Гарафутдинов Р.Р.

Институт биохимии и генетики Уфимского федерального исследовательского центра Российской академии наук

Сахабутдинова А.Р.

Институт биохимии и генетики Уфимского федерального исследовательского центра Российской академии наук

Аминев Ф.Г.

Институт права Башкирского государственного университета

Чемерис А.В.

АО «Казахский медицинский университет непрерывного образования»

Новый полиморфный ДНК-маркер для определения пола человека по его биологическому материалу

Авторы:

Гарафутдинов Р.Р., Сахабутдинова А.Р., Аминев Ф.Г., Чемерис А.В.

Подробнее об авторах

Прочитано: 3300 раз


Как цитировать:

Гарафутдинов Р.Р., Сахабутдинова А.Р., Аминев Ф.Г., Чемерис А.В. Новый полиморфный ДНК-маркер для определения пола человека по его биологическому материалу. Судебно-медицинская экспертиза. 2022;65(4):36‑40.
Garafutdinov RR, Sakhabutdinova AR, Aminev FG, Chemeris AV. New polymorphic DNA marker to determine a person’s sex from biological material. Forensic Medical Expertise. 2022;65(4):36‑40. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/sudmed20226504136

В судебной медицине, согласно пункту 84.10 приказа №346н Минздравсоцразвития от 12.05.10 «Об утверждении Порядка организации и производства судебно-медицинских экспертиз...», требуется определять для анализируемого биологического материала половую принадлежность их владельца, что обусловливает более направленный розыск преступника. Эта задача решается путем проведения молекулярно-генетической экспертизы с выявлением ДНК-последовательностей, специфичных для Y-хромосомы.

До появления метода полимеразной цепной реакции (ПЦР) присутствие ДНК из Y-хромосомы определяли с помощью дот-блот гибридизации с радиоактивно меченными зондами [1]. Разработка ПЦР открыла новые возможности по детекции последовательностей, специфичных для половых хромосом DYZ1, DXZ4, DYZ5 [2], ZFX и ZFY [3] разных участков генов амелогенина [4, 5]. Со временем основными при определении пола стали амелогениновые локусы AMELY и AMELX. Оказалось, что у некоторых мужчин амелогениновый ген на Y-хромосоме не выявляется [6, 7]. Для каких-то популяций данная проблема стоит довольно остро, например для индийской популяции [8], что обусловило открытие новых гендер-специфичных локусов, в частности SRY [9].

Вследствие относительно частых нарушений половых хромосом [10] ДНК-анализ по ним не всегда дает однозначный результат. Известно, что X- и Y-хромосомы обмениваются генетическим материалом в норме в пределах псевдоаутосомной области (ПАО), но иногда генетическая рекомбинация происходит и за ее границами, приводя к аномалиям, когда появляются женщины XY и мужчины XX. У последних TDF-участки Y-хромосомы, несущие в том числе ген SRY, транслоцированы на короткое плечо X-хромосомы, причем ген SRY располагается очень близко к ПАО, что способствует его переносу на X-хромосому чаще остальных локусов (рис. 1). Для XY женщин TDF-участок изменен настолько, что не выполняет своей функции. Соответственно при использовании SRY-маркера в анализе ПЦР пол таких людей будет определен неверно, по крайней мере, не будет соответствовать фенотипу. В этом случае поиск правонарушителя может пойти по ложному пути: сотрудники оперативно-розыскных служб и следствия будут вести поиск подозреваемого, например, среди мужчин, в то время как биоматериал принадлежал фенотипической женщине. Таким образом, определение пола у людей в целях ДНК-криминалистики — более сложная задача, чем представлялось ранее с учетом классических понятий о мужчинах и женщинах как носителях XY- и XX-кариотипов.

Рис. 1. Локализация генов NLGNX/Y, AMELX/Y, ZFX/ZFY, SRY на половых хромосомах относительно ПАО.

Цель работы — предварительная оценка применимости гендер-специфичных нуклеотидных последовательностей в генах нейролигина человека (NLGN4X и NLGN4Y) в качестве альтернативных ДНК-маркеров пола.

Материал и методы

Исследовали 50 образцов ДНК человека (25 мужчин и 25 женщин), выделенных из цельной венозной крови методом фенольно-хлороформной экстракции [11]. Часть препаратов тотальной ДНК каждого индивида подвергали дополнительно фрагментации ультразвуком. Для этого растворы 1 мкг ДНК в 50 мкл воды облучали в приборе BioRuptor (Diagenode) звуком с частотой 20 кГц в режиме самого интенсивного воздействия («high») в течение 35 мин, обеспечивающего высокую степень фрагментации ДНК [12].

Праймеры F-X (5’-AGTCTCTCCCAGGTCTACTGCTCC-3’), F-Y (5’-GCATTGGAGTTTTCGAAAGACT-3’) и R (5’-CAGAGGCGAGCCTGCAGA-3’) подобрали с помощью OligoAnalyzer 3.1 («Integrated DNA Technologies», США). Их специфичность оценивали с помощью BLAST онлайн-ресурса NCBI, синтез осуществлен в компании «Синтол» (Россия).

ПЦР в реальном времени проводили в ДНК-амплификаторе iQ5 («Bio-Rad Laboratories», США). Реакционные смеси включали объемом 20 мкл тотальную ДНК человека в количестве 3 нг (около 103 копий мишени) или 30 нг (около 104 копий мишени), 1 мкл каждого из праймеров F-X, F-Y и R с концентрацией 1.0 О.Е./мл и 8 мкл 2.5× ПЦР-смеси, содержащей интеркалирующий краситель EvaGreen («Синтол», Россия). Каждый ПЦР-образец был представлен в трех повторах. Использовали программу, включающую режим сокращенного по времени термоциклирования: начальная денатурация при температуре 94 °C (3 мин), 40 циклов и более денатурация при 94 °C (1 с), отжиг при температуре 60 °C (5 с) и элонгация при температуре 72 °C (1 с).

Результаты ПЦР анализировали дополнительно методом гель-электрофореза в 10% полиакриламидном геле с последующим окрашиванием бромистым этидием и визуализацией в приборе Gel Camera System («UVP, Inc.», США).

Результаты и обсуждение

Для определения половой принадлежности биологических материалов человека путем ДНК-анализа ранее было предложено использовать несколько разных генетических локусов, специфичных для X- и Y-хромосом. Однако присущие им недостатки обусловливают поиск новых маркеров, которые обеспечивали бы однозначное установление пола. На наш взгляд, удобными гендер-специфичными локусами могут служить фрагменты генов нейролигина NLGN4X и NLGN4Y, находящиеся недалеко от ПАО половых хромосом, но в то же время имеющие достаточно существенное различие в близости расположения к ней (см. рис. 1). Кроме того, NLGN4Y находится дальше от рекомбинирующего участка, чем локусы AMELY, ZFY и тем более SRY, который расположен чуть ли не вплотную к ПАО. Данные преимущества обусловливают возможность использования генов NLGNX/Y для установления пола человека.

Гомология кодирующих областей генов NLGNX/Y высокая, составляет 96,9% [13], однако между ними выявляются и различающиеся участки. Так, нетранслируемые области первого экзона содержат большое число нуклеотидных замен, а также протяженную инсерцию у гена NLGN4X, обозначенную (X)161 (рис. 2).

Рис. 2. Фрагменты нуклеотидной последовательности генов NLGNX и NLGNY и расположение праймеров, подобранных для установления половой принадлежности биоматериала.

Выбрали участки генов NLGNX и NLGNY, амплификация которых с помощью ПЦР обеспечивала бы однозначное определение пола индивида по его биоматериалу. Данные участки подобраны таким образом, что имеют полностью гомологичную нуклеотидную последовательность, с одной стороны, и негомологичную — с другой (см. рис. 2). К указанным участкам подобрали гендер-специфичные праймеры F-X и F-Y, а также общий праймер R, которые сконструированы таким образом, чтобы получались короткие ПЦР-продукты разной длины: 59 и 46 п.о. для нуклеотидных последовательностей из X- и Y-хромосом соответственно. Ранее нами [14] показано, что сближенное расположения праймеров обеспечивает высокую чувствительность и специфичность ПЦР и позволяет с большей эффективностью амплифицировать разрушенную ДНК. Кроме того, становится возможным использовать сокращенный по времени режим термоциклирования в ходе ПЦР-анализа (1, 5 и 1 с для этапов денатурации, отжига и элонгации соответственно) [15]. В результате ПЦР-анализа биоматериалов человека с использованием данных праймеров должен нарабатываться один (для XX-индивидов) или два (для XY-индивидов) продукта ПЦР, что обусловливает наличие одного или двух пиков на кривых плавления и одной или двух полос ДНК на электрофоретическом геле соответственно.

Система праймеров апробирована на выборке из 50 человек (фенотипические мужчины и женщины), являющихся представителями разных рас — европеоидной, монголоидной и негроидной. Праймеры обеспечили удовлетворительную специфичность и высокую чувствительность ПЦР-амплификации, позволив уверенно обнаружить до 103 копий ДНК-мишени в образце (рис. 3, а). Для всех индивидов ПЦР-анализ обеспечивал характерный профиль кривых плавления: один (при температуре 82,5 °C) либо два (при температуре 78 и 82,5 °C) пика, соответствующих целевым продуктам ПЦР (рис. 3, б). На электрофореграммах наблюдались либо одна полоса размером 59 п.о., либо две полосы размером 59 и 46 п.о. (см. рис. 3, а, врезка).

Рис. 3. Профили ПЦР-амплификации (а) и плавления образующихся ПЦР-продуктов (б).

Цифрами отмечены соответствующие профили и дорожки в электрофоретическом геле (врезка): 1, 3, 5 — ДНК фенотипического мужчины; 2, 4, 6 — ДНК фенотипической женщины; К- — образец отрицательного контроля; 1—4 — 104 копий ДНК-мишени; 5 и 6 — 103 копий ДНК-мишени; 1, 2, 5, 6 — ДНК, не подвергнувшаяся воздействию ультразвука; 3 и 4 — ДНК, разрушенная ультразвуком.

Дополнительно провели эксперименты с модельной разрушенной ДНК, которой служили препараты, подвергнувшиеся длительному (35 мин) воздействию ультразвука. ПЦР-амплификация подобной ДНК также обеспечила высокую чувствительность анализа (см. рис. 3, а), что согласуется с данными, полученными нами ранее для ПЦР со сближенными праймерами [12]. В целом полученные результаты показали отсутствие у индивидов аномалий строения генов NLGNX и NLGNY.

Заключение

Таким образом, предлагается новый полиморфный локус на основе генов NLGNX и NLGNY для установления половой принадлежности биоматериалов человека, который можно использовать при проведении судебно-медицинской экспертизы [16]. Существенное различие в расположении данных локусов относительно ПАО, а также сочетание разных типов полиморфизма, с одной стороны, и возможность использования гендер-специфичных праймеров «в одной пробирке» (режим мультиплексной ПЦР), с другой, позволяют рекомендовать их в качестве альтернативного или дополнительного маркера при определении половой идентичности человека [17], в том числе в составе систем для ДНК-регистрации населения [18—22]. Внедрение в молекулярно-генетические исследования локуса на основе генов NLGNX и NLGNY поможет с большей достоверностью установить половую принадлежность биологического материала, изъятого с места происшествия.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Данная работа выполнена при финансовой поддержке РФФИ в рамках научного проекта-гранта РФФИ-мк №18-29-14076.

Литература / References:

  1. Tyler MG, Kirby LT, Wood S, Vernon S, Ferris JA. Human blood stain identification and sex determination in dried blood stains using recombinant DNA techniques. Forensic Science Int. 1986;31(4):267-272.  https://doi.org/10.1016/0379-0738(86)90166-0
  2. Nicklas JA, Buel E. Simultaneous determination of total human and male DNA using a real-time PCR assay. J Forensic Science. 2006;51(5):1005-1015. https://doi.org/10.1111/j.1556-4029.2006.00211.x
  3. Page DC, Mosher R, Simpson EM, Fisher EM, Mardon G, Pollack J, de la Chapelle BMA, Brown LG. The sex-determining region of the human Y chromosome encodes a finger protein. Cell. 1987;51(6):1091-1104. https://doi.org/10.1016/0092-8674(87)90595-2
  4. Mannucci A, Sullivan KM, Ivanov PL, Gill P. Forensic application of a rapid and quantitative DNA sex test by amplification of the X-Y homologous gene amelogenin. Int J Legal Med. 1994;106(4):190-193. PMID: 8038111. https://doi.org/10.1007/BF01371335
  5. Nakahori Y, Takenaka O, Nakagome Y. A human X-Y homologous region encodes «amelogenin». Genomics. 1991;9(2):264-269.  https://doi.org/10.1016/0888-7543(91)90251-9
  6. Santos FR, Pandya A, Tyler-Smith C. Reliability of DNA-based sex tests. Nature Genetics. 1998;18(2):103.  https://doi.org/10.1038/ng0298-103
  7. Borovko S, Shyla A, Korban V, Borovko A. Amelogenin test abnormalities revealed in Belarusian population during forensic DNA analysis. Forensic Science Int: Genetics. 2015;15:98-104.  https://doi.org/10.1016/j.fsigen.2014.10.014
  8. Kashyap VK, Sahoo S, Sitalaximi T, Trivedi R. Deletions in the Y-derived amelogenin gene in the Indian population. BMC Medical Genetics. 2006;7:3.  https://doi.org/10.1186/1471-2350-7-37
  9. Sinclair AH, Berta P, Palmer MS, Hawkins JR, Griffiths BL, Smith MJ, Foster JW, Frischauf AM, Lovell-Badge R, Goodfellow PN. A gene from the human sex-determining region encodes a protein with homology to a conserved DNA-binding motif. Nature. 1990;346(6281):240-244.  https://doi.org/10.1038/346240a0
  10. Acién P, Acién M. Disorders of Sex Development: Classification, Review, and Impact on Fertility. J Clin Med. 2020;9(11):3555. https://doi.org/10.3390/jcm9113555
  11. Sambrook J, Russell DW. Isolation of DNA fragments from polyacrylamide gels by the crush and soak method. CSH Protocols. 2006. https://doi.org/10.1101/pdb.prot2936
  12. Гарафутдинов Р.Р., Галимова А.А., Сахабутдинова А.Р., Вахитов В.А., Чемерис А.В. ПЦР-анализ специфичной к последовательности ультразвуковой фрагментации ДНК. Молекулярная биология. 2016;50(2):272-278. 
  13. Maxeiner S, Sester M, Krasteva-Christ G. Novel human sex-typing strategies based on the autism candidate gene NLGN4X and its male-specific gametologue NLGN4Y. Biology of Sex Differences. 2019;10(1):62.  https://doi.org/10.1186/s13293-019-0279-x
  14. Garafutdinov RR, Galimova AA, Sakhabutdinova AR. Polymerase chain reaction with nearby primers. Analytical Biochemistry. 2017;518:126-133.  https://doi.org/10.1016/j.ab.2016.11.017
  15. Гарафутдинов Р.Р., Галимова А.А., Сахабутдинова А.Р., Вахитов В.А., Чемерис А.В. ПЦР-амплификация ДНК с помощью праймеров «встык». Молекулярная биология. 2015;49(4):628-637. 
  16. Чемерис Д.А., Сагитов А.М., Аминев Ф.Г., Луценко В.И., Гарафутдинов Р.Р., Сахабутдинова А.Р., Василов Р.Г., Алексеев Я.И., Сломинский П.А., Хуснутдинова Э.К., Чемерис А.В. Эволюция подходов к ДНК-идентификации личности. Биомика. 2018;10(1):85-140. 
  17. Гарафутдинов Р.Р., Сахабутдинова А.Р., Алексеев Я.И., Чемерис А.В. Гендерные локусы в ДНК-криминалистике и женском спорте. Биомика. 2021;13(1):54-74. 
  18. Dedrickson K. Universal DNA databases: a way to improve privacy? J Law Biosciences. 2018;4(3):637-647.  https://doi.org/10.1093/jlb/lsx041
  19. Анисимов В.А., Гарафутдинов Р.Р., Сагитов А.М., Сахабутдинова А.Р., Хуснутдинова Э.К., Аминев Ф.Г., Чемерис А.В. ДНК-криминалистика — зарождение, современность и перспективы. Биомика. 2019;11(3):282-314. 
  20. Чемерис Д.а., Гарафутдинов Р.Р., Сагитов а.М., Сагитова М.а., Михайленко К.И., Зубов В.В., Василов Р.Г., Сломинский П.а., Анисимов В.а., Хуснутдинова Э.К., Алексеев Я.И., Курочкин В.Е., Лавров Г.С., Аминев Ф.Г., Чемерис а.В. Микродиплотипы как новые маркеры для ДНК-идентификации личности. Биомика. 2020;12(2):300-317. 
  21. Аминев Ф.Г., Анисимов В.А. Об организационном аспекте современной технологии всеобщей ДНК-регистрации граждан. Правовое государство: теория и практика. 2020;16(2):11-19. 
  22. Чемерис А.В., Анисимов В.А., Аминев Ф.Г. Актуальные вопросы правового регулирования создания и функционирования баз данных генома человека. Правовое государство: теория и практика. 2020;16(2):134-144. 

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.