Оценка влияния ферментного препарата Флогэнзим на способность к образованию биопленок клинических штаммов, выделенных из отделяемого хирургических ран
Журнал: Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2025;(10):88-94.
DOI: 10.17116/hirurgia202510188
Прочитано: 1156 раз
Резюме
ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ
Оценка влияния ферментного препарата Флогэнзим на способность к образованию биопленок клинических штаммов, выделенных из инфицированных хирургических ран.
МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ
Исследовали 57 штаммов бактерий, выделенных из отделяемого послеоперационных ран пациентов. Пленкообразующую способность оценивали в П-образных лунках 96-луночного планшета по ранее описанной методике. Для оценки взаимодействия с антибиотиками использовали цефотаксим, амикацин и гентамицин. В выращенные культуры в двукратно разведенной среде вносили антибиотики в присутствии Флогэнзима и без него. Подсчет количества КОЕ проводили после высева 10 мкл питательной среды с выросшими микроорганизмами на агар Мюллера—Хинтон с последующей инкубацией в течение 18 ч при температуре 37 °C.
РЕЗУЛЬТАТЫ
Из 21 штамма с выраженной пленкообразующей активностью у 18 (85,7%) оптическая плотность (ОП) снизилась под действием Флогэнзима. Средняя ОП биопленки без препарата составила M1=0,19±0,09, с добавлением Флогэнзима — M2=0,12±0,07 (p=0,022; парный критерий t). Добавление препарата Флогэнзим к цефотаксиму, амикацину и гентамицину приводило к выраженному снижению количества КОЕ/мл для всех исследованных штаммов E. coli по сравнению с использованием антибиотика без Флогэнзима. В питательной среде без Флогэнзима медианные значения КОЕ/мл составили 113,1 для цефотаксима, 110,2 для амикацина и 108,4 для гентамицина. При добавлении Флогэнзима показатели снижались до 7,1, 5,3 и 5,2 КОЕ/мл соответственно (p<0,05).
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Ферментный препарат Флогэнзим достоверно снижает пленкообразующую способность бактериальных клеток, выделенных из хирургических ран, что уменьшает риск хронизации инфекционного процесса и рецидивирующего течения. Дополнительно Флогэнзим повышает эффективность антибиотикотерапии, направленной на эрадикацию возбудителя и противовоспалительный эффект, при этом усиливает действие не только бета-лактамных антибиотиков, но и аминогликозидов.
Ключевые слова
- бактериальные пленки
- инфекция хирургических ран
- системная энзимотерапия
- антибактериальная терапия
Дата поступления: 03.09.2025
Дата принятия в печать: 28.09.2025
Дата публикации: 30.10.2025
- Narang A, Kaur K, Bedi N, Rajput N, Kaur G, Kaur S. Targeting Microbial Biofilms and Promoting Wound Healing in MRSA-Infected Diabetic Rats using Postbiotics of Lactiplantibacillus plantarum. Probiotics Antimicrob Proteins. 2025. https://doi.org/10.1007/s12602-025-10565-8
- Sørensen S, Kvich L, Xu Y, Thomsen TR, Bjarnsholt T, Thaarup I. Development of a tri-species wound model for studying fungal-bacterial interactions and antimicrobial therapies. Biofilm. 2025;9:100256. https://doi.org/10.1016/j.bioflm.2025.100256
- Kabir RB, Ahsan T, Rahman MF, Jobayer M, Shamsuzzaman SM. Biofilm-producing and specific antibiotic resistance genes in Pseudomonas aeruginosa isolated from patients admitted to a tertiary care hospital, Bangladesh. IJID Reg. 2024;11:100369. https://doi.org/10.1016/j.ijregi.2024.100369
- Esin S, Kaya E, Maisetta G, Romanelli M, Batoni G. The antibacterial and antibiofilm activity of Granudacyn in vitro in a 3D collagen wound infection model. J Wound Care. 2022;31(11):908-922. https://doi.org/10.12968/jowc.2022.31.11.908
- Coles VE, Puri L, Bhandari M, Wood TJ, Burrows LL. The effects of chlorhexidine, povidone-iodine and vancomycin on growth and biofilms of pathogens that cause prosthetic joint infections: an in-vitro model. J Hosp Infect. 2024;151:99-108. https://doi.org/10.1016/j.jhin.2024.06.010
- O’Donnell JA, Wu M, Cochrane NH, Belay E, Myntti MF, James GA, Ryan SP, Seyler TM. Efficacy of common antiseptic solutions against clinically relevant microorganisms in biofilm. Bone Joint J. 2021;103-B(5):908-915. https://doi.org/10.1302/0301-620X.103B5.BJJ-2020-1245.R2
- Sun H, Sun S, Wang H, Cheng K, Zhou Y, Wang X, Gao S, Mo J, Li S, Lin H, Wang P. Phenylboronic acid-modified carbon dot-proteinase K nanohybrids for enhanced photodynamic therapy against bacterial biofilm infections. Acta Biomater. 2025;194:352-363. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2025.01.030
- Baidamshina DR, Koroleva VA, Olshannikova SS, Trizna EY, Bogachev MI, Artyukhov VG, Holyavka MG, Kayumov AR. Biochemical Properties and Anti-Biofilm Activity of Chitosan-Immobilized Papain. Mar Drugs. 2021;19(4):197. https://doi.org/10.3390/md19040197
- Siala W, Rodriguez-Villalobos H, Fernandes P, Tulkens PM, Van Bambeke F. Activities of Combinations of Antistaphylococcal Antibiotics with Fusidic Acid against Staphylococcal Biofilms in In Vitro Static and Dynamic Models. Antimicrob Agents Chemother. 2018;62(7):e00598-18. https://doi.org/10.1128/AAC.00598-18
- Roscetto E, Di Gennaro D, Ascione T, Galdiero U, Aversa M, Festa E, Catania MR, Balato G. Antiseptics’ Concentration, Combination, and Exposure Time on Bacterial and Fungal Biofilm Eradication. Arthroplast Today. 2024;28:101468. https://doi.org/10.1016/j.artd.2024.101468
- Tetz GV, Artemenko NK, Tetz VV. Effect of DNase and antibiotics on biofilm characteristics. Antimicrob Agents Chemother. 2009;53(3):1204-1209. https://doi.org/10.1128/AAC.00471-08
- Fleming D, Niese B, Redman W, Vanderpool E, Gordon V, Rumbaugh KP. Contribution of Pseudomonas aeruginosa Exopolysaccharides Pel and Psl to Wound Infections. Front Cell Infect Microbiol. 2022;12:835754. https://doi.org/10.3389/fcimb.2022.835754
- Tkatschenko D, Hansen S, Koch J, Ames C, Fehlings MG, Berven S, Sekhon L, Shaffrey C, Smith JS, Hart R, Kim HJ, Wang J, Ha Y, Kwan K, Hai Y, Valacco M, Falavigna A, Taboada N, Guiroy A, Emmerich J, Meyer B, Kandziora F, Thomé C, Loibl M, Peul W, Gasbarrini A, Obeid I, Gehrchen M, Trampuz A, Vajkoczy P, Onken J. Prevention of Surgical Site Infections in Spine Surgery: An International Survey of Clinical Practices Among Expert Spine Surgeons. Global Spine J. 2023;13(7):2007-2015. https://doi.org/10.1177/21925682211068414
- Kalpana BJ, Aarthy S, Pandian SK. Antibiofilm activity of α-amylase from Bacillus subtilis S8-18 against biofilm forming human bacterial pathogens. Appl Biochem Biotechnol. 2012;167(6):1778-1794. https://doi.org/10.1007/s12010-011-9526-2
- Suaifan GARY, Abdel Rahman DMA, Abu-Odeh AM, Abu Jbara F, Shehadeh MB, Darwish RM. Antibiotic-Lysobacter enzymogenes proteases combination as a novel virulence attenuating therapy. PLoS One. 2023;18(3):e0282705. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0282705
- Mood EH, Goltermann L, Brolin C, Cavaco LM, Nejad AJ, Yavari N, Frederiksen N, Franzyk H, Nielsen PE. Antibiotic Potentiation in Multidrug-Resistant Gram-Negative Pathogenic Bacteria by a Synthetic Peptidomimetic. ACS Infect Dis. 2021;7(8):2152-2163. https://doi.org/10.1021/acsinfecdis.1c00147
Рекомендуем статьи по данной теме:
Антибиотикотерапия у детей при заболеваниях ЛОР-органов.Российская ринология. 2026;34(1):54-62
Эффективность и безопасность применения топической антибактериальной терапии у пациентов с острым наружным бактериальным отитом: результаты ретроспективного исследования.Вестник оториноларингологии. 2024;89(6):24-27
Этиология ранних пневмоний у пациентов в остром периоде тяжелой черепно-мозговой травмы.Анестезиология и реаниматология. 2024;(5):58-63