Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Потекаев Н.Н.

ГБУЗ «Московский научно-практический центр дерматовенерологии и косметологии» Департамента здравоохранения Москвы;
ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Борзых О.Б.

Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого (КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого)

Шнайдер Н.А.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр психиатрии и неврологии им. В.М. Бехтерева»

Петрова М.М.

ФГБОУ ВО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Минздрава России

Карпова Е.И.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Демина О.М.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Жукова О.В.

ГБУЗ Москвы «Московский научно-практический центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения Москвы»;
ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов» Минобрнауки России

Насырова Р.Ф.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр психиатрии и неврологии им. В.М. Бехтерева»

Геномика синтеза эластических волокон. Практическая значимость для врачей-косметологов и дерматологов

Авторы:

Потекаев Н.Н., Борзых О.Б., Шнайдер Н.А., Петрова М.М., Карпова Е.И., Демина О.М., Жукова О.В., Насырова Р.Ф.

Подробнее об авторах

Прочитано: 5624 раза


Как цитировать:

Потекаев Н.Н., Борзых О.Б., Шнайдер Н.А., и др. Геномика синтеза эластических волокон. Практическая значимость для врачей-косметологов и дерматологов. Клиническая дерматология и венерология. 2021;20(6):52‑59.
Potekaev NN, Borzykh OB, Shnayder NA, et al. Genomics of elastic fiber synthesis. Practical meaning for cosmetologists and dermatologists. Russian Journal of Clinical Dermatology and Venereology. 2021;20(6):52‑59. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/klinderma20212006152

Рекомендуем статьи по данной теме:
Сов­ре­мен­ные ме­то­ды кор­рек­ции воз­рас­тных из­ме­не­ний в жен­ском ор­га­низ­ме. Плас­ти­чес­кая хи­рур­гия и эс­те­ти­чес­кая ме­ди­ци­на. 2025;(1):90-96

Введение

При обсуждении эстетических процедур и состояния кожи часто упоминаются коллагеновые, эластические волокна и гиалуроновая кислота (ГК) [1]. Все эти 3 компонента в большей степени влияют на механические свойства кожи (упругость, растяжимость, эластичность, наполненность), которые изменяются с возрастом [2]. Довольно большое количество компаний — производителей препаратов для эстетической медицины говорят о стимуляции синтеза ГК, коллагеновых и эластических волокон, но в реальности все 3 компонента имеют разные пути синтеза [3]. Поэтому для лучшего понимания метаболизма, а значит, и возможностей для эстетической коррекции каждый компонент стоит разобрать отдельно. В настоящей статье мы будем говорить о синтезе эластических волокон, в том числе с точки зрения генетики.

Эластические волокна

Эластические волокна отвечают за упругость и эластичность различных органов, включая кожу, они могут составлять до 2–4% сухой массы дермы у взрослого человека. Эластические волокна состоят из эластина и связанных с ним микрофибриллярных белков, синтез же эластина осуществляется фибробластами в коже и гладкомышечными клетками в сосудах [4]. Нарушение функционирования эластических волокон проявляется как кожное заболевание (cutis laxa) с выраженным избытком кожи, выраженной дряблостью, рыхлостью кожи, снижение эластичности часто связано с внекожными нарушениями в легких и сосудах [5].

Эластин — это гидрофобный белок соединительной ткани, кодируемый геном ELN, локализованным в длинном плече хромосомы 7, состоящим из 34 экзонов, длиной около 45 килобаз [6]. Первичный полипептид эластина — тропоэластин — является биологически активной молекулой. Тропоэластин опосредует клеточные процессы (организацию цитоскелета, хемотаксис, пролиферацию, дифференцировку) и регулирует местную тканевую среду (регуляция матриксных протеиназ) [7]. Молекула тропоэластина имеет большое количество активных сайтов, при этом большое количество сигнальных путей реализуется через гликозаминогликаны, эластин-связывающий протеин (elastin binding protein — EBP) и интегрины [8]. Взаимодействие эластина с EBP в основном осуществляется через гидрофобный мотив VGVAPG, а с интегринами — через RKRK-сайт распознавания интегрина αvβ3 на C-конце молекулы интегрина. Дополнительно распознавание может осуществляться на восходящем участке тропоэластина αvβ5 [9]. Сеть эластических волокон содержит эластин, микрофибриллы и связанные белки, организация которых имеет тканевую специфичность [10]. При этом ядром эластинового волокна является эластин, а каркас состоит из микрофибрилл и в основном содержит фибриллин 1 и 2, а некоторые из сборочных белков (в частности фибуллин 4 и 5) являются регуляторами размера и конформации агрегатов эластина [11]. При образовании эластического волокна агрегаты эластина перемещаются к микрофибриллам, прикрепляются к поверхности клеток при помощи интегринов, где формируется дальнейшее зрелое эластическое волокно.

При электронной микроскопии в дерме можно отметить существование двух компонентов: эластина и эластин-ассоциированных микрофибрилл, при этом в ретикулярной дерме волнистые волокна ориентированы параллельно поверхности кожи, а в верхней ретикулярной дерме эластические волокна имеют канделяброобразные разветвления в направлении дермо-эпидермального соединения [12]. От них перпендикулярно поверхности кожи отходят до дермо-эпидермального соединения тонкие эластические структуры — окситалановые волокна, которые прикрепляются к дермальной стороне базальной мембраны. По мнению ряда исследователей, прикрепление эластических волокон не влияет на целостность дермо-эпидермального соединения, а обеспечивает корреляцию роста кожи с остальным телом [10].

Микрофибриллярные белки в составе эластического волокна способствуют физиологическим свойствам эластических волокон. Всего идентифицировано >30 белков (табл. 1), ассоциированных с эластическими волокнами [13]. Среди них наиболее значимые фибриллины (FBN) 1 и 2; фибулины (FBLN) 1, 2, 3, 4 и 5; микрофибрилл-ассоциированные белки [14]. Для формирования эластических волокон требуется микрофибриллярный каркас, окутывающий эластин, который представлен в основном фибриллином 1 [15]. Благодаря конкурентному взаимодействию между микрофибриллярными белками происходит прогрессирующая сборка эластического волокна.

Таблица 1. Компоненты эластического волокна

Компонент

Название, аббревиатура

Характерные особенности

Эластин

Elastin, ELN

Основной структурный компонент эластического волокна

Микрофибриллярные протеины

Фибриллины

Фибриллин 1

Fibrillin 1, FBN1

Структурный белок микрофибрилл

Фибриллин 2

Fibrillin 2, FBN2

Структурный белок микрофибрилл

Фибриллин 3

Fibrillin 3, FBN3

Структурный белок микрофибрилл

Фибулины

Фибулин 1

Fibulin 1, FBLN1

Связан с эластином, необходим для развития эндотелия

Фибулин 2

Fibulin 2, FBLN2

Расположен в месте между эластином и микрофибриллами

Фибулин 3

Fibulin 3, FBLN3

Связывает тканевый ингибитор металлопротеаз 3

Фибулин 4

Fibulin 4, FBLN4

Связывает LOX и FBN1

Фибулин 5

Fibulin 5, FBLN5

Связывает эластин, LOX, FBN1, LTBP2, LOXL1 и интегрины

Фибулин 7

Fibulin 7, FBLN7

Связывает различные белки внеклеточного матрикса (включая фибронектин и фибулин 1) и мезенхимальные клетки зубов

Скрытые TGF-β-связывающие белки

Скрытый TGF-β-связывающий белок 1

Latent transforming growth factor beta binding protein 1, LTBP1

Связывает микрофибриллы, фибронектин и латентный TGF-β

Скрытый TGF-β-связывающий белок 2

Latent transforming growth factor beta binding protein 2, LTBP2

Связывает FBLN5, микрофибриллы и волокна эластина

Скрытый TGF-β-связывающий белок 3

Latent transforming growth factor beta binding protein 3, LTBP3

Связывает микрофибриллы и скрытый TGF-β

Скрытый TGF-β-связывающий белок 4

Latent transforming growth factor beta binding protein 4, LTBP4

Связывает микрофибриллы, фиронектин и скрытый TGF-β

Микрофибрилл-ассоциированные гликопротеины

Микрофибрилл-ассоциированный гликопротеин 1

Microfibril associated glycoprotein 1, MAGP1 (Microfibril associated protein 2, MFAP2)

Связывает FBN1

Микрофибрилл-ассоциированный гликопротеин 2

Microfibril associated glycoprotein 2 MAGP2 (Microfibril associated protein 5, MFAP5)

Локализован в микрофибриллах

Микрофибрилл-ассоциированные протеины

Микрофибрилл-ассоциированный протеин 1

Microfibril associated protein 1, MFAP1

Локализован в микрофибриллах

Микрофибрилл-ассоциированный протеин 3

Microfibril associated protein 3, MFAP3

Локализован в микрофибриллах

Микрофибрилл-ассоциированный протеин 4

Microfibril associated protein 4, MFAP4

Локализован в микрофибриллах

Другие компоненты

Индуцированный трансформирующий фактор роста бета

Transforming growth factor beta induced, TGFBI

Локализован на границе между коллагеновым и эластическим волокном

Лизилоксидаза

Lysyl oxidase, LOX

Связывает FBLN4, соединение между микрофибриллой и эластином

Лизилоксидазоподобный фермент 1

Lysyl oxidase like 1, LOXL1

Связывает FBLN5, ретикулирует эластин — катализирует первый шаг в образовании поперечных связей

Эмиллин 1

Elastin microfibril interface 1, EMILIN1

Связывается с эластическими волокнами на границе между эластином и микрофибриллами

Эмиллин 2

Elastin microfibril interface 2, EMILIN2

Связывается с эластическими волокнами на границе между эластином и микрофибриллами

Версикан

Versican, VCAN

Основной компонент внеклеточного матрикса, связывает FBN1

Гепарансульфат

Heparan sulfate proteoglycan, HSPG2

Взаимодействует с многими биологическими молекулами, в том числе с LTBP4

Распределение микрофибриллярных белков в разных тканях может быть разным. Так, в коже наибольшая экспрессия у фибулина 3 и менее выраженная — у фибулина 5 и фибулина 4. Фибулин 5 взаимодействует с рецепторами интегрина, тропоэластина, фибриллина 1, лизилоксидазоподобного фермента 1 и скрытого TGF-β-связывающего белка 2 (LTBP2) и облегчает осаждение тропоэластина на микрофибриллярном каркасе. Фибулин 4 может связывать тропоэластин, лизилоксидазу и фибриллин 1 [16]. Скрытый TGF-β-связывающий белок 4 (LTBP4) служит регулятором передачи сигналов TGF-β, а также необходим для сборки эластических волокон за счет способности взаимодействовать с фибриллином-1 [17]. Микрофибриллярный ассоциированный белок 4 (MFAP4) связывает тропоэластин, десмозин, фибриллин 1 и фибриллин 2, он локализуется на границе микрофибрилла—эластин [18]. При формировании эластического волокна важное значение имеют фермент лизилоксидаза и лизилоксидазоподобный фермент 1 [19]. Дефект (снижение активности) лизилоксидазы может приводить к нарушению поперечного связывания и коллагеновых, и эластических волокон [20]. Неспецифическими компонентами эластического волокна являются гепарансульфаты [21]. Они широко распространены в виде мембранных и внеклеточных гликозаминогликанов, модулируют эластичность тканей, взаимодействуя с тропоэластином и пептидами эластина [22].

Наиболее изученные гены, участвующие в формировании эластического волокна, а также заболевания, возникающие при мутации соответствующих генов, представлены в табл. 2 [23]. Когда мы говорим о генах, кодирующих тот или иной белок, и их значении в коже, важно понимать активность транскрипции (передачи информации с ДНК на мРНК для последующей сборки полипептидной цепи) этих генов в разных тканях, это отражает, насколько активно происходит синтез определенных белков в нормальных (физиологических) условиях. Активность синтеза белков в разных тканях оценивают по экспрессии мРНК, для этого используют различные количественные методы, наиболее часто оценивается величина RPKM (reads per kilobase per million mapped reads — количество прочтений на килобазу на 1 млн картированных прочтений). В табл. 2 приведены RPKM не только для кожи, но и для сравнения в 3 органах с наиболее активным синтезом [24]. Таким образом, из табл. 2 видно, что синтез эластических волокон в физиологических условиях в коже протекает довольно неактивно, он может повышаться по активации регенерации после нарушения целостности кожи.

Таблица 2. Гены, ответственные за строение и формирование эластических волокон, их активность и заболевания, вызываемые мутациями в них

Ген, кодируемый им белок/фермент

Локализация в хромосоме

Клинические проявления мутации/полиморфизма

Наибольшая экспрессия в органах (RPKM)

Экспрессия в коже (RPKM)

ELN, кодирующий эластин

7q11.23, включает 34 экзона

Cutis laxa, с преобладанием кожных проявлений, легочные и кардиоваскулярные проявления отсутствуют, невыраженные или с поздним возникновением

Мочевой пузырь (40,782±21,623)

Желчный пузырь (38,099±8,721)

Легкие (37,026±11,192)

6,799±3,012

FBN1, кодирующий фибриллин 1 и белковый гормон аспрозин

15q21.1, включает 66 экзонов

Синдром Марфана, MASS фенотип

Плацента (47,183 ±8,412)

Жировая клетчатка (27,529±6,602) Желчный пузырь (26,375±6,141)

4,536±0,5

FBN2, кодирующий фибриллин 2

5q23.3, включает 65 экзонов

Врожденная контрактурная арахнодактилия

Плацента (46,245±10,194)

Яички (3,98±1,443)

Надпочечники (2,405±1,363)

Следы

FBLN1, кодирующий фибулин 1

22q13.31, включает 20 экзонов

Желчный пузырь (239,411±62,454)

Плацента (204,271±93,609)

Мочевой пузырь (183,262±88,737)

56,66±14,731

FBLN2, кодирующий фибулин 2

3р25.1, включает 19 экзонов

Жировая клетчатка (72,642±10,328) Плацента (47,384±6,419)

Яички (42,604±26,516)

15,249±4,712

EFEMP1 (EFG containing fibulin extracellular matrix protein 1), кодирующий фибулин 3

2р16.1, включает 12 экзонов

Дистрофия сетчатки Дойна

Плацента (172,089±55,623)

Легкие (80,575±15,708)

Желчный пузырь (73,886±11,638)

20,859±5,139

EFEMP2 (EFG containing fibulin extracellular matrix protein 2), кодирующий фибулин 4

11q13.1, включает 12 экзонов

Cutis laxa с проявлениями извитости артерий, летальная легочная гипертензия, хрупкость костей

Яичники (36,98±7,401)

Эндометрий (32,972±3,481)

Сердце (30,342±5,219)

5,19±5,157

FBLN5, кодирующий фибулин 5

14q32.12, включает 15 экзонов

Cutis laxa с проявлениями надклапанного аортального стеноза, летальная развивающаяся эмфизема

Желчный пузырь (67,722±4,379)

Селезенка (57,242 ±9,227)

Почки (49,619 ±11,035)

6,049±1,371

LTBP2, кодирующий Скрытый TGF-β-связывающий белок 2

14q24.3, включает 36 экзонов

Легкие (30,576±13,293)

Яичники (21,483±4,717)

Желчный пузырь (19,565±3,1)

1,235±0,315

LTBP4, кодирующий скрытый TGF-β-связывающий белок 4

19q13.2, включает 35 экзонов

Cutis laxa с проявлениями выраженных желудочно-кишечных и мочеполовых пороков развития, летальная развивающаяся эмфизема, умеренные сердечно-сосудистые нарушения

Простата (61,378±18,101)

Эндометрий (53,806±13,168)

Яичники (48,91±8,878)

8,933±5,558

MFAP4, кодирующий микрофибрилл-ассоциированный протеин 4

17р11.2, включает 6 экзонов

Smith—Magenis синдром

Желчный пузырь (378,072±95,778)

Легкие (320,563±105,557)

Мочевой пузырь (237,667±87,566)

29,749±4,099

LOX, кодирующий фермент лизилоксидазу

5q23.1, включает 8 экзонов

Аневризмы, диссекции грудного отдела аорты

Жировая клетчатка (18,502±8,53)

Желчный пузырь (11,561±3,641)

Мочевой пузырь (8,073±2,894)

4,268±1,207

LOXL1, кодирующий лизилоксидазо-подобный фермент 1

15q24.1, включает 9 экзонов

Эксфолиативный синдром

Сердце (6,872±2,179)

Простата (6,669±4,192)

Плацента (6,602±0,629)

0,907±0,492

HSPG2, кодирующий гепарансульфат или хондроитинсульфат)

1р36.12, включает 103 экзона

Синдром Шварца—Джампела, диссегментарная дисплазия и поздняя дискинезия

Жировая клетчатка (67,879±16,198)

Желчный пузырь (21,492±3,412)

Эндометрий (21,311±5,413)

9,588±4,087

Мутации в гене ELN приводят к дефициту белка в микрофибриллах с повышенной самоассоциацией волокон, нарушению функционирования тканей. Кроме общепринятых симптомов, в этом гене описаны также симптомы, схожие с синдромом Элерса—Данло, а также нарушения структуры волос и алопеция [10]. При различных мутациях, приводящих к развитию cutis laxa, кроме клинических проявлений, отмечены характерные гистологические характеристики при световой и электронной микроскопии: уменьшение количества эластических волокон и аморфного вещества (уменьшение и дезорганизация осаждения эластина на микрофибриллярные пучки); аморфный компонент эластических волокон разветвлен, фрагментирован и не связан должным образом с микрофибриллами [25].

Синтез эластина

Образование эластина происходит с позднего эмбрионального до подросткового периодов [26]. У взрослых эластические волокна de novo практически не образуются. Дермальные фибробласты способны синтезировать эластин, но его синтез подавляется посттранскрипционными механизмами [27]. Так, в коже взрослых людей отмечен очень низкий уровень мРНК эластина, что может указывать на нехватку его при процессе заживления ран [28]. Создание технологий активной мРНК эластина в настоящее время является наиболее перспективным для улучшения регенерации ран, улучшения ремоделирования инволюционных изменений эластических волокон и замещения дефектных эластических волокон при мутациях [29].

Ген ELN, кодирующий эластин, локализован на хромосоме 7q11.23 и включает 34 экзона [30]. После образования пре-мРНК она подвергается обширному альтернативному сплайсингу, поэтому считается, что небольшие вставки (инсерции) и потери (делеции) в рамке считывания чаще всего не приводят к значительной патологии [31]. Альтернативный сплайсинг может нарушаться вследствие воздействия ультрафиолетового (УФ) солнечного излучения. В некоторых исследованиях получены данные о том, что изначально довольно низкая экспрессия мРНК эластина еще больше уменьшается с возрастом, но не уменьшается под действием УФ-излучения в отличие от мРНК коллагена I и III типов [32, 33]. Кроме того, в коже с возрастом накапливается фрагментированный эластин с формированием эластоза кожи [34]. Синтез эластических волокон может повышаться в течение жизни при таких заболеваниях, как кожный эластоз, легочная гипертензия, эмфизема легких, хроническая обструктивная болезнь легких и др. [35]. Однако эластин при этих заболеваниях образуется неорганизованный и нефункциональный.

Синтез эластина начинается с формирования тропоэластина — линейного растворимого полипептида массой около 70 кДа, в первичной последовательности которого определяется чередование гидрофобных и сшивочных доменов, богатых аланином и лизином [36]. Гидрофобный домен богат валином, пролином и глицином, а домен сшивки состоит из десмозина и изодесмозина (десмозины — сшитые аминокислоты, характерные для эластина) [37]. На основе гидрофобных доменов разрабатываются эластиноподобные пептиды. Чаще всего используется домен Val-Pro-Gly-X-Gly, где X может быть любая аминокислота, кроме пролина [38]. Такие пептиды используются для местной и системной доставки препаратов, в том числе при лечении новообразований, заболеваний органов глаз, для восстановления хрящевой, костной, нервной и сердечно-сосудистой ткани [39, 40]. После синтеза первичной полипептидной цепи эластина происходит так называемая коацервация (обратимая самосборка тропоэластина в виде шара), что является следствием наличия большого количества гидрофобных областей в цепи эластина. Без коацервации невозможна последующая сборка (фолдинг) эластина. Коацервация происходит при определенной (физиологической) температуре и в присутствии хлорида натрия [41]. В результате коацервации тропоэластиновые полипептиды соприкасаются в местах сшивочных доменов, затем их ассоциация стабилизируется образованием ковалентных межмолекулярных сшивок — десмозинов [42]. Десмозины высокоспецифичны для эластина, их образование начинается с окисления дезаминированных лизильных остатков медь-зависимыми лизилоксидазами. В частности, к ним относится лизилоксидаза (lysyl oxidase — LOX) и лизилксидазоподобный фермент 1 (LOX-like-1), которые секретируются гладкомышечными клетками сосудов и фибробластами кожи [43]. При этом наличие дезаминированного лизина (аллизина) является ингибитором для лизилоксидазы, и следующие остатки лизина не дезаминируются. Таким образом, в результате окисления образуются альдегиды и немодифицированная эпсилон-аминогруппа лизина. Они неферментативно сливаются, образуя уже стабильную десмозиновую сшивку. В результате образования множественных десмозинов и изодесмозинов происходит стабилизация полимеризованного нерастворимого эластина и реализуется основное свойство эластичности — способность к возврату формы после растяжения [44]. Критическая роль в регуляции сборки эластического волокна, включая коацервацию и созревание тропоэластина, принадлежит белкам, ассоциированным с эластиновыми волокнами. В частности, фибулины 4 и 5 способствуют коацервации и осаждению лизилоксидазы для формирования пространственной структуры эластина [45].

Заключение

Приведенный обзор литературы демонстрирует особенности обмена эластических волокон и роль генов-кандидатов, участвующих на разных стадиях обмена эластина. Важно понимать, что синтез эластического волокна — это сложный многоступенчатый процесс, обусловленный взаимодействием многочисленных внешнесредовых факторов и генетической предрасположенностью. Важно учитывать, что большинство эластических волокон закладывается в раннем возрасте и практически не подвергается обмену в течение взрослой жизни. Поэтому дерматологам и косметологам необходимо объяснять это пациенту, назначать мероприятия по профилактике преждевременной фрагментации сети эластических волокон, а также по возможности способствовать сборке новых эластических волокон с целью поддержания упругости и эластичности кожи. Такие мероприятия включают защиту от УФ-лучей; ограничение возможных процессов гликации вследствие поступления большого количества углеводов; назначение витаминотерапии (в частности, витамина D при дефицитных состояниях).

Важность продления полноценности функционирования эластических волокон в коже повышается вследствие увеличения продолжительности жизни, так как период полураспада эластического волокна около 70 лет, а активность мРНК эластина крайне низкая. Кроме того, вопрос о полноценности формирования эластических волокон может возникать при восстановлении кожи после травм, в том числе после деструктивных манипуляций в косметологии и дерматологии или после проведения нитевого лифтинга. При недостаточной активности и полноценности генов, ответственных за образование эластического волокна, процессы регенерации могут нарушаться с возникновением нежелательных явлений.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

The authors declare no conflict of interest.

Исследование проведено без спонсорской поддержки.

The study was performed without external funding.

Литература / References:

  1. Lago JC, Puzzi MB. The effect of aging in primary human dermal fibroblasts. PLoS One. 2019;14(7):e0219165. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0219165
  2. Pawlaczyk M, Lelonkiewicz M, Wieczorowski M. Age-dependent biomechanical properties of the skin. Poster Der Alergol. 2013;30(5):302-306.  https://doi.org/10.5114/pdia.2013.38359
  3. Farage MA, Miller KW, Elsner p, Maibach HI. Characteristic of aging skin. Adv Wound Care (New Rochelle). 2013;2(1):5-10.  https://doi.org/10.1089/wound.2011.0356
  4. Uitto J, Li Q, Urban Z. The complexity of elastic fibre biogenesis in the skin — a perspective to the clinical heterogeneity of cutis laxa. Exp Dermatol. 2013;22(2):88-92.  https://doi.org/10.1111/exd.12025
  5. Van Damme T, Gardeitchik T, Mohamed M, Guerrero-Castillo S, Freisinger P, Guillemyn B, Kariminejad A, Dalloyaux D, van Kraaij S, Lefeber DJ, Syx D, Steyaert W, De Rycke R, Hoischen A, Kamsteeg EJ, Wong SY, van Scherpenzeel M, Jamali P, Brandt U, Nijtmans L, Korenke GC, Chung BHY, Mak CCY, Hausser I, Kornak U, Fischer-Zirnsak B, Strom TM, Meitinger T, Alanay Y, Utine GE, Leung KCP, Ghaderi-Sohi S, Coucke P, Symoens S, De Paepe A, Thiel C, Haack TB, Malfait F, Morava E, Callewaert B, Wevers RA. Mutations in ATP6V1E1 or ATP6V1A Cause Autosomal-Recessive Cutis Laxa. Am J Hum Genet. 2020;107(2):374.  https://doi.org/10.1016/j.ajhg.2020.07.013
  6. Minami A, Fujita Y, Goto J, Iuchi A, Fujita K, Mikami Y, Shiratori M, Ishii A, Mitragotri S, Iwao Y, Kanazawa H, Kurebayashi Y, Takahashi T, Otsubo T, Ikeda K, Suzuki T. Enhancement of elastin expression by transdermal administration of sialidase isozyme Neu2. Sci Rep. 2021;11(1):3302. https://doi.org/10.1038/s41598-021-82820-1
  7. Aghaei-Ghareh-Bolagh B, Mukherjee S, Lockley KM, Mithieux SM, Wang Z, Emmerson S, Darzi S, Gargett CE, Weiss AS. A novel tropoelastin-based resorbable surgical mesh for pelvic organ prolapse repair. Mater Today Bio. 2020;8:100081. https://doi.org/10.1016/j.mtbio.2020.100081
  8. Yeo GC, Aghaei-Ghareh-Bolagh B, Brackenreg EP, Hiob MA, Lee P, Weiss AS. Fabricated Elastin. Adv Healthc Mater. 2015;4(16):2530-2556. https://doi.org/10.1002/adhm.201400781
  9. Szychowski KA, Skóra B, Tobiasz J, Gmiński J. Elastin-derived peptide VGVAPG decreases differentiation of mouse embryo fibroblast (3T3-L1) cells into adipocytes. Adipocyte. 2020;9(1):234-245.  https://doi.org/10.1080/21623945.2020.1770525
  10. Urban Z. The complexity of elastic fiber biogenesis: the paradigm of cutis laxa. J Invest Dermatol. 2012;132(E1):12-14.  https://doi.org/10.1038/skinbio.2012.4
  11. Gharesouran J, Hosseinzadeh H, Ghafouri-Fard S, Jabbari Moghadam Y, Ahmadian Heris J, Jafari-Rouhi AH, Taheri M, Rezazadeh M. New insight into clinical heterogeneity and inheritance diversity of FBLN5-related cutis laxa. Orphanet J Rare Dis. 2021;16(1):51.  https://doi.org/10.1186/s13023-021-01696-6
  12. Lockhart-Cairns MP, Newandee H, Thomson J, Weiss AS, Baldock C, Tarakanova A. Transglutaminase-Mediated Cross-Linking of Tropoelastin to Fibrillin Stabilises the Elastin Precursor Prior to Elastic Fibre Assembly. J Mol Biol. 2020;432(21):5736-5751. https://doi.org/10.1016/j.jmb.2020.08.023
  13. Niu Y, Huang S, Wang Z, Xu P, Wang L, Li J, Gao M, Gao X, Gao Y. A nonsense variant in FBN1 caused autosomal dominant Marfan syndrome in a Chinese family: a case report. BMC Med Genet. 2020;21(1):211.  https://doi.org/10.1186/s12881-020-01148-1
  14. Yanagisawa H, Davis EC. Unraveling the mechanism of elastic fiber assembly: The roles of short fibulins. Int J Biochem Cell Biol. 2010;42(7):1084-1093. https://doi.org/10.1016/j.biocel.2010.03.009
  15. Shin SJ, Yanagisawa H. Recent updates on the molecular network of elastic fiber formation. Essays Biochem. 2019;63(3):365-376.  https://doi.org/10.1042/EBC20180052
  16. Tashima Y, He H, Cui JZ, Pedroza AJ, Nakamura K, Yokoyama N, Iosef C, Burdon G, Koyano T, Yamaguchi A, Fischbein MP. Androgens Accentuate TGF-β Dependent Erk/Smad Activation During Thoracic Aortic Aneurysm Formation in Marfan Syndrome Male Mice. J Am Heart Assoc. 2020;9(20):e015773. https://doi.org/10.1161/JAHA.119.015773
  17. Zhang Q, Qin Z, Yi S, Wei H, Zhou XZ, Su J. Two novel compound heterozygous variants of LTBP4 in a Chinese infant with cutis laxa type IC and a review of the related literature. BMC Med Genomics. 2020;13(1):183.  https://doi.org/10.1186/s12920-020-00842-6
  18. Rabajdová M, Urban P, Špaková I, Panagiotis A, Ferenčáková M, Rybár D, Bobrov N, Sabol F, Mareková M. Detection of Pathological Changes in the Aorta during Thoracic Aortic Aneurysm Progression on Molecular Level. Dis Markers. 2017;2017:9185934. https://doi.org/10.1155/2017/9185934
  19. Kattoor AJ, Goel A, Mehta JL. LOX-1: Regulation, Signaling and Its Role in Atherosclerosis. Antioxidants (Basel). 2019;8(7):218.  https://doi.org/10.3390/antiox8070218
  20. Fhayli W, Boëté Q, Kihal N, Cenizo V, Sommer P, Boyle WA, Jacob MP, Faury G. Dill Extract Induces Elastic Fiber Neosynthesis and Functional Improvement in the Ascending Aorta of Aged Mice with Reversal of Age-Dependent Cardiac Hypertrophy and Involvement of Lysyl Oxidase-Like-1. Biomolecules. 2020;10(2):173.  https://doi.org/10.3390/biom10020173
  21. Annaval T, Wild R, Crétinon Y, Sadir R, Vivès RR, Lortat-Jacob H. Heparan Sulfate Proteoglycans Biosynthesis and Post Synthesis Mechanisms Combine Few Enzymes and Few Core Proteins to Generate Extensive Structural and Functional Diversity. Molecules. 2020;25(18):4215. https://doi.org/10.3390/molecules25184215
  22. Boraldi F, Moscarelli P, Bochicchio B, Pepe A, Salvi AM, Quaglino D. Heparan sulfates facilitate harmless amyloidogenic fibril formation interacting with elastin-like peptides. Sci Rep. 2018;8(1):3115. Published 2018 Feb 15.  https://doi.org/10.1038/s41598-018-21472-0
  23. Gene. Accessed 01 March 2021. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/gene
  24. Zhao S, Ye Z, Stanton R. Misuse of RPKM or TPM normalization when comparing across samples and sequencing protocols. RNA. 2020;26(8): 903-909.  https://doi.org/10.1261/rna.074922.120
  25. Callewaert B, Renard M, Hucthagowder V, Albrecht B, Hausser I, Blair E, Dias C, Albino A, Wachi H, Sato F, Mecham RP, Loeys B, Coucke PJ, De Paepe A, Urban Z. New insights into the pathogenesis of autosomal-dominant cutis laxa with report of five ELN mutations. Hum Mutat. 2011;32(4): 445-455.  https://doi.org/10.1002/humu.21462
  26. Greenland KN, Carvajal MFCA, Preston JM, Ekblad S, Dean WL, Chiang JY, Koder RL, Wittebort RJ. Order, Disorder, and Temperature-Driven Compaction in a Designed Elastin Protein. J Phys Chem B. 2018;122(10): 2725-2736. https://doi.org/10.1021/acs.jpcb.7b11596
  27. Mithieux SM, Weiss AS. Design of an elastin-layered dermal regeneration template. Acta Biomater. 2017;52:33-40.  https://doi.org/10.1016/j.actbio.2016.11.054
  28. Halm M, Schenke-Layland K, Jaspers S, Wenck H, Fischer F. Visualizing tropoelastin in a long-term human elastic fibre cell culture model. Sci Rep. 2016;6:20378. https://doi.org/10.1038/srep20378
  29. Lescan M, Perl RM, Golombek S, Pilz M, Hann L, Yasmin M, Behring A, Keller T, Nolte A, Gruhn F, Kochba E, Levin Y, Schlensak C, Wendel HP, Avci-Adali M. De Novo Synthesis of Elastin by Exogenous Delivery of Synthetic Modified mRNA into Skin and Elastin-Deficient Cells. Mol Ther Nucleic Acids. 2018;11:475-484.  https://doi.org/10.1016/j.omtn.2018.03.013
  30. Elastin. Accessed 01 March 2021. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/gene/2006
  31. Velandia-Piedrahita CA, Morel A, Fonseca-Mendoza DJ, Huertas-Quiñones VM, Castillo D, Bonilla JD, Hernandez-Toro CJ, Miranda-Fernández MC, Restrepo CM, Cabrera R. A Novel Splice-Site Mutation in the ELN Gene Suggests an Alternative Mechanism for Vascular Elastinopathies. Appl Clin Genet. 2020;13:233-240.  https://doi.org/10.2147/TACG.S282240
  32. Wang T, Guo S, Liu X, Xv N, Zhang S. Protective effects of adipose-derived stem cells secretome on human dermal fibroblasts from ageing damages. Int J Clin Exp Pathol. 2015;8(12):15739-15748.
  33. Langton AK, Sherratt MJ, Griffiths CE, Watson RE. A new wrinkle on old skin: the role of elastic fibres in skin ageing. Int J Cosmet Sci. 2010;32(5): 330-339.  https://doi.org/10.1111/j.1468-2494.2010.00574.x
  34. El-Domyati M, El-Ammawi TS, Moawad O, El-Fakahany H, Medhat W, Mahoney MG, Uitto J. Efficacy of mesotherapy in facial rejuvenation: a histological and immunohistochemical evaluation. Int J Dermatol. 2012;51(8): 913-919.  https://doi.org/10.1111/j.1365-4632.2011.05184.x
  35. Min S, Kinnear C, D’Alessandro LCA, Bouwmeester J, Yao R, Chiasson D, Keeley F, Mital S. Genetic Diagnosis and the Severity of Cardiovascular Phenotype in Patients With Elastin Arteriopathy. Circ Genom Precis Med. 2020;13(6):e002971. https://doi.org/10.1161/CIRCGEN.120.002971
  36. Despanie J, Dhandhukia JP, Hamm-Alvarez SF, MacKay JA. Elastin-like polypeptides: Therapeutic applications for an emerging class of nanomedicines. J Control Release. 2016;240:93-108.  https://doi.org/10.1016/j.jconrel.2015.11.010
  37. Dhital B, Downing KT, Gul-E-Noor F, Landau Y, Rathod P, Hirsch S, Chang EJ, Boutis GS. Alterations of elastin in female reproductive tissues arising from advancing parity. Arch Biochem Biophys. 2019;666:127-137.  https://doi.org/10.1016/j.abb.2019.03.008
  38. MacEwan SR, Chilkoti A. Elastin-like polypeptides: biomedical applications of tunable biopolymers. Biopolymers. 2010;94(1):60-77.  https://doi.org/10.1002/bip.21327
  39. Rauscher S, Pomès R. The liquid structure of elastin. Elife. 2017;6:e26526. Published 2017 Nov 9.  https://doi.org/10.7554/eLife.26526
  40. Yeboah A, Cohen RI, Faulknor R, Schloss R, Yarmush ML, Berthiaume F. The development and characterization of SDF1α-elastin-like-peptide nanoparticles for wound healing. J Control Release. 2016;232:238-247.  https://doi.org/10.1016/j.jconrel.2016.04.020
  41. Di Vito A, Donato A, Presta I, Mancuso T, Brunetti FS, Mastroroberto P, Amorosi A, Malara N, Donato G. Extracellular Matrix in Calcific Aortic Valve Disease: Architecture, Dynamic and Perspectives. Int J Mol Sci. 2021;22(2):913.  https://doi.org/10.3390/ijms22020913
  42. Lemaire F, Audonnet S, Perotin JM, Gaudry P, Dury S, Ancel J, Lebargy F, Antonicelli F, Deslée G, Le Naour R. The elastin peptide VGVAPG increases CD4+ T-cell IL-4 production in patients with chronic obstructive pulmonary disease. Respir Res. 2021;22(1):14.  https://doi.org/10.1186/s12931-020-01609-4
  43. Noda K, Kitagawa K, Miki T, Horiguchi M, Akama TO, Taniguchi T, Taniguchi H, Takahashi K, Ogra Y, Mecham RP, Terajima M, Yamauchi M, Nakamura T. A matricellular protein fibulin-4 is essential for the activation of lysyl oxidase. Sci Adv. 2020;6(48):eabc1404. https://doi.org/10.1126/sciadv.abc1404
  44. Skjøt-Arkil H, Clausen RE, Nguyen QH, Wang Y, Zheng Q, Martinez FJ, Hogaboam CM, Han M, Klickstein LB, Larsen MR, Nawrocki A, Leeming DJ, Karsdal MA. Measurement of MMP-9 and -12 degraded elastin (ELM) provides unique information on lung tissue degradation. BMC Pulm Med. 2012;12:34.  https://doi.org/10.1186/1471-2466-12-34
  45. Egea G, Jiménez-Altayó F, Campuzano V. Reactive Oxygen Species and Oxidative Stress in the Pathogenesis and Progression of Genetic Diseases of the Connective Tissue. Antioxidants (Basel). 2020;9(10):1013. https://doi.org/10.3390/antiox9101013

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.