journal of Medical Investigation: JMI. 2003;50:192-198. 
  54. Cramer DW, Goldstein DP, Fraer C, Reichardt JK. Vaginal agenesis (Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser syndrome) associated with the N314D mutation of galactose-1-phosphate uridyl transferase (GALT). Molecular Human Reproduction. 1996;2(3):145-148.  https://doi.org/10.1093/molehr/2.3.145
  55. Timmreck LS, Gray MR, Handelin B, Allito B, Rohlfs E, Davis AJ, Gidwani G, Reindollar RH. Analysis of cystic fibrosis transmembrane conductance regulator gene mutations in patients with congenital absence of the uterus and vagina. American Journal of Medical Genetics. Part A. 2003;120A(1):72-76.  https://doi.org/10.1002/ajmg.a.20197
  56. Klipstein S, Bhagavath B, Topipat C, Sasur L, Reindollar RH, Gray MR. The N314D polymorphism of the GALT gene is not associated with congenital absence of the uterus and vagina. Molecular Human Reproduction. 2003;9(3):171-174.  https://doi.org/10.1093/molehr/gag018
  57. Guerrier D, Mouchel T, Pasquier L, Pellerin I. The Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser syndrome (congenital absence of uterus and vagina) — phenotypic manifestations and genetic approaches. Journal of Negative Results in Biomedicine. 2006;5:1.  https://doi.org/10.1186/1477-5751-5-1
  58. Herlin M, Højland AT, Petersen MB. Familial occurrence of Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser syndrome: a case report and review of the literature. American Journal of Medical Genetics. Part A. 2014; 164A(9):2276-2286. https://doi.org/10.1002/ajmg.a.36652
  59. De Tomasi L, David P, Humbert C, Silbermann F, Arrondel C, Tores F, Fouquet S, Desgrange A, Niel O, Bole-Feysot C, Nitschké P, Roume J, Cordier MP, Pietrement C, Isidor B, Khau Van Kien P, Gonzales M, Saint-Frison MH, Martinovic J, Novo R, Piard J, Cabrol C, Verma IC, Puri R, Journel H, Aziza J, Gavard L, Said-Menthon MH, Heidet L, Saunier S, Jeanpierre C. Mutations in GREB1L cause bilateral kidney agenesis in humans and mice. American Journal of Medical Genetics. Part A. 2017;101(5):803-814.  https://doi.org/10.1016/j.ajhg.2017.09.026
  60. Herlin MK, Le VQ, Højland AT, Ernst A, Okkels H, Petersen AC, Petersen MB, Pedersen IS. Whole-exome sequencing identifies a GREB1L variant in a three-generation family with Müllerian and renal agenesis: a novel candidate gene in Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser (MRKH) syndrome. A case report. Human Reproduction. 2019;34:1838-1846. https://doi.org/10.1093/humrep/dez126
  61. Kolatsi-Joannou M, Bingham C, Ellard S, Bulman MP, Allen LI, Hattersley AT, Woolf AS. Hepatocyte nuclear factor-1beta: a new kindred with renal cysts and diabetes and gene expression in normal human development. Journal of the American Society of Nephrology: JASN. 2001;12(10):2175-2180.
  62. Bingham C, Bulman MP, Ellard S, Allen LI, Lipkin GW, Hoff WG, Woolf AS, Rizzoni G, Novelli G, Nicholls AJ, Hattersley AT. Mutations in the hepatocyte nuclear factor 1beta gene are associated with familial hypoplastic glomerulocystic kidney disease. American Journal of Medical Genetics. 2001;68(1):219-224.  https://doi.org/10.1086/316945
  63. Bingham C, Ellard S, Cole TR, Jones KE, Allen LI, Goodship JA, Goodship TH, Bakalinova-Pugh D, Russell GI, Woolf AS, Nicholls AJ, Hattersley AT. Solitary functioning kidney and diverse genital tract malformations associated with hepatocyte nuclear factor-1beta mutations. Kidney International. 2002;61(4):1243-1251. https://doi.org/10.1046/j.1523-1755.2002.00272.x
  64. Lindner TH, Njolstad PR, Horikawa Y, Bostad L, Bell GI, Sovik O. A novel syndrome of diabetes mellitus, renal dysfunction and genital malformation associated with a partial deletion of the pseudo-POU domain of hepatocyte nuclear factor-1beta. Human Molecular Genetics. 1999;8(11):2001-2008. https://doi.org/10.1093/hmg/8.11.2001
  65. Sundaram UT, McDonald-McGinn DM, Huff D, Emanuel BS, Zackai EH, Driscoll DA, Bodurtha J. Primary amenorrhea and absent uterus in the 22q11.2 deletion syndrome. American Journal of Medical Genetics. Part A. 2007:143A(17):2016-2018. https://doi.org/10.1002/ajmg.a.31736
  66. Cheroki C, Krepischi-Santos AC, Szuhai K, Brenner V, Kim CA, Otto PA, Rosenberg C. Genomic imbalances associated with mullerian aplasia. Journal of Medical Genetics. 2008:45(4):228-232.  https://doi.org/10.1136/jmg.2007.051839
  67. Bernardini L, Gimelli S, Gervasini C, Carella M, Baban A, Frontino G, Barbano G, Divizia MT, Fedele L, Novelli A, Béna F, Lalatta F, Miozzo M, Dallapiccola B. Recurrent microdeletion at 17q12 as a cause of Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser (MRKH) syndrome: two case reports. Orphanet Journal of Rare Diseases. 2009;4:25.  https://doi.org/10.1186/1750-1172-4-25
  68. Ledig S, Schippert C, Strick R, Beckmann MW, Oppelt PG, Wieacker P. Recurrent aberrations identified by array-CGH in patients with Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser syndrome. Fertility and Sterility. 2011;95(5):1589-1594. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2010.07.1062
  69. Morcel K, Watrin T, Pasquier L, Rochard LJ, Caignec CL, Dubourg C, Loget P, Paniel B, Odent S, David V, Pellerin I, Bendavid C, Guerrier D. Utero-vaginal aplasia (Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser syndrome) associated with deletions in known Di George or Di George-like loci. Orphanet Journal of Rare Diseases. 2011;6:9. 
  70. Nik-Zainal S, Strick R, Storer M, Huang N, Rad R, Willatt L, Fitzgerald T, Martin V, Sandford R, Carter NP, Janecke AR, Renner SP, Oppelt PG, Oppelt P, Schulze C, Brucker S, Hurles M, Beckmann MW, Strissel PL, Shaw-Smith C. High incidence of recurrent copy number variants in patientswith isolated and syndromic Müllerian aplasia. Journal of Medical Genetics. 2011;48(3):197-204.  https://doi.org/10.1136/jmg.2010.082412
  71. Hinkes B, Hilgers KF, Bolz HJ, Goppelt-Struebe M, Amann K, Nagl S, Bergmann C, Rascher W, Eckardt KU, Jacobi J. A complex microdeletion 17q12 phenotype in a patient withrecurrent de novo membranous nephropathy. BMC Nephrology. 2012;13:27.  https://doi.org/10.1186/1471-2369-13-27
  72. McGowan R, Tydeman G, Shapiro D, Craig T, Morrison N, Logan S, Balen AH, Ahmed SF, Deeny M, Tolmie J, Tobias ES. DNA copy number variations are important in the complex genetic architecture of müllerian disorders. Fertility and Sterility. 2015;103(4):1021-1030. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2015.01.008

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.