Борзых О.Б.

Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого (КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого)

Шнайдер Н.А.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр психиатрии и неврологии им. В.М. Бехтерева»

Петрова М.М.

ФГБОУ ВО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Минздрава России

Карпова Е.И.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Демина О.М.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Затолокина М.А.

ФГБОУ ВО «Курский государственный медицинский университет» Минздрава России

Регуляция обмена эластина в коже: биологические и генетические аспекты

Авторы:

Борзых О.Б., Шнайдер Н.А., Петрова М.М., Карпова Е.И., Демина О.М., Затолокина М.А.

Подробнее об авторах

Прочитано: 7604 раза


Как цитировать:

Борзых О.Б., Шнайдер Н.А., Петрова М.М., Карпова Е.И., Демина О.М., Затолокина М.А. Регуляция обмена эластина в коже: биологические и генетические аспекты. Клиническая дерматология и венерология. 2022;21(4):435‑441.
Borzykh OB, Shnayder NA, Petrova MM, Karpova EI, Demina OM, Zatolokina MA. Regulation of elastin turnover in the skin: Biological and genetic aspects. Russian Journal of Clinical Dermatology and Venereology. 2022;21(4):435‑441. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/klinderma202221041435

Рекомендуем статьи по данной теме:
Сов­ре­мен­ные ме­то­ды кор­рек­ции воз­рас­тных из­ме­не­ний в жен­ском ор­га­низ­ме. Плас­ти­чес­кая хи­рур­гия и эс­те­ти­чес­кая ме­ди­ци­на. 2025;(1):90-96

Введение

Исторически внеклеточный матрикс кожи рассматривается лишь как опорный элемент для клеток дермы, однако исследователи показывают роль разных компонентов внеклеточного матрикса кожи в различных процессах [1]. Внеклеточный матрикс кожи состоит из волокнистого и аморфного веществ, основу волокнистого компонента составляют коллагеновые и эластические волокна [2]. Эластические волокна определяют для кожи способность растягиваться и возвращаться к исходной форме без деформации [3]. Без этого свойства невозможно полноценное функционирование кожи. По сути, эластические волокна тесно связаны с коллагеновыми волокнами в коже, поддерживающими ее прочность: они возвращают коллагеновые волокна после растяжения в исходное состояние [4]. В косметологии и дерматологии достаточно часто речь идет об улучшении прочности и эластичности под воздействием каких-либо методик. Однако в реальной ситуации не все так просто, и для понимания физиологических процессов в коже и возможностей применения тех или иных методик необходимо знать естественные процессы обмена эластических волокон [5]. Обмен эластических волокон включает процессы синтеза и деградации. Однако эластические волокна de novo образуются лишь в эмбриональный период развития человека. Регуляция процессов синтеза и деградации генетически детерминирована [6]. Знание биологических и генетических аспектов синтеза, деградации и рецепции компонентов внеклеточного матрикса кожи важны для понимания патофизиологических процессов и назначения персонализированных методик для ведения пациентов в косметологии и дерматологии [7]. К сожалению, достаточно часто широкодоступная информация для врачей-косметологов и дерматологов повышает их знания лишь о действии (зачастую о предполагаемом действии) той или иной методики на дерму [8], при этом информации о нормальной физиологии кожи и патогенетических аспектах инволюционных изменений кожи недостаточно.

Цель тематического обзора — анализ исследований биологических и генетических аспектов обмена эластина и обновление знаний дерматологов и косметологов о регуляции синтеза и деградации эластических волокон в коже, которые могут стать основой персонализированного подхода к выбору классических и новых методик во врачебной косметологии.

Эластические волокна в дерме

Эластическое волокно состоит из эластина и микрофибриллярных белков, связанных с ними. В перерасчете на сухую массу дермы удельный вес эластических волокон составляет около 2—4% [9]. Микрофибриллы служат каркасом для образования эластических волокон и определяют их направление [10]. Наиболее известное генетическое заболевание, характеризуемое дефектным метаболизмом эластина и аномальными эластическими волокнами — cutis laxa, полностью характеризует функции эластических волокон [11]. Так, при этой моногенной патологии у пациентов кожа теряет свою эластичность, обвисает с выраженным избытком, отмечается дряблость и рыхлость кожи, что часто сочетается с внекожными проявлениями заболевания в легких и сердце [12]. В коже большая часть эластических волокон находится в сетчатом слое дермы [13]. Эластические волокна ориентированы перпендикулярно и параллельно поверхности кожи, образуя сеть волокон. При этом высокое содержание короткоцепочечных гидрофобных аминокислот в тропоэластине в сочетании с водой способствуют растяжимости и возврату эластических волокон в исходную форму. Синтез эластических волокон, как и других компонентов внеклеточного матрикса кожи, осуществляют фибробласты дермы [14]. Большинство эластических волокон образуется во время внутриутробного развития и в первые годы жизни человека. Затем экспрессия генов, ответственных за синтез эластина, резко снижается, повышаясь лишь при травме и деградации эластических волокон [15]. Повреждение эластических волокон под действием ультрафиолета (УФ) или окисления и гликации является одним из ведущих механизмов снижения эластических свойств кожи [16], а для стимуляции образования эластических волокон недостаточно неспецифически воздействовать на фибробласты с целью повышения их пролиферативной способности [17].

Существует множество методов, направленных на повышение уровня коллагена, гиалуроновой кислоты в коже, но установленных методов, повышающих выработку эластина, нет, поэтому современные исследования направлены на изучение методов, ведущих к стимуляции экспрессии тропоэластина в дерме (интеграция тропоэластина в кожу, применение транс-ретиноевой кислоты) [18—20]. Сборка эластических волокон называется эластогенезом, который зависит от тропоэластина [21]. Тропоэластин является мономером эластина, сшитого десмозином или изодесмозином. Биологические и генетические аспекты синтеза эластина и компонентов микрофибриллярного окружения мы осветили в нашей предыдущей статье [22]. В настоящем тематическом обзоре более подробно рассмотрены регуляция и деградация эластических волокон кожи.

Регуляция синтеза эластина

В регуляции синтеза эластина принимают участие факторы, обладающие эластогенными и антиэластогенными свойствами (табл. 1) [23]. Так, в регуляции синтеза эластина принимают участие трансформирующий фактор роста β, экспрессия которого в коже и активация эластогенеза ассоциированы с носительством однонуклеотидных вариантов (ОНВ) в промоторной области кодирующего этот фактор гена; инсулиноподобный фактор роста 1 и витамин D, которые модулируют экспрессию тропоэластина на уровне промотора гена ELN или через повышение стабильности матричной рибонуклеиновой кислоты (мРНК), улучшая в итоге эластогенез [24]. В то же время основной фактор роста фибробластов, гепарин-связывающий эпидермальный фактор роста, трансформирующий фактор роста α, фактор некроза опухоли α, интерлейкин 1β и нестандартный сигналинг TGF-β ингибируют эластогенез [25]. Так, при мутациях в гене эластина (ELN), приводящих к формированию незрелого эластина, отмечена повышенная сигнализация TGF-β в фибробластах, оказывающая системное влияние. Лизилоксидаза является медь-зависимым ферментом, его активность также регулируется фибронектином и аденозинтрифосфатазой (АТФ) [26]. Лизилоксидаза отвечает за прочность эластической сети.

Таблица 1. Цитокины, принимающие участие в регуляции функции эластических волокон

Цитокины

Действие

Гиперфункция

Ген

Трансформирующий фактор роста (Transforming growth factor, TGF-β)

Двойной эффект на регуляцию эластогенеза

Модулирует активность промотора эластина: повышение уровней мРНК тропоэластина, улучшение эластического волокна;

снижение содержания эластаз

Повышенное отложение эластина: интерстициальный фиброз; фиброзные заболевания печени, почек, легких, кожи, аневризмы аорты

TGFB1

Инсулиноподобный фактор роста I (Insulin-like growth factor I, IGF-I)

Усиление экспрессии эластина, стимулирование фактора транскрипции 1; угнетение фактора транскрипции 3

Повышенное отложение эластина в стенках аорты; патология других кровеносных сосудов

IGF1

Основной фактор роста фибробластов (Basic fibroblast growth factor, bFGF, FGF2)

Снижает экспрессию ELN, подавляет TGF-β, снижение уровня мРНК LOX, повышение содержания эластаз

Нарушение регенерации ран

FGF2

Гепарин-связывающий эпидермальноподобный фактор роста (Heparin-binding epidermal growth factor-like factor, HB-EGF

Снижает экспрессию мРНК тропоэластина и накопление матриксного протеина

HBEGF

Трансформирующий фактор роста α (Transforming growth factor α, TGFα)

Вызывает дестабилизацию мРНК тропоэластина.

Усиливает эластолиз

Патологическое ремоделирование ткани легких

TGFA

Фактор некроза опухоли α (Tumor necrosis factor alpha, TNF-α)

Подавляет уровень мРНК тропоэластина в фибробластах Усиление экспрессии эластолитических ферментов

Усиление распада эластина, формирование аневризм кровеносных сосудов

TNFA

Интерлейкин 1β (Interleukin 1β, IL-1β).

Двойной эффект на регуляцию эластогенеза

Повышение содержания эластаз.

Снижение уровня эластина в фибробластах легких.

Повышение уровня эластина в фибробластах дермы

Формирование аневризм сосудов.

Нарушение альвеолярных перегородок

IL1B

Деградация эластических волокон

Высокоретикулированное эластическое волокно нерастворимо и устойчиво к протеолитическим нагрузкам [27]. Деградация эластина — очень долгий процесс, период полураспада которого сравним с продолжительностью жизни человека — порядка 70 лет [28]. В отличие от коллагеновых волокон функция эластических волокон не зависит от постоянного ремоделирования, но распад эластина повышается при воспалении, воздействии УФ, сигаретного дыма (на легкие), что может приводить к более быстрой деградации эластических волокон. При этом циркулирующие фрагменты эластина при его деградации по принципу положительной обратной связи могут активировать процессы деградации других (сохранных) эластических волокон [29]. Процесс деградации эластических волокон зависит от эластолитических ферментов — эластаз, которые секретируются различными видами клеток, включая полиморфно-ядерные лейкоциты, моноциты, макрофаги, гладкомышечные клетки, фибробласты [30]. Эластазы являются неспецифическими для эластина ферментами. Всего известно 12 эластаз, в том числе: класс серинов (нейтрофильная эластаза; катепсин G; протеиназа-3); класс матриксных металлопротеаз (ММП 2, 7, 9, 12) [31]; класс цистеина (катепсины L, S, K, V и пепсин A) [32]. Катепсин G и нейтрофильная эластаза секретируются в азурофильных гранулах нейтрофильных полиморфно-ядерных лейкоцитов [33]. Нейтрофильная эластаза гидролизирует белки в лизосомах нейтрофилов [34]. Подсемейство сериновых протеаз кроме эластина гидролизирует многие белки. Шесть генов семейства эластазы кодируют структурно схожие белки [35]. Эластазы типов 1, 2, 2A, 2B, 3A и 3B, секретируемые в поджелудочной железе в виде зимогена, выполняют в большей степени пищеварительную функцию. Разные эластазы расщепляют эластин, присоединяясь к разным аминокислотным остаткам. Но в отличие от других эластаз эластаза 1 не экспрессируется в поджелудочной железе. Ее экспрессия обнаружена только в кератиноцитах кожи. Эластаза типа 3B обладает сравнительно небольшой эластолитической активностью [36]. Катепсин L играет важную роль во внутриклеточном катаболизме белков, таких как коллаген и эластин. Катепсин S кроме эластазной активности участвует в деградации антигенных белков до протеинов для презентации комплексу гистосовместимости. Катепсин K экспрессируется в основном в остеокластах, поэтому имеет большее значение в ремоделировании костной ткани. Катепсин V в физиологических условиях в большей мере секретируется в роговице, а при патологии имеет значение в случае злокачественных процессов [37]. МПП — цинк-зависимые ферменты, участвующие в разрушении внеклеточного матрикса в физиологических и патологических процессах [38]. Они могут разлагать растворимый и нерастворимый эластин. Естественными ингибиторами ММП является группа ингибиторов ММП (TIMP), которые кроме ингибирующего действия на ММП, оказывают стимулирующее влияние на пролиферацию клеток и имеют антиапоптотическую функцию [39]. Общность всех эластаз заключается в том, что они могут связывать небольшие гидрофобные аминокислоты, такие как аланин и валин [40]. С возрастом отмечается повышение активности ММП и снижение активности ингибиторов ММП [41]. В результате деградация компонентов внеклеточного матрикса, в том числе эластиновых волокон, повышается. С возрастом, особенно при сопутствующем сахарном диабете, может усиливаться гликация не только коллагеновых, но и эластических волокон [42]. Это приводит к нарушению функционирования эластических волокон в коже [43]. Ингибиторами сериновых протеаз являются белки семейства серпинов, в частности серпин — член семейства A-1. Он ингибирует действие эластаз, плазмина, тромбина, трипсина, химотрипсина и активатора плазминогена [44]. Серпин поддерживает гомеостаз, нейтрализуя сверхэкспрессию нейтрофильных протеиназ, эластазы, катепсина и протеиназы-3 (табл. 2).

Таблица 2. Гены, кодирующие ферменты, которые участвуют в деградации эластических волокон, их активность и заболевания, вызываемые мутациями в них

Ген, кодируемый белок/фермент

Локализация в хромосоме

Клинические проявления мутации

Наибольшая экспрессия в органах

(RPKM)

Экспрессия в коже

(RPKM)

ELANE, кодирующий нейтрофильную эластазу

7р13.3, включает 6 экзонов

Нейтропения

Костный мозг (675,123±273,22)

Следы

CELA1, кодирующий химотрипсинподобную эластазу 1 (ELA1)

12q13.13, включает 8 экзонов

Следы

Следы

CELA2А, кодирующий химотрипсинподобную эластазу 2А (ELA2А)

1р36.21, включает 8 экзонов

Поджелудочная железа (17504,7±1609,709)

Следы

CELA2В, кодирующий химотрипсинподобную эластазу 2В (ELA2В)

1р36.21, включает 8 экзонов

Поджелудочная железа (4251,99±189,042)

Следы

CELA3А, кодирующий химотрипсинподобную эластазу 3А (ELA3А)

1р36.12, включает 8 экзонов

Поджелудочная железа (27599,9 ±3458,057)

Следы

CELA3B, кодирующий химотрипсинподобную эластазу 3В (ELA3B)

1р36.12, включает 8 экзонов

Поджелудочная железа (9733,781±980,323)

Следы

CTSG, кодирующий катепсин G

14q12, включает 5 экзонов

Костный мозг (1479,2±417,185).

Толстый кишечник (20,145±33,08)

Следы

CTSL, кодирующий катепсин L

9q21.33, включает 9 экзонов

Плацента (162,62±53.969). Почки (60,414±9,923).

Печень (57,775±16,813)

4,558±1,025

CTSS, кодирующий катепсин S

1q21.3, включает 8 экзонов

Хронические заболевания легких

Селезенка (88,962±13,082). Аппендикс (75,44±12,037).

Толстый кишечник (74,247±19,302)

3,434±0,701

MMP2, кодирующий матриксную металлопротеазу 2 (ММП2)

16q12.2, включает 17 экзонов

Синдром Винчестера, синдром узлов—артропатии—остеолиза

Желчный пузырь (482,608±142,138).

Мочевой пузырь (341,099±138,605).

Эндометрий (183,459±144,518)

64,397±22,347

MMP7, кодирующий матриксную металлопротеазу 7 (ММП7)

11q22.2, включает 6 экзонов

Желчный пузырь (292,445±137,335).

Эндометрий (62,121±67,788).

Мочевой пузырь (60,782±1,466)

Следы

MMP9, кодирующий матриксную металлопротеазу 9 (ММП9)

20q13.12, включает 13 экзонов

Хроническая обструктивная болезнь легких, лейкемия

Костный мозг (144,896±86,743). Лимфатические узлы (49,799±8,947).

Аппендикс (34,472±2,324)

Следы

MMP12, кодирующий матриксную металлопротеазу 12 (ММП12)

11q22.2, включает 10 экзонов

Аневризмы сосудов, нарушение функции легких, хроническая обструктивная болезнь легких

Аппендикс (25,29±12,637).

Мочевой пузырь (14,962±11,849).

Толстый кишечник (4,846±4,257)

Следы

TIMP1, кодирующий ингибитора матриксных металлопротеаз 1

Хр11.3, включает 5 экзонов

Аппендикс (344,645±188,761).

Желчный пузырь (211,231±46,966).

Мочевой пузырь (109,953±3,469)

12,626±2,84

SERPINA1, кодирующий серпин член семейства А-1

14q32.13, включает 7 экзонов

ХОБЛ, эмфизема легких, хронические заболевания печени

Печень (3603,52±744,651).

Тонкий кишечник (158,338±30,145).

Легкие (93,406±70,806)

Следы

SERPINB1, кодирующий серпин член семейства B-1

6р25.2, включает 9 экзонов

Пищевод (214,273±22,152).

Костный мозг (155,639±33,522).

Двенадцатиперстная кишка (58,62±13,154)

4,6±11,806

Из табл. 2 видно, что активность генов, кодирующих ферменты деградации эластических волокон, в коже в физиологических условиях крайне низкая. Этим объясняется низкая скорость распада эластических волокон у людей. С возрастом изменяется свойство упругости тканей, в том числе кожи. Так, для поддержания эластичности кожи важно сохранение неповрежденной сети эластических волокон. Однако с возрастом эластическая сеть может фрагментироваться. УФ может ускорять процесс фрагментации эластических волокон кожи, приводя к еще большему снижению ее эластичности [45]. Некоторые исследования показали, что с возрастом изменяется не количество эластина, а его соотношение с коллагеновыми волокнами и аминокислотный состав [46]. Так, в соединительной ткани увеличивается количество коллагена, а в самом эластине уменьшается количество сшивок десмозина и изодесмозина. Увеличивается также количество гистидиноаланина [47]. Эти процессы приводят к снижению эластических свойств кожи за счет образования перекрестных связей между соседними кислотными белками и эластином [48].

Заключение

Обмен эластических волокон в коже генетически детерминирован, и понимание сложности биологических и генетических аспектов, сопряженных с обменом и функционированием эластических волокон, приближает врачей-косметологов и дерматологов к персонализированному подходу к ведению пациентов с инволюционными изменениями кожи, а также пациентов на стадии регенерации ран на коже. Исследования, направленные на поиск методик по повышению экспрессии тропоэластина, а значит и по повышению эластогенеза еще не закончены, и достоверных, проверенных методик пока нет. В то же время увеличение общей продолжительности жизни в общемировой популяции привело к тому, что средняя продолжительность жизни человека сравнялась с периодом полураспада эластических волокон. Поэтому особенно актуальной становится проблема изучения процессов, приводящих к эластозу кожи, и снижения эластических волокон в ранах, ведущих к нарушению заживления (рубцевания) ран на коже.

Финансирование. Исследование проведено без спонсорской поддержки.

Financing. The study was performed without external funding.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Usansky I, Jaworska P, Asti L, Kenny FN, Hobbs C, Sofra V, Song H, Logan M, Graham A, Shaw TJ. A developmental basis for the anatomical diversity of dermis in homeostasis and wound repair. J Pathol. 2021;253(3): 315-325.  https://doi.org/10.1002/path.5589
  2. Jansen KA, Licup AJ, Sharma A, Rens R, MacKintosh FC, Koenderink GH. The Role of Network Architecture in Collagen Mechanics. Biophys J. 2018;114(11):2665-2678. https://doi.org/10.1016/j.bpj.2018.04.043
  3. Gambichler T, Mamali K, Scheel C. A Brief Literature Update on Mid-dermal Elastolysis with an Emphasis on Pathogenetic and Therapeutic Aspects. J Clin Aesthet Dermatol. 2020;13(9):E53-E58. 
  4. Shin JW, Kwon SH, Choi JY, Na JI, Huh CH, Choi HR, Park KC. Molecular Mechanisms of Dermal Aging and Antiaging Approaches. Int J Mol Sci. 2019;20(9):2126. https://doi.org/10.3390/ijms20092126
  5. Erickson JR, Echeverri K. Learning from regeneration research organisms: the circuitous road to scar free wound healing. Dev Biol. 2018;433(2):144-154. 
  6. Mithieux SM, Weiss AS. Design of an elastin-layered dermal regeneration template. Acta Biomater. 2017;52:33-40. 
  7. Шнайдер Н.А., Дюжакова А.В., Вайман Е.Э., Никитина Е.И., Борзых О.Б., Насырова Р.Ф. Значение генетических факторов метаболизма эндогенной гиалуроновой кислоты в поддержании гомеостаза кожи. Вестник дерматологии и венерологии. 2021;97(3):24-38.  https://doi.org/10.25208/vdv1193
  8. Борзых О.Б., Петрова М.М., Шнайдер Н.А., Насырова Р.Ф. Проблемы внедрения персонализированной медицины во врачебной косметологии в России. Сибирское медицинское обозрение. 2021;(2):12-22.  https://doi.org/10.20333/25000136-2021-2-12-22
  9. Uitto J, Li Q, Urban Z. The complexity of elastic fibre biogenesis in the skin — a perspective to the clinical heterogeneity of cutis laxa. Exp Dermatol. 2013;22(2):88-92.  https://doi.org/10.1111/exd.12025
  10. Ozsvar J, Yang C, Cain SA, Baldock C, Tarakanova A, Weiss AS. Tropoelastin and Elastin Assembly. Front Bioeng Biotechnol. 2021;9:643110. https://doi.org/10.3389/fbioe.2021.643110
  11. Gharesouran J, Hosseinzadeh H, Ghafouri-Fard S, Jabbari Moghadam Y, Ahmadian Heris J, Jafari-Rouhi AH, Taheri M, Rezazadeh M. New insight into clinical heterogeneity and inheritance diversity of FBLN5-related cutis laxa. Orphanet J Rare Dis. 2021;16(1):51.  https://doi.org/10.1186/s13023-021-01696-6
  12. Van Damme T, Gardeitchik T, Mohamed M, Guerrero-Castillo S, Freisinger P, Guillemyn B, Kariminejad A, Dalloyaux D, van Kraaij S, Lefeber DJ, Syx D, Steyaert W, De Rycke R, Hoischen A, Kamsteeg EJ, Wong SY, van Scherpenzeel M, Jamali P, Brandt U, Nijtmans L, Korenke GC, Chung BHY, Mak CCY, Hausser I, Kornak U, Fischer-Zirnsak B, Strom TM, Meitinger T, Alanay Y, Utine GE, Leung KCP, Ghaderi-Sohi S, Coucke P, Symoens S, De Paepe A, Thiel C, Haack TB, Malfait F, Morava E, Callewaert B, Wevers RA. Mutations in ATP6V1E1 or ATP6V1A Cause Autosomal-Recessive Cutis Laxa. Am J Hum Genet. 2020 Aug 6;107(2):374.  https://doi.org/10.1016/j.ajhg.2020.07.013
  13. Dhital B, Durlik P, Rathod P, Gul-E-Noor F, Wang Z, Sun C, Chang EJ, Itin B, Boutis GS. Ultraviolet radiation reduces desmosine cross-links in elastin. Biochem Biophys Rep. 2017;10:172-177.  https://doi.org/10.1016/j.bbrep.2017.04.002
  14. Mahajan D, Kancharla S, Kolli P, Sharma AK, Singh S, Kumar S, Mohanty AK, Jena MK. Role of Fibulins in Embryonic Stage Development and Their Involvement in Various Diseases. Biomolecules. 2021;11(5):685.  https://doi.org/10.3390/biom11050685
  15. Vindin H, Mithieux SM, Weiss AS. Elastin architecture. Matrix Biol. 2019; 84:4-16 
  16. Pigatto Filho G, Zeni M, Melchioretto EF, Marques GL, Hota T, Fraga R. Age-dependent histomorphometric evolution of the corpus spongiosum. Acta Cir Bras. 2021;35(12):e351203. https://doi.org/10.1590/ACB351203
  17. Almine JF, Wise SG, Weiss AS. Elastin signaling in wound repair. Birth Defects Res C Embryo Today. 2012;96(3):248-257. 
  18. Bergstrom KG. Beyond tretinoin: cosmeceuticals for aging skin. J. Drugs Dermatol.: JDD. 2009;8:674-677. 
  19. Baumann L, Bernstein EF, Weiss AS, Bates D, Humphrey S, Silberberg M, Daniels R. Clinical Relevance of Elastin in the Structure and Function of Skin. Aesthet Surg J Open Forum. 2021;3(3):ojab019. https://doi.org/10.1093/asjof/ojab019
  20. Cohen BE, Geronemus RG, McDaniel DH, Brauer JA. The role of elastic fibers in scar formation and treatment. Dermatol Surg. 2017;43(1):S19-24. 
  21. Widgerow AD, Napekoski K. New approaches to skin photodamage histology-Differentiating ‘good’ versus ‘bad’ Elastin. J Cosmet Dermatol. 2021; 20(2):526-531.  https://doi.org/10.1111/jocd.13865
  22. Потекаев Н.Н., Борзых О.Б., Шнайдер Н.А., Петрова М.М., Карпова Е.И., Демина О.М., Насырова Р.Ф. Геномика синтеза эластических волокон. Практическая значимость для врачей косметологов и дерматологов. Клиническая дерматология и венерология. 2021;20(6):52-59.  https://doi.org/10.17116/klinderma20212006152
  23. Kleiser S, Nyström A. Interplay between Cell-Surface Receptors and Extracellular Matrix in Skin. Biomolecules. 2020 Aug 11;10(8):1170. https://doi.org/10.3390/biom10081170
  24. Philips N, Samuel P, Keller T, Alharbi A, Alshalan S, Shamlan SA. Beneficial Regulation of Cellular Oxidative Stress Effects, and Expression of Inflammatory, Angiogenic, and the Extracellular Matrix Remodeling Proteins by 1α,25-Dihydroxyvitamin D3 in a Melanoma Cell Line. Molecules. 20205; 25(5):1164. https://doi.org/10.3390/molecules25051164
  25. Sproul EP, Argraves WS. A cytokine axis regulates elastin formation and degradation. Matrix Biol. 2013;32(2):86-94.  https://doi.org/10.1016/j.matbio.2012.11.004
  26. Gonzalez de Torre I., Alonso M., Rodriguez-Cabello J.C. Elastin-Based Materials: Promising Candidates for Cardiac Tissue Regeneration. Front Bioeng Biotechnol. 2020;8:657.  https://doi.org/10.3389/fbioe.2020.00657
  27. Godinho MSC, Thorpe CT, Greenwald SE, Screen HRC. Elastin is Localised to the Interfascicular Matrix of Energy Storing Tendons and Becomes Increasingly Disorganised With Ageing. Sci Rep. 2017;7(1):9713. https://doi.org/10.1038/s41598-017-09995-4
  28. Cocciolone AJ, Hawes JZ, Staiculescu MC, Johnson EO, Murshed M, Wagenseil JE. Elastin, arterial mechanics, and cardiovascular disease. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2018;315(2):H189-H205. https://doi.org/10.1152/ajpheart.00087.2018
  29. Bartstra JW, Spiering W, van den Ouweland JMW, Mali WPTM, Janssen R, de Jong PA. Increased Elastin Degradation in Pseudoxanthoma Elasticum Is Associated with Peripheral Arterial Disease Independent of Calcification. J Clin Med. 2020;9(9):2771. https://doi.org/10.3390/jcm9092771
  30. Fazaeli S, Mirahmadi F, Everts V, Smit TH, Koolstra JH, Ghazanfari S. Alteration of structural and mechanical properties of the temporomandibular joint disc following elastase digestion. J Biomed Mater Res B Appl Biomater. 2020;108(8):3228-3240. https://doi.org/10.1002/jbm.b.34660
  31. Van Doren SR. Matrix metalloproteinase interactions with collagen and elastin. Matrix Biol. 2015;44-46:224-231.  https://doi.org/10.1016/j.matbio.2015.01.005
  32. Yadati T, Houben T, Bitorina A, Shiri-Sverdlov R. The Ins and Outs of Cathepsins: Physiological Function and Role in Disease Management. Cells. 2020;9(7):1679. https://doi.org/10.3390/cells9071679
  33. Rawat K, Syeda S., Shrivastava A. Neutrophil-derived granule cargoes: paving the way for tumor growth and progression. Cancer Metastasis Rev. 2021; 40(1):221-244.  https://doi.org/10.1007/s10555-020-09951-1
  34. Novak T, Fortune F, Bergmeier L, Khan I, Hagi-Pavli E. Neutrophil elastase and endogenous inhibitors in Behçet’s disease saliva. Clin Exp Immunol. 2020;202(1):93-105.  https://doi.org/10.1111/cei.13483
  35. Ahmad S, Saleem M, Riaz N, Lee YS, Diri R, Noor A, Almasri D, Bagalagel A, Elsebai MF. The Natural Polypeptides as Significant Elastase Inhibitors. Front Pharmacol. 2020;11:688.  https://doi.org/10.3389/fphar.2020.00688
  36. Varanko A, Saha S, Chilkoti A. Recent trends in protein and peptide-based biomaterials for advanced drug delivery. Adv Drug Deliv Rev. 2020;156: 133-187.  https://doi.org/10.1016/j.addr.2020.08.008
  37. Frugé AD, Smith KS, Bail JR, Rais-Bahrami S, Demark-Wahnefried W. Biomarkers Associated With Tumor Ki67 and Cathepsin L Gene Expression in Prostate Cancer Patients Participating in a Presurgical Weight Loss Trial. Front Oncol. 2020 Sep 17;10:544201. https://doi.org/10.3389/fonc.2020.544201
  38. Cabral-Pacheco GA, Garza-Veloz I, Castruita-De la Rosa C, Ramirez-Acuña JM, Perez-Romero BA, Guerrero-Rodriguez JF, Martinez-Avila N, Martinez-Fierro ML. The Roles of Matrix Metalloproteinases and Their Inhibitors in Human Diseases. Int J Mol Sci. 2020;21(24):9739. https://doi.org/10.3390/ijms21249739
  39. Raeeszadeh-Sarmazdeh M, Do LD, Hritz BG. Metalloproteinases and Their Inhibitors: Potential for the Development of New Therapeutics. Cells. 2020; 9(5):1313. https://doi.org/10.3390/cells9051313
  40. Du X, Chen NL, Wong A, Craik CS, Brömme D. Elastin degradation by cathepsin V requires two exosites. J Biol Chem. 2013;288(48):34871-34881. https://doi.org/10.1074/jbc.M113.510008
  41. García-Onrubia L, Valentín-Bravo FJ, Coco-Martin RM, González-Sarmiento R, Pastor JC, Usategui-Martín R, Pastor-Idoate S. Matrix Metalloproteinases in Age-Related Macular Degeneration (AMD). Int J Mol Sci. 2020;21(16):5934. https://doi.org/10.3390/ijms21165934
  42. Cancemi P, Aiello A, Accardi G, Caldarella R, Candore G, Caruso C, Ciaccio M, Cristaldi L, Di Gaudio F, Siino V, Vasto S. The Role of Matrix Metalloproteinases (MMP-2 and MMP-9) in Ageing and Longevity: Focus on Sicilian Long-Living Individuals (LLIs). Mediators Inflamm. 2020;2020: 8635158. https://doi.org/10.1155/2020/8635158
  43. Zarkovic K, Larroque-Cardoso P, Pucelle M, Salvayre R, Waeg G, Nègre-Salvayre A, Zarkovic N. Elastin aging and lipid oxidation products in human aorta. Redox Biol. 2015;4:109-117.  https://doi.org/10.1016/j.redox.2014.12.008
  44. Henderson MW, Noubouossie DF, Ilich A, Wilson KJ, Pawlinski R, Monroe DM, Key NS. Protease: Serpin complexes to assess contact system and intrinsic pathway activation. Res Pract Thromb Haemost. 2020;4(5):789-798.  https://doi.org/10.1002/rth2.12389
  45. McCabe MC, Hill RC, Calderone K, Cui Y, Yan Y, Quan T, Fisher GJ, Hansen KC. Alterations in extracellular matrix composition during aging and photoaging of the skin. Matrix Biol Plus. 2020;8:100041. https://doi.org/10.1016/j.mbplus.2020.100041
  46. Meinke MC, Nowbary CK, Schanzer S, Vollert H, Lademann J, Darvin ME. Influences of Orally Taken Carotenoid-Rich Curly Kale Extract on Collagen I/Elastin Index of the Skin. Nutrients. 2017;9(7):775.  https://doi.org/10.3390/nu9070775
  47. Tsamis A, Krawiec JT, Vorp DA. Elastin and collagen fibre microstructure of the human aorta in ageing and disease: a review. J R Soc Interface. 2013; 10(83):20121004. https://doi.org/10.1098/rsif.2012.1004
  48. Tsamis A, Krawiec JT, Vorp DA. Elastin and collagen fibre microstructure of the human aorta in ageing and disease: a review. J R Soc Interface. 2013; 10(83):20121004. https://doi.org/10.1098/rsif.2012.1004

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.