Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Кривенко Л.В.

ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» ФМБА России

Свиридова А.А.

ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» ФМБА России

Мельников М.В.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России;
ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» ФМБА России;
ФГБУ «Гематологический научный центр Институт иммунологии» ФМБА России

Роговский В.С.

ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» Федерального медико-биологического агентства России;
ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Бойко А.Н.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России;
ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» Федерального медико-биологического агентства России

Пащенков М.В.

ФГБУ ГНЦ «Институт иммунологии» ФМБА России

Влияние флуоксетина на продукцию дендритными клетками интерлейкина-6 и интерлейкина-1β при рассеянном склерозе in vitro

Авторы:

Кривенко Л.В., Свиридова А.А., Мельников М.В., Роговский В.С., Бойко А.Н., Пащенков М.В.

Подробнее об авторах

Прочитано: 2150 раз


Как цитировать:

Кривенко Л.В., Свиридова А.А., Мельников М.В., Роговский В.С., Бойко А.Н., Пащенков М.В. Влияние флуоксетина на продукцию дендритными клетками интерлейкина-6 и интерлейкина-1β при рассеянном склерозе in vitro. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. Спецвыпуски. 2020;120(7‑2):67‑72.
Krivenko LV, Sviridova AA, Melnikov MV, Rogovskii VS, Boyko AN, Pashenkov MV. The influence of fluoxetine on interleukin-6 and interleukin-1β production by dendritic cells in multiple sclerosis in vitro. S.S. Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry. 2020;120(7‑2):67‑72. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/jnevro202012007267

Рекомендуем статьи по данной теме:
Ког­ни­тив­ные на­ру­ше­ния у па­ци­ен­тов с рас­се­ян­ным скле­ро­зом. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2025;(4-2):67-73
Мо­ле­ку­ляр­ные ме­ха­низ­мы раз­ви­тия ос­тро­го рас­се­ян­но­го эн­це­фа­ло­ми­ели­та. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2025;(7-2):7-11
Хи­рур­ги­чес­кое ле­че­ние вто­рич­ной три­ге­ми­наль­ной нев­рал­гии. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(11):203-209
Ка­чес­тво жиз­ни па­ци­ен­тов с рас­се­ян­ным скле­ро­зом в Смо­лен­ской об­лас­ти. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(12):36-40
Гор­мо­наль­ные ме­то­ды кон­тра­цеп­ции и рас­се­ян­ный скле­роз. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(1):24-30
Эпи­де­ми­оло­гия рас­се­ян­но­го скле­ро­за в Но­во­си­бир­ске. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(1):119-127
Кли­ни­чес­кий слу­чай X-сцеп­лен­ной ад­ре­но­лей­ко­дис­тро­фии. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(4):102-107
Воз­мож­нос­ти ис­кусствен­но­го ин­тел­лек­та при рас­се­ян­ном скле­ро­зе. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(5):14-21

Наряду с изучением роли клеточного и гуморального иммунного ответа в патогенезе рассеянного склероза (РС) участие врожденной иммунной системы также привлекает большое внимание [1]. Дендритные клетки являются важным звеном врожденного иммунного ответа и являются наиболее эффективными антигенпрезентирующими клетками, способными не только активировать наивные Т-лимфоциты, но и направлять их дифференцирование в различные адаптивные субпопуляции, обладающие про- или противовоспалительными свойствами [2]. Способность дендритных клеток как индуцировать аутоиммунное воспаление, так и поддерживать иммунологическую толерантность показана in vitro и на экспериментальных моделях in vivo, что указывает на существенное значение дендритных клеток в патогенезе различных аутоиммунных заболеваний [2]. На участие дендритных клеток в патогенезе РС также указывает прямое или косвенное влияние препаратов патогенетической терапии РС на их функции [3].

Исследование иммуномодулирующего эффекта биогенных аминов как прямых медиаторов нейроиммунного взаимодействия является перспективным направлением в изучении патогенеза РС. Показано участие дофамина, норадреналина и серотонина в модуляции Th17-иммунного ответа, играющего важное патогенетическое значение при РС [4, 5]. В то же время влияние нейротрансмиттеров на функции дендритных клеток, способных индуцировать развитие Th17-клеток, изучено недостаточно.

Цель исследования — изучить влияние селективного ингибитора обратного захвата серотонина (СИОЗС) флуоксетина на продукцию дендритными клетками цитокинов интерлейкина-6 (ИЛ-6) и интерлейкина-1β (ИЛ-1β), которые являются необходимыми факторами для развития Th17-клеток и играют важную провоспалительную роль в патогенезе РС.

Материал и методы

Проведено комплексное клиническое и иммунологическое обследование 5 больных (3 женщины и 2 мужчины) в возрасте от 25 до 35 лет (медиана возраста 28 лет) с достоверным диагнозом «ремиттирующий РС» по критериям МакДональда в модификации 2010 г. [6]. Длительность заболевания на момент включения в исследование составляла от 2 до 5 лет (медиана 4 года). Все больные >1 года получали патогенетическую терапию препаратом глатирамера ацетат (20 мг п/к ежедневно). Все больные находились в стадии клинической ремиссии. Всем пациентам проводился стандартный неврологический осмотр с оценкой уровня инвалидизации по шкале Expanded Disability Status Scale (EDSS) (уровень инвалидизации составил от 1 до 2 баллов) [7]. На момент забора крови все исследуемые >3 мес не получали лечение кортикостероидной терапией и терапией антидепрессантами. Контрольную группу составили 5 условно здоровых доноров, сопоставимых по полу и возрасту с группой больных РС (3 женщины и 2 мужчины в возрасте от 25 до 35 лет).

Для получения незрелых дендритных клеток из венозной крови (взятой в утренние часы в пластиковую пробирку с гепарином) выделяли мононуклеарные клетки периферической крови (МНКПК) путем центрифугирования на градиенте плотности фиколл-урографина («ПанЭко», Россия), трижды отмывали фосфатно-солевым буфером (ФСБ, pH7,3) и ресуспендировали в культуральной среде RPMI 1640 («Life Technologies», США) с добавлением 2 mM L-глутамина («ПанЭко», Россия) и 2% человеческой AB сыворотки («PAA», Австрия) (полная культуральная среда (ПКС)). Далее из МНКПК путем магнитной сортировки клеток выделяли моноциты (негативная селекция; «Miltenyi Biotec», Германия), которые затем культивировали с рекомбинантным человеческим гранулоцитарно-макрофагальным колониестимулирующим фактором (80 нг/мл) и интерлейкином-4 (50 нг/мл) («Miltenyi Biotec», Германия) в течение 6 сут, получая незрелые дендритные клетки [8].

Для анализа продукции цитокинов незрелые дендритные клетки высевали в 96-луночные плоскодонные планшеты по 40 тыс. клеток на 200 мкл среды на лунку («SPL Life Sciences», Республика Корея). Затем в течение 2 ч клетки преинкубировали с 100 МЕ интерферона-γ (ИФН-γ) («Becton Dickinson», США) при +37 °C в атмосфере 5% CO2, после чего вносили липополисахарид (ЛПС) в конечной концентрации 100 нг/мл [9]. В отрицательный контроль вместо ИФН-γ и ЛПС вносили эквивалентный объем культуральной среды. Далее планшеты инкубировали при +37 °C в атмосфере 5% CO2 в течение 24 ч, после чего отбирали супернатант и замораживали при –70 °С.

Для оценки влияния флуоксетина на продукцию ИЛ-6 и ИЛ-1β образцы дендритных клеток также стимулировали в присутствии флуоксетина («Tocris», Швейцария) в конечной концентрации 106 М [10]. Для изучения рецепторов, способных опосредовать иммуномодулирующий эффект флуоксетина, дендритные клетки были преинкубированы в течение 15 мин в присутствии антагонистов 5-HT1A-(NAD 299), 5-HT2A-(MDL 100907), 5-HT2B-(RS 127445) рецепторов или агониста 5-HT2B-(BW 723C86) рецепторов («Tocris», Швейцария) в конечной концентрации 106 М, после чего в клетки вносили флуоксетин и стимулировали по вышеописанной схеме.

Уровни спонтанной и индуцированной продукции ИЛ-6 и ИЛ-1β в супернатантах клеточной культуры определяли методом иммуноферментного анализа (ИФА). Для измерения концентрации цитокинов использовали наборы фирмы «Вектор-Бест» (Россия). Уровни аналитов выражали в пг/мл или в процентах по отношению к стимулированной продукции цитокинов.

Все исследуемые подписали информированное согласие на участие в данном исследовании. Проведение исследования было одобрено этическим комитетом Российского национального исследовательского медицинского университета им. Н.И. Пирогова (протокол №192).

Статистическую обработку результатов проводили с использованием программы Prizm 6. Для оценки различий между двумя независимыми группами использовали U-критерий Манна—Уитни. Статистически значимыми различия считались при p<0,05.

Результаты

Согласно данным ИФА, спонтанная и ЛПС-стимулированная продукция ИЛ-6 и ИЛ-1β была сопоставима в обеих группах (см. таблицу). Внесение флуоксетина оказало ингибирующий эффект на продукцию как ИЛ-6, так и ИЛ-1β в обеих группах (см. рисунок, а—г). Блокада 5-HT2B-рецепторов специфическим антагонистом RS 127445 снижала выраженность ингибирующего эффекта флуоксетина на продукцию ИЛ-1β в обеих группах (см. рисунок, в, г) и ИЛ-6 в группе здоровых доноров (см. рисунок, б) (в присутствии антагониста 5-HT2B-рецепторов ингибирующий эффект флуоксетина на продукцию цитокинов не был достоверным). Активация 5-HT2B-рецепторов специфическим агонистом (BW 723C86), напротив, усиливала ингибирующий эффект флуоксетина на продукцию дендритными клетками ИЛ-6 в обеих группах (см. рисунок, а, б), но не изменяла эффект флуоксетина на продукцию ИЛ-1β (см. рисунок, в, г). Блокада 5-HT1A- и 5-HT2A-рецепторов специфическими антагонистами NAD 299 и MDL 100907 соответственно не оказала влияния на ингибирующий эффект флуоксетина на продукцию цитокинов (см. рисунок, а—г).

Продукция ИЛ-6 и ИЛ-1β дендритными клетками больных РС и здоровых контролей. Представлено значение медианы, в скобках — 25-й и 75-й процентили

Цитокин

Стимуляция

Больные РС (n=5)

Здоровые доноры (n=5)

ИЛ-6, пг/мл

Без стимуляции

135 (100; 184)

110 (90; 191)

ЛПС

5748 (4360; 6137)

6025 (5555; 6457)

ИЛ-1β, пг/мл

Без стимуляции

9 (7; 24)

9 (5; 12)

ЛПС

111 (71; 114)

100 (98; 103)

Влияние флуоксетина на продукцию ИЛ-6 (а, б) и ИЛ-1β (в, г) дендритными клетками больных РС и здоровых доноров in vitro.

Дендритные клетки (в количестве 40 000 в 200 мкл на лунку), полученные от больных РС и группы здоровых доноров, были стимулированы ЛПС в присутствии/отсутствии флуоксетина (10–6 М) с или без предварительной инкубации с антагонистами 5-HT1A (NAD 299)-, 5-HT2A (MDL 100907)-, 5-HT2B (RS 127445)-рецепторов (10–6 М) или агонистом 5-HT2B (BW 723C86)-рецепторов (10–6 М). После 24-часовой инкубации в CO2-инкубаторе в супернатантах клеточной культуры определяли уровни продукции ИЛ-6 и ИЛ-1β методом ИФА. Данные представлены в виде процентов по отношению к ЛПС-стимулированной продукции цитокинов. Горизонтальная линия в боксе обозначает значение медианы, символы — значения.

Обсуждение

Наличие дендритных клеток в центральной нервной системе (ЦНС), а также путей сообщения между ЦНС и глубокими шейными лимфатическими узлами посредством лимфатической системы и лимфатических сосудов твердой мозговой оболочки мозга позволяет рассматривать дендритные клетки в качестве кандидатов на роль первичных инициаторов аутоиммунного воспаления в ЦНС [11—13]. Таким образом, модуляция функций дендритных клеток, в особенности в ЦНС, — важная задача для патогенетической терапии РС.

В этом аспекте биогенные амины, рецепторы к которым экспрессируются дендритными клетками, привлекают наибольшее внимание. В проведенных ранее исследованиях было показано влияние дофамина, норадреналина и серотонина на функции дендритных клеток, в том числе на способность дендритных клеток индуцировать патогенетически значимый при РС Th1- и Th17-иммунный ответ [14—16]. Флуоксетин относится к препаратам группы СИОЗС, однако также обладает иммуномодулирующим свойством. Установлено, что флуоксетин может модулировать функции клеток врожденной и адаптивной иммунной системы, а также смягчать течение экспериментального аутоиммунного энцефаломиелита у животных [17, 18]. Обсуждается терапевтический потенциал флуоксетина в качестве дополнительной патогенетической терапии РС. Было показано, что СИОЗС не только оказывают профилактическое действие на связанные со стрессом обострения РС (эсциталопрам), но также способны подавлять МРТ-активность заболевания (флуоксетин) [17, 19, 20].

Согласно полученным в данном исследовании результатам, флуоксетин снижает продукцию дендритными клетками провоспалительных цитокинов ИЛ-6 и ИЛ-1β как у больных РС, так и у здоровых доноров (см. рисунок, а—г), что согласуется с данными других исследователей и подтверждает противовоспалительный эффект флуоксетина [10]. В то же время механизмы, опосредующие этот эффект, до конца не ясны. Одним из таких механизмов может быть активация серотониновых рецепторов на дендритных клетках. По данным M. Idzko и соавт. [21], дендритные клетки человека экспрессируют 5-HT1B-, 5-HT1E-, 5-HT-, 5-HT2B-, 5-HT3-, 5-HT4-, и 5-HT7-рецепторы. Нами не было обнаружено изменения эффекта флуоксетина на продукцию цитокинов на фоне предварительной блокады 5-HT1A- и 5-HT2A-рецепторов (см. рисунок, а—г). В то же время блокада 5-HT2B-рецепторов снижала ингибирующий эффект флуоксетина на продукцию ИЛ-1β в обеих группах (см. рисунок, г, д) и ИЛ-6 в группе здоровых доноров (см. рисунок, б), что указывает на то, что ингибирующий эффект флуоксетина на продукцию ИЛ-6 и ИЛ-1β может быть опосредован активацией 5-HT2B-рецепторов. Напротив, предварительная активация 5-HT2B-рецепторов специфическим агонистом усиливала ингибирующий эффект флуоксетина на продукцию цитокинов дендритными клетками, что также подтверждает участие 5-HT2B-рецепторов в механизме действия флуоксетина (см. рисунок, а, б).

Полученные результаты с использованием агониста 5-HT2B-рецепторов согласуются с результатами других исследователей. В исследовании A. Szabo и соавт. [22] было установлено, что стимуляция 5-HT2B-рецепторов с использованием агониста BW 723C86 (без последующего культивирования с флуоксетином) подавляет активацию человеческих CD1a+-дендритных клеток человека и снижает продукцию ими ИЛ-6, ИЛ-8 и ИЛ-12. Также была обнаружена сниженная способность таких дендритных клеток индуцировать Th1- и Th17-иммунный ответ. Однако нет данных, описывающих дальнейшие изменения в клеточном метаболизме, которые могли бы объяснить связь активации 5-HT2B-рецепторов с подавлением выработки провоспалительных цитокинов.

Другим вероятным механизмом противовоспалительного эффекта флуоксетина может быть повышение уровня внутриклеточного серотонина в дендритных клетках. В то же время и этот механизм действия нуждается в уточнении, так как само влияние серотонина на функции дендритных клеток противоречиво. По данным одних авторов, серотонин может оказывать различный эффект на продукцию дендритными клетками провоспалительных цитокинов, в частности подавлять ИЛ-12p70, ИЛ-6, но стимулировать ИЛ-1β, по данным других — стимулировать ИЛ-6, ИЛ-10, ИЛ-8, но не ИЛ-12p70 и ИЛ-1β, тогда как описанные иммуномодулирующие свойства флуоксетина указывают прежде всего на его противовоспалительные эффекты [17, 21, 23]. Рецепторы серотонина связаны преимущественно с G-белками и в зависимости от типа рецептора способны повышать или уменьшать уровень циклического аденозинмонофосфата (цАМФ), в результате чего активация различных типов серотониновых рецепторов способна вызывать различные эффекты. В этом случае важным фактором является афинность рецепторов, но этот вопрос также остается неизученным.

Полученные данные в совокупности с результатами других исследований позволяют говорить о возможных перспективах СИОЗС в качестве патогенетической терапии РС. Однако дальнейшие исследования с целью уточнения иммунных механизмов действия этих препаратов необходимы.

Исследование выполнено при финансовой поддержке РФФИ в рамках научного проекта №18-315-00436.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

The authors declare no conflicts of interest.

Литература / References:

  1. Hemmer B, Kerschensteiner M, Korn T. Role of the innate and adaptive immune responses in the course of multiple sclerosis. Lancet Neurol. 2015;14(4):406-419.  https://doi.org/10.1016/S1474-4422(14)70305-9
  2. Мельников М.В., Пащенков М.В., Бойко А.Н. Дендритные клетки при рассеянном склерозе. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2017;117(2):22-30. 
  3. Sie C, Korn T. Dendritic cells in central nervous system autoimmunity. Semin Immunopathol. 2017;39(2):99-111.  https://doi.org/10.1007/s00281-016-0608-7
  4. Melnikov M, Rogovskii V, Boyko A, Pashenkov M. The influence of biogenic amines on Th17-mediated immune response in multiple sclerosis. Mult Scler Relat Disord. 2018;12:21:19-23.  https://doi.org/10.1016/j.msard.2018.02.012
  5. Boyko A, Melnikov M, Ghetishev R, Pashenkov M. The role of biogenic amines in regulation of interaction between immune and nervous systems in multiple sclerosis. Neuroimmunomodulation. 2016;23(4):217-223.  https://doi.org/10.1159/000449167
  6. Polman CH, Reingold SC, Banwell B, Clanet M, Cohen JA, Filippi M, Fujihara K, Havrdova E, Hutchinson M, Kappos L, Lublin FD, Montalban X, O’Connor P, Sandberg-Wollheim M, Thompson AJ, Waubant E, Weinshenker B, Wolinsky JS. Diagnostic criteria for multiple sclerosis: 2010 revisions to the McDonald criteria. Ann Neurol. 2011;69(2):292-302.  https://doi.org/10.1002/ana.22366
  7. Kurtzke JF. Rating neurologic impairment in multiple sclerosis: an expanded disability status scale (EDSS). Neurology. 1983;33(11):1444-1452. https://doi.org/10.1212/wnl.33.11.1444
  8. Sallusto F., Lanzavecchia A. Efficient presentation of soluble antigen by cultured human dendritic cells is maintained by granulocyte/macrophage colony-stimulating factor plus interleukin 4 and downregulated by tumor necrosis factor alpha. J Exp Med. 1994;179(4):1109-1118.
  9. Han TH, Jin P, Ren J, Slezak S, Marincola FM, Stroncek DF. Evaluation of 3 clinical dendritic cell maturation protocols containing lipopolysaccharide and interferon-gamma. J Immunother. 2009;32(4):399-407.  https://doi.org/10.1097/CJI.0b013e31819e1773
  10. Branco-de-Almeida LS, Kajiya M, Cardoso CR, Silva MJ, Ohta K, Rosalen PL, Franco GC, Han X, Taubman MA, Kawai T. Selective serotonin reuptake inhibitors attenuate the antigen presentation from dendritic cells to effector T lymphocytes. FEMS Immunol Med Microbiol. 2011;62(3):283-294.  https://doi.org/10.1111/j.1574-695X.2011.00816.x
  11. Pashenkov M, Huang YM, Kostulas V, Haglund M, Söderström M, Link H. Two subsets of dendritic cells are present in human cerebrospinal fluid. Brain. 2001;124(Pt 3):480-492. 
  12. Louveau A, Smirnov I, Keyes TJ, Eccles JD, Rouhani SJ, Peske JD, Derecki NC, Castle D, Mandell JW, Lee KS, Harris TH, Kipnis J Structural and functional features of central nervous system lymphatic vessels. Nature. 2015;523(7560):337-341.  https://doi.org/10.1038/nature14432
  13. De Laere M, Berneman ZN. Cools N. To the Brain and Back: Migratory Paths of Dendritic Cells in Multiple Sclerosis. J Neuropathol Exp Neurol. 2018;77(3):178-192.  https://doi.org/10.1093/jnen/nlx114
  14. Prado C, Gaiazzi M, González H, Ugalde V, Figueroa A, Osorio-Barrios FJ, López E, Lladser A, Rasini E, Marino F, Zaffaroni M, Cosentino M, Pacheco R. Dopaminergic Stimulation of Myeloid Antigen-Presenting Cells Attenuates Signal Transducer and Activator of Transcription 3-Activation Favouring the Development of Experimental Autoimmune Encephalomyelitis. Front Immunol. 2018;9:571.  https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.00571
  15. Takenaka MC, Araujo LP, Maricato JT, Nascimento VM, Guereschi MG, Rezende RM, Quintana FJ, Basso AS. Norepinephrine Controls Effector T Cell Differentiation through β2-Adrenergic Receptor-Mediated Inhibition of NF-κB and AP-1 in Dendritic Cells. J Immunol. 2016;196(2):637-644.  https://doi.org/10.4049/jimmunol.1501206
  16. Müller T, Dürk Th, Blumenthal B, Grimm M, Cicko S, Panther E, Sorichter St, Herouy Y, Di Virgilio Fr, Ferrari D, Norgauer J, Idzko M. 5-Hydroxytryptamine Modulates Migration, Cytokine and Chemokine Release and T-Cell Priming Capacity of Dendritic Cells In Vitro and In Vivo. PLoS One. 2009;4(7):e6453. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0006453
  17. Свиридова А.А., Мельников М.В., Белоусова О.О., Роговский В.С., Пащенков М.В., Бойко А.Н. Серотонинергическая система как терапевтическая мишень при рассеянном склерозе. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2019;119:2(2):64-72.  https://doi.org/10.17116/jnevro20191192264
  18. Bhat R, Mahapatra S, Axtell RC, Steinman L. Amelioration of ongoing experimental autoimmune encephalomyelitis with fluoxetine. J Neuroimmunol. 2017;313:77-81.  https://doi.org/10.1016/j.jneuroim.2017.10.012
  19. Mitsonis CI, Zervas IM, Potagas CM, Mitropoulos PA, Dimopoulos NP, Sfagos CA, Papadimitriou GN, Vassilopoulos DC. Effects of escitalopram on stress-related relapses in women with multiple sclerosis: an open-label, randomized, controlled, one-year follow-up study. Eur Neuropsychopharmacol. 2010;20(2):123-131.  https://doi.org/10.1016/j.euroneuro.2009.10.004
  20. Mostert JP, Admiraal-Behloul F, Hoogduin JM, Luyendijk J, Heersema DJ, van Buchem MA, De Keyser J. Effects of fluoxetine on disease activity in relapsing multiple sclerosis: a double-blind, placebo-controlled, exploratory study. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 2008;79(9):1027-1031. https://doi.org/10.1136/jnnp.2007.139345
  21. Idzko M, Panther E, Stratz C. The serotoninergic receptors of human dendritic cells: identification and coupling to cytokine release. J Immunol. 2004;172:6011-6019.
  22. Szabo A, Gogolak P, Koncz G, Foldvari Z, Pazmandi K, Miltner N, Poliska S, Bacsi A, Djurovic S, Rajnavolgyi E. Immunomodulatory capacity of the serotonin receptor 5-HT2B in a subset of human dendritic cells. Sci Rep. 2018;8(1):1765. https://doi.org/10.1038/s41598-018-20173-y
  23. Katoh N, Soga F, Nara T, Tamagawa-Mineoka R, Nin M, Kotani H, Masuda K, Kishimoto S. Effect of serotonin on the differentiation of human monocytes into dendritic cells. Clin Exp Immunol. 2006;146(2):354-361. 

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.