Кузнецова В.С.

ФГБНУ «Медико-генетический научный центр им. акад. Н.П. Бочкова»;
ФГБУ НМИЦ «Центральный научно-исследовательский институт стоматологии и челюстно-лицевой хирургии» Минздрава России

Васильев А.В.

ФГБУ НМИЦ «Центральный научно-исследовательский институт стоматологии и челюстно-лицевой хирургии» Минздрава России, Москва, Россия;

Лаборатория генетики стволовых клеток ФГБУ «Медико-генетический научный центр» РАМН, Москва, Россия;

ФГАОУ ВО «Российский Университет Дружбы Народов», Москва, Россия

Бухарова Т.Б.

ФГБНУ «Медико-генетический научный центр им. акад. Н.П. Бочкова»

Гольдштейн Д.В.

Лаборатория генетики стволовых клеток ФГБУ «Медико-генетический научный центр» РАМН, Москва, Россия

Кулаков А.А.

ФГБУ НМИЦ «Центральный научно-исследовательский институт стоматологии и челюстно-лицевой хирургии» Минздрава России

Безопасность и эффективность применения морфогенетических белков кости 2 и 7 в стоматологии

Авторы:

Кузнецова В.С., Васильев А.В., Бухарова Т.Б., Гольдштейн Д.В., Кулаков А.А.

Подробнее об авторах

Журнал: Стоматология. 2019;98(1): 64‑69

Прочитано: 2167 раз


Как цитировать:

Кузнецова В.С., Васильев А.В., Бухарова Т.Б., Гольдштейн Д.В., Кулаков А.А. Безопасность и эффективность применения морфогенетических белков кости 2 и 7 в стоматологии. Стоматология. 2019;98(1):64‑69.
Kuznetsova VS, Vasilyev AV, Bukharova TB, Goldshtein DV, Kulakov AA. Safety and efficacy of BMP-2 and BMP-7 use in dentistry. Stomatology. 2019;98(1):64‑69. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/stomat20199801164

Рекомендуем статьи по данной теме:

По данным Министерства здравоохранения РФ, число пациентов с заболеваниями костно-мышечной системы неуклонно растет, и в 2017 г. было выявлено 19 261 615 пациентов, страдающих данными болезнями [60].

В челюстно-лицевой области воспалительные и онкологические заболевания, травмы, врожденные аномалии развития и деформации костей нередко приводят к формированию дефектов челюстей. Востребованными являются реконструктивно-восстановительные операции с применением остеопластических материалов. Среди них до сих пор «золотым стандартом» является аутокость, однако ее забор приводит к дополнительной операционной травме донорской зоны и увеличивает риск послеоперационных осложнений. Все это вместе с ограниченным объемом донорской зоны способствует частому применению в клинической практике заменителей аутокости различного происхождения. Одними из наиболее перспективных являются активированные остеопластические материалы, содержащие остеоиндуктивные костные морфогенетические белки (КМБ). Интерес к изучению и использованию белков семейства BMP неуклонно растет в течение последних 30 лет, а информационно-поисковый ресурс PubMed содержит более 3000 публикаций по запросу «BMP», вышедших с 2015 по 2018 г. (см. рисунок).

Рост количества публикаций, содержащих в названии «BMP», по данным информационно-поискового ресурса PubMed.
На настоящий момент обсуждаемой остается их безопасность и реальная эффективность в конкретных клинических ситуациях, в том числе при применении в стоматологии и челюстно-лицевой хирургии, что требует систематизации существующей информации.

Значимость костных морфогенетических белковBMP-2 и BMP-7

Значимость КМБ в репаративной регенерации костной ткани была наглядно показана в момент их открытия в 50-е гг. XX века Л.В. Полежаевым. В эксперименте для восстановления костей свода черепа у собак им были использованы костные опилки, одни из которых укладывались в область дефекта сразу после получения, а другие подвергались предварительной лиофилизации или автоклавированию. Новообразование костной ткани отмечалось в группах с использованием свежих и лиофилизированных, но не автоклавированных, костных опилок. По результатам эксперимента Л.В. Полежаевым был сделан вывод о том, что в костных опилках содержатся «костеобразующие вещества», которые стимулируют образование кости «путем индукции» [62]. Несколько позже, в 1965 г., M. Urist опубликовал исследование, посвященное открытию КМБ. Им была проведена серия экспериментов по внутримышечной имплантации лабораторным животным бесклеточных декальцинированных костных фрагментов большеберцовой кости. В местах введения имплантов возникали очаги эктопического остеогенеза [48]. В ходе дальнейших исследований Urist предположил, что образование костной ткани происходило под влиянием особых веществ, которые получили название «Bone Morphogenetic Proteins» (BMPs) [49].

Исследования Л.В. Полежаева и M. Urist послужили отправной точкой для создания целой группы материалов, способных эффективно индуцировать регенерацию. На сегодняшний день открыто около 20 членов семейства BMP, однако наибольшим остеогенным потенциалом среди них обладают BMP-2 и BMP-7, которые также принимают участие в эмбриональном развитии и наиболее изучены [9]. Значимость BMP-2 и BMP-7 отчетливо видна в экспериментах с нокаутом генов, кодирующих эти белки. Так, нокаут BMP-2 приводит к летальному исходу у эмбрионов, а BMP-7 — к ранней смерти плода после рождения [2, 51].

Материалы на основе BMP-2 и показания к их применению

После открытия КМБ несколько компаний запустили программы, целью которых было одобрение FDA выпуска продуктов, содержащих BMP. Общая сумма затраченных средств составила около 650 млн долларов. В 80-х гг. Genetics Institute и Creative BioMolecules успешно клонировали человеческий BMP для получения очищенного рекомбинантного белка. Однако только в 2001 г. FDA разрешило производителю «Stryker Biotech» (Natick, MA, USA) выпуск материала на основе BMP-7 (OP-1) для восстановления переломов длинных костей. В 2002 г. компания «Medtronic Sofamor Danek USA» (Memphis, TN, USA) получила разрешение FDA на производство препарата InFUSE на основе BMP-2 для восстановительных операций на позвоночнике. В 2007 г. FDA одобрило использование InFUSE в челюстно-лицевой области [37, 52].

С тех пор на рынке появились остеопластические материалы в различных лекарственных формах, отличающиеся разнообразием носителей BMP-2 или BMP-7. В таблице

Материалы, содержащие КМБ
приведен список препаратов и показания к их применению.

Применение BMP-2 и BMP-7 в челюстно-лицевой области

Материалы с BMP-2 и BMP-7 показали свою эффективность в травматологии и постепенно внедряются в практику челюстно-лицевых хирургов и хирургов-стоматологов. cуществуют данные об успешном применении InFUSE для поднятия дна верхнечелюстной пазухи [18, 32, 46]. В группе с применением аутокостной стружки удавалось поднять дно альвеолярной бухты на 11,3 мм, а при использовании InFUSE — на 10,2 мм, а через 36 мес после установки постоянных ортопедических конструкций функционально состоятельными считались импланты у 62 и 76% человек из групп с применением костной стружки и материала InFUSE соответственно [5].

Остеогенная активность КМБ напрямую связана с его носителем. Применение в качестве носителя коллагеновой мембраны через 4 нед не давало выраженного прироста образования кости в области импланта по сравнению с контролем. Объем новообразованной костной ткани составил 12,84% для группы с BMP-2 и 8,06% для группы без BMP-2 [44]. При использовании коллагеновой губки с BMP-2 на модели костного дефекта у собак в области дентальных имплантов через 16 нед отмечалось образование 6,1 мм2 кости в области дефекта, а при применении губки без остеоиндуктора — только 0,2 мм2 [42].

Клинические и экспериментальные исследования показали, что препараты на основе BMP-2 являются более эффективными по сравнению с традиционными неактивированными костно-пластическими материалами. По данным гистоморфометрического анализа, прирост костной ткани в области дефектов альвеолярного гребня, восстановленных материалом NOVOSIS-Dent («CGBio Inc.», Корея), составлял 35,2±19,7% против 28,9±10,3% в группе пациентов с применением BioOss [25].

Использование комбинации BioOss и BMP-2 в различных исследованиях имеет противоречивые результаты [19, 24]. C одной стороны, некоторые исследования указывают на меньший объем новообразованной ткани при использовании BioOss с BMP-2 по сравнению с чистым BioOss [19], однако использование материалов с BMP-2 ускоряет созревание новообразованной костной ткани и увеличивает площадь контакта остеопластического материала с костью, что положительно сказывается на регенерации [22].

Несмотря на наличие противопоказаний производителей, существуют клинические исследования по применению материалов с BMP-2 и BMP-7 у молодых пациентов с расщелинами губы и неба и пациентов с протяженными дефектами после удаления опухолей.

В статье Canan и соавт. (2012) проведена сравнительная оценка эффективности устранения расщелин альвеолярного отростка с использованием аутологичной костной ткани с гребня подвздошной кости, материала InFUSE и периостеопластики у детей 8—15 лет. Объем образовавшейся кости через 6 мес составил 105,7 мм3, 346,2 мм3 и 502,9 мм3 в группах после периостеопластики, операций с использованием InFUSE и костной ткани с гребня подвздошной кости соответственно. Через год показатели объема, плотности и скорости образования кости в последних двух группах не различались [7]. В другом исследовании через 4 мес после операции произошло заполнение расщелин костью на 78,1 и 71,7% в группах с использованием материала с гребня подвздошной кости и коллагеновой губки с BMP-2 соответственно [17].

В ряде исследований были показаны положительные результаты восстановления дефектов челюстей с помощью материалов с BMP-2 и BMP-7 после резекций амелобластом, гигантоклеточных гранулем, ювенильных оссифицирующих фибром и одонтогенных кератокист [11, 12, 14, 16]. В большинстве клинических случаев (89,3%) происходило восстановление дефектов за счет новообразования кости. Лишь в 10,7% случаев было отмечено нарушение остеогенеза и неполное заживление тканей, связанное с использованием препаратов в инфицированных областях или с недостаточной прочностью носителей, которые подвергались сдавливанию за счет отека окружающих мягких тканей [10, 15].

Побочные эффекты, связанные с применением BMP-2

Несмотря на высокую эффективность материалов с BMP-2 и BMP-7, не следует упускать из внимания определенные противопоказания к их применению.

По заявлению производителей, InFUSE и OP-1 противопоказаны при:

— индивидуальной непереносимости веществ, входящих в состав материалов;

— наличии очагов воспаления вблизи области вмешательства;

— операции имплантации в области удаленного новообразования;

— наличии новообразований в месте операции;

— у пациентов молодого возраста с незавершенным формированием костей.

Однако высокая эффективность данных препаратов приводит к их применению off-label (не по показаниям, указанным в инструкции). Так, в США было зарегистрировано более 85% случаев такого использования препаратов с BMP [38]. Несмотря на то что в большинстве клинических ситуаций были получены положительные результаты, у некоторых пациентов возникали побочные эффекты, связанные с риском для жизни. В связи с этим следует уделить внимание нежелательным последствиям использования КМБ.

Анализ статей, посвященных применению препаратов с КМБ в челюстно-лицевой области, показал, что основным побочным эффектом являлся выраженный, длительно сохраняющийся отек мягких тканей [11]. Механизм возникновения отека заключается в стимуляции BMP-2 высвобождения воспалительных цитокинов, таких как ИЛ-6, ИЛ-10 и ФНО-α, с формированием воспалительного экссудата [30]. Эффект зависит от дозы: при использовании BMP-2 в концентрации 1,5 мг/мл в течение 4 мес отек сохранялся у 82% пациентов, а при использовании 0,75 мг/мл — всего у 39% пациентов [5]. Отек может быть минимизирован за счет послеоперационного введения дексаметазона или других противовоспалительных средств [45, 54].

Еще одним эффектом является появление антител к BMP-2 и BMP-7 в крови пациентов после операций с применением материалов с данными белками. Иммунный ответ на введение BMP-2 был отмечен у 2—4% больных, однако, повышение титра антител было временным и не имело клинических проявлений [5, 47]. Данные о других осложнениях при применении материалов с BMP-2 и BMP-7 в челюстно-лицевой области отсутствуют, однако при их использовании в других областях были отмечены дополнительные побочные эффекты: формирование эктопических костных очагов, остеолизис и увеличение риска возникновения опухолей.

Исследователи связывают формирование эктопических костных очагов с просачиванием BMP из места имплантации. Данное явление встречалось у 70,1% пациентов, у которых применялся BMP-2 [8], но отмечены также случаи эктопического костеобразования и при использовании материалов с BMP-7 [1, 53]. В клиническом исследовании среди 23 пациентов, подвергшихся передней шейной дискэктомии со спондилодезом, гетеротопическое образование кости было обнаружено в 3 случаях, но не сопровождалось клиническими симптомами [4]. Авторы отмечают, что данное явление может быть связано как с недостатками техники хирургического вмешательства, так и с использованием большого объема материала — при уменьшении объема InFUSE в дальнейших исследованиях эктопического остеогенеза не отмечено [4]. Кроме того, сами производители материала InFUSE рекомендуют не оказывать чрезмерного давления на смоченную им коллагеновую губку и отказаться от ирригации и аспирации жидкостей во время внесения материала в область костного дефекта для снижения вероятности миграции белка и предотвращения осложнений.

Высокая концентрация BMP-2 при быстром его высвобождении из носителя усиливает дифференцировку остеокластов, что вызывает остеокластическую костную резорбцию. При применении InFUSE для спондилодеза резорбция костной ткани была отмечена в 69—100% случаев [34, 35], однако у большинства пациентов имела временный характер и не сопровождалась болью и другими осложнениями, а через 6 мес отмечалось полное сращение костей [35]. Применение высоких концентраций BMP-7 при восстановлении переломов позвоночника также может вызвать костную резорбцию, требующую дополнительного хирургического вмешательства [29]. В связи с этим исследователи предлагают использовать меньшие концентрации BMP, обеспечить оптимальное положение импланта во время операции и ограничить использование данных препаратов у пациентов с псевдоартрозами [3].

До сих пор нет однозначного мнения по поводу возможного проонкогенного действия КМБ. Прямых доказательств возникновения опухолевых образований de novo под воздействием BMP-2 нет, однако в 43% исследований показано, что BMP-2 может усугублять течение уже существующих опухолей [43]. Весьма распространенные среди онкологических заболеваний рак молочных желез, легких и предстательной железы [41, 61] экспрессируют BMP-2 и BMP-7. Однако BMP-2 напрямую влияет на туморогенез только в тканях легких за счет регулирования пути PI3K/mTOR. Высокая экспрессия BMP-2 отмечается в 98% карцином легких и может быть использована в качестве биомаркера, так как у здоровых пациентов и при доброкачественных образованиях легких белок не экспрессируется [26, 27].

Вместе с тем BMP-2 и BMP-7 способны и ингибировать пролиферацию опухолевых клеток. При раке желудка, почечно-клеточной карциноме, раке легкого, колоректальном раке и остеосаркоме они подавляют рост опухоли путем снижения экспрессии генов опухолевых факторов и индуцируют дифференцировку стволовых клеток [33, 50, 55—57]. В клетках гепатоцеллюлярной карциномы BMP-2 индуцирует апоптоз и играет роль ингибитора за счет увеличения экспрессии проапоптотических белков [58]. BMP-7 обладает антинеопластическим эффектом в клетках плоскоклеточного рака головы и шеи [28].

Следует отметить, что большинство исследований, посвященных изучению туморогенного влияния КМБ, являются экспериментальными, поэтому их результаты не могут быть широко экстраполированы.

Перспективы технологий, основанных на действии костных морфогенетических белков

BMP-2 и BMP-7 обладают выраженным остеоиндуктивным потенциалом, однако существуют методы, позволяющие усилить их остеогенную активность. К ним относится использование синтезированных молекул гетеродимера BMP-2/7, микроРНК, регулирующих остеогенную дифференцировку клеток, а также ген-активированных конструкций, влияющих на экспрессию генов BMP-2 и BMP-7.

Гетеродимер BMP-2/7 представляет собой белок, состоящий из двух связанных полипептидных цепей с последовательностью аминокислот, кодируемых генами BMP-2 и BMP-7. Данный гетеродимер обладает остеоиндуктивным потенциалом, в 15—20 раз превосходящим потенциал входящих в него гомодимеров BMP-2 и BMP-7, так как входящие в его состав гомодимеры связываются с разными типами рецепторов, а также гетеродимеры могут усиливать экспрессию определенных генов по сравнению с гомодимерами [21, 36]. Следует отметить, что рекомендуемая производителями доза BMP-2 для эффективного остеогенеза в области костных дефектов составляет около 400 нг/мм3, а при использовании гетеродимера требуется меньшая доза — 30 нг/мм3 [59]. Также в экспериментах in vivo в группе с BMP-2/7 не наблюдалось усиления воспалительного ответа окружающих мягких тканей по сравнению с группами, в которых использовались материалы с BMP-2 или BMP-7 [23]. Еще одним важным свойством гетеродимера является способность ингибировать рост клеток рака груди и образование костных метастазов [6].

Потенцировать эффекты КМБ могут микроРНК — эндогенные некодирующие РНК длиной от 18 до 24 нуклеотидов. Они синтезируются из более длинных предшественников и, связываясь с 3’-нетранслируемым участком мРНК, играют роль репрессоров трансляции [31]. МкРНК-378 при сверхэкспрессии и в присутствии белка BMP-2 способствует остеогенной дифференцировке клеток линии C2C12 (мышиных миобластов) [20].

Еще одним методом является трансфекция с помощью аденовирусных конструкций. Этот метод достаточно безопасен, так как аденовирусный вектор не встраивается в геном клетки хозяина и существует в виде эписомы в клеточном ядре [13]. При подкожной имплантации матрицы из сополимера полилактида и поликапронолактона со стромальными клетками костного мозга, подвергнутых аденовирусной трансфекции, через 2 нед после имплантации отмечалось образование кости, а через 8 нед — увеличение ее объема [40]. Еще более эффективной является котрансфекция клеток BMP-2 и BMP-7. Так, в эксперименте на модели бедренной кости крыс была оценена эффективность использования материала на основе бета-трикальций фосфата и клеток, трансфицированных BMP-2 или BMP-7 или ко-трансфицированных BMP-2 и BMP-7. Через 6 нед в группе с клетками с BMP-2+BMP-7 отмечалось образование большего количества кости и костного мозга по сравнению с другими группами [39].

Заключение

Экспериментальные и клинические исследования КМБ показали их высокую эффективность для регенерации костной ткани в челюстно-лицевой области. Безопасность материалов с BMP-2 и BMP-7 достаточно высока при соблюдении показаний к применению. При применении препаратов не по показаниям распространены такие побочные эффекты, как массивные отеки, эктопический остеогенез, остеолизис. Что касается самого грозного осложнения в виде туморогенного действия, то здесь данные неоднозначны. BMP-2 или BMP-7 стимулируют рост опухолей, локализованных в предстательной и молочных железах, легких, поджелудочной железе, в то время как выступают в качестве опухолевых супрессоров при раке желудка, почек, колоректальном раке и остеосаркоме. Это, теоретически, препятствует его применению, например при таких одонтогенных опухолях, как цементома, дентинома, остеогенная фиброма или одонтома. Неполнота экспериментальных и клинических данных относительно онкогенных свойств BMP является основным фактором, сдерживающим их широкое распространение в клинической практике. Тем не менее продолжающийся стремительный рост исследований с участием BMP дает надежду на скорейшее решение этой проблемы.

Исследование выполнено за счет гранта Российского научного фонда (проект № 16−15−00298).

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Сведения об авторах

Кузнецова Валерия Сергеевна — аспирант ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт стоматологии и челюстно-лицевой хирургии» Минздрава России; e-mail: tilia7@yandex.ru

Литература / References:

  1. Axelrad TW, Steen B, Lowenberg DW, Creevy WR, Einhorn TA. Heterotopic Ossification after the Use of Commercially Available Recombinant Human Bone Morphogenetic Proteins in Four Patients. The Journal of Bone and Joint Surgery (British). 2008;90-B(12):1617-1622. https://doi.org/10.1302/0301-620X.90B12.20975
  2. Bandyopadhyay Amitabha, Kunikazu Tsuji, Karen Cox, Harfe BD, Rosen V, Tabin CJ. Genetic Analysis of the Roles of BMP2, BMP4, and BMP7 in Limb Patterning and Skeletogenesis. Plos Genetics. 2006;2(12):e216. https://doi.org/10.1371/journal.pgen.0020216
  3. Benglis D, Wang MY, Levi AD. A comprehensive review of the safety profile of bone morphogenetic protein in spine surgery. Operative Neurosurgery. 2008;62:423-431. https://doi.org/10.1227/01.neu.0000326030.24220.d8
  4. Maxwell B, Mummaneni PV, Garrett M, Rodts G, Haid Regis. Anterior cervical discectomy and fusion involving a polyetheretherketone spacer and bone morphogenetic protein. Journal of Neurosurgery. 2005;2(5):521-525. https://doi.org/10.3171/spi.2005.2.5.0521
  5. Boyne PhJ, Lilly LC, Marx RE, Moy PK, Nevins M, Spagnoli DB, Triplett RG. De novo bone induction by recombinant human bone morphogenetic Protein-2 (rhbmp-2) in maxillary sinus floor augmentation. Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 2005;63(12):1693-1707. https://doi.org/10.1016/j.joms.2005.08.018
  6. Buijs JT, van der Horst G, van den Hoogen C, Cheung H, de Rooij B, Kroon J, Petersen M, van Overveld PGM, Pelger RCM, van der Pluijm G. The BMP2/7 heterodimer inhibits the human breast cancer stem cell subpopulation and bone metastases formation. Oncogene. 2012;31(17):2164-2174. https://doi.org/10.1038/onc.2011.400
  7. Wilson CL, da Silva Freitas R, Alonso N, Daniela Yukie Sakai Tanikawa, Diógenes Laércio Rocha, Julio Cezar Uili Coelho. Human Bone Morphogenetic Protein-2 Use for Maxillary Reconstruction in Cleft Lip and Palate Patients. Journal of Craniofacial Surgery. 2012;23(6):1627-1633. https://doi.org/10.1097/SCS.0b013e31825c75ba
  8. Carragee EJ, Hurwitz EL, Weiner BK. A Critical Review of Recombinant Human Bone Morphogenetic Protein-2 Trials in Spinal Surgery: Emerging Safety Concerns and Lessons Learned. The Spine Journal. 2011;11(6):471-491. https://doi.org/10.1016/j.spinee.2011.04.023
  9. Carreira Ana Claudia Oliveira, Willian Fernando Zambuzzi, Mariana Correa Rossi, Renato Astorino Filho, Mari Cleide Sogayar, José Mauro Granjeiro. Bone Morphogenetic Proteins. Vitamins & Hormones. 2015;99:293-322. Elsevier. https://doi.org/10.1016/bs.vh.2015.06.002
  10. Carter Todd G, Pardeep S. Brar, Andrew Tolas, O. Ross Beirne. Off-label use of recombinant human bone morphogenetic Protein-2 (rhbmp-2) for reconstruction of mandibular bone defects in humans. Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 2008;66(7):1417-1425. https://doi.org/10.1016/j.joms.2008.01.058
  11. Marco C, Scott A, Cicciù D, Tandon R, Maiorana C. Recombinant Human Bone Morphogenetic Protein-2 Promote and Stabilize Hard and Soft Tissue Healing for Large Mandibular New Bone Reconstruction Defects. Journal of Craniofacial Surgery. 2014;25(3):860-862. https://doi.org/10.1097/SCS.0000000000000830
  12. Clokie Cameron ML, George KB. Sándor. Reconstruction of 10 Major Mandibular Defects Using Bioimplants Containing BMP-7. Journal (Canadian Dental Association). 2008;74(1):67-72.
  13. Dani SU. The Challenge of Vector Development in Gene Therapy. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. 1999;32(2):133-145. https://doi.org/10.1590/S0100-879X1999000200001
  14. Desai Shaun C, Alan Sclaroff, Brian Nussenbaum. Use of Recombinant Human Bone Morphogenetic Protein 2 for Mandible Reconstruction. JAMA Facial Plastic Surgery. 2013;15(3):204. https://doi.org/10.1001/jamafacial.2013.650
  15. Glied Allen N, Kraut RA. Off-Label Use of rhBMP-2for Reconstruction of Critical-Sized Mandibular Defects. The New York State Dental Journal. 2010;76(4):32-35.
  16. Herford AS, Boyne PhJ. Reconstruction of Mandibular Continuity Defects With Bone Morphogenetic Protein-2 (rhBMP-2). Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 2008;66(4):616-624. https://doi.org/10.1016/j.joms.2007.11.021
  17. Herford AS, Boyne PhJ, Rawson R, Williams RP. Bone Morphogenetic Protein-Induced Repair of the Premaxillary Cleft. Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 2007;65(11):2136-2141. https://doi.org/10.1016/j.joms.2007.06.670
  18. Ho Steven KC, Sean AF Peel, Zhen Ming Hu, George KB. Sándor, Cameron ML. Clokie. Augmentation of the Maxillary Sinus: Comparison of Bioimplants Containing Bone Morphogenetic Protein and Autogenous Bone in a Rabbit Model. Journal (Canadian Dental Association). 2010;76:a108.
  19. Huh Jung-Bo, June-Jip Yang, Kyung-Hee Choi, Ji Bae, Jeong-Yeol Lee, Sung-Eun Kim, Sang-Wan Shin. Effect of rhBMP-2Immobilized Anorganic Bovine Bone Matrix on Bone Regeneration. International Journal of Molecular Sciences. 2015;16(7):16034-16052. https://doi.org/10.3390/ijms160716034
  20. Hupkes Marlinda, Ana M Sotoca, José M Hendriks, Everardus J van Zoelen, Koen J Dechering. microRNA mir-378 Promotes BMP2-Induced Osteogenic Differentiation of Mesenchymal Progenitor Cells. BMC Molecular Biology. 2014;15:1. https://doi.org/10.1186/1471-2199-15-1
  21. Israel David I, John Nove, Kelvin M Kerns, Randal J Kaufman, Vicki Rosen, Karen A. Cox, John M Wozney. Heterodimeric Bone Morphogenetic Proteins Show Enhanced Activity In Vitro and In Vivo. Growth Factors. 1996; 13(3-4):291-300. https://doi.org/10.3109/08977199609003229
  22. Jung, Ronald E, Roland Glauser, Peter Schärer, Christoph HF. Hämmerle, Hermann F Sailer, Franz E. Weber. Effect of rhBMP-2on Guided Bone Regeneration in Humans. Clinical Oral Implants Research. 2003;14(5):556-568. https://doi.org/10.1034/j.1600-0501.2003.00921.x
  23. Kaito Takashi, Tokimitsu Morimoto, Yuki Mori, Sadaaki Kanayama, Takahiro Makino, Shota Takenaka, Yusuke Sakai, Satoru Otsuru, Yoshichika Yoshioka, Hideki Yoshikawa. BMP-2/7 Heterodimer Strongly Induces Bone Regeneration in the Absence of Increased Soft Tissue Inflammation. The Spine Journal. 2018;18(1):139-146. https://doi.org/10.1016/j.spinee.2017.07.171
  24. Kao Daniel WK, Atsushi Kubota, Myron Nevins, Joseph P Fiorellini. The Negative Effect of Combining rhBMP-2and Bio-Oss on Bone Formation for Maxillary Sinus Augmentation. The International Journal of Periodontics & Restorative Dentistry. 2012;32(1):61-67.
  25. Kim Hyun-Suk, Ju-Cheol Park, Pil-Young Yun, Young-Kyun Kim. Evaluation of Bone Healing Using rhBMP-2Soaked Hydroxyapatite in Ridge Augmentation: A Prospective Observational Study. Maxillofacial Plastic and Reconstructive Surgery. 2017;39(1). https://doi.org/10.1186/s40902-017-0138-9
  26. Langenfeld EM. The Mature Bone Morphogenetic Protein-2 Is Aberrantly Expressed in Non-Small Cell Lung Carcinomas and Stimulates Tumor Growth of A549 Cells. Carcinogenesis. 2017;24(9):1445-1454. https://doi.org/10.1093/carcin/bgg100
  27. Elaine M Langenfeld, Yingxin Kong, John Langenfeld. Bone Morphogenetic Protein-2-Induced Transformation Involves the Activation of Mammalian Target of Rapamycin. Molecular Cancer Research. 2005;3(12):679-684. https://doi.org/10.1158/1541-7786.MCR-05-0124
  28. Lappin DF, Abu-Serriah M, Hunter KD. Effects of Recombinant Human Bone Morphogenetic Protein 7 (rhBMP-7) on the Behaviour of Oral Squamous Cell Carcinoma: A Preliminary in Vitro Study. British Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 2015;53(2):158-163. https://doi.org/10.1016/j.bjoms.2014.11.002
  29. Laursen M, Høy K, Hansen ES, Gelineck J, Christensen FB, Bünger CE. Recombinant Bone Morphogenetic Protein-7 as an Intracorporal Bone Growth Stimulator in Unstable Thoracolumbar Burst Fractures in Humans: Preliminary Results. European Spine Journal. 1999;8(6):485-490. https://doi.org/10.1007/s005860050210
  30. Lee Kwang-Bok, Cyrus E Taghavi, Kyung-Jin Song, Chananit Sintuu, Jeong Hyun Yoo, Gun Keorochana, Shia-Tzu Tzeng, Zhiqiang Fei, Jen-Chung Liao, Jeffrey C Wang. Inflammatory Characteristics of rhBMP-2In Vitro and in an In Vivo Rodent Model. Spine. 2011;36(3):149-154. https://doi.org/10.1097/BRS.0b013e3181f2d1ec
  31. Li Yan, Longkun Fan, Shiyu Liu, Wenjia Liu, Hao Zhang, Tao Zhou, Dan Wu, et al. The Promotion of Bone Regeneration through Positive Regulation of Angiogenic—Osteogenic Coupling Using microrna-26a. Biomaterials. 2013;34(21):5048-5058. https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2013.03.052
  32. Lin Guo-Hao, Glendale Lim, Hsun-Liang Chan, William V. Giannobile, Hom-Lay Wang. Recombinant Human Bone Morphogenetic Protein 2 Outcomes for Maxillary Sinus Floor Augmentation: A Systematic Review and Meta-Analysis. Clinical Oral Implants Research. 2016;27(11):1349-1359. https://doi.org/10.1111/clr.12737
  33. Liu Chia-Hung, Wan-Chun Tang, Peik Sia, Chi-Chen Huang, Pei-Ming Yang, Ming-Heng Wu, I-Lu Lai, and Kuen-Haur Lee. Berberine Inhibits the Metastatic Ability of Prostate Cancer Cells by Suppressing Epithelial-to-Mesenchymal Transition (EMT)-Associated Genes with Predictive and Prognostic Relevance. International Journal of Medical Sciences. 2015;12(1):63-71. https://doi.org/10.7150/ijms.9982
  34. McClellan John W, Daniel S Mulconrey, Robert J Forbes, Nancy Fullmer. Vertebral Bone Resorption After Transforaminal Lumbar Interbody Fusion With Bone Morphogenetic Protein (rhBMP-2). Journal of Spinal Disorders & Techniques. 2006;19(7):483-486. https://doi.org/10.1097/01.bsd.0000211231.83716.4b
  35. Meisel Hans Jörg, Mark Schnöring, Christian Hohaus, Yvonne Minkus, Andre Beier, Timothy Ganey, Ulrich Mansmann. Posterior Lumbar Interbody Fusion Using rhBMP-2. European Spine Journal. 2008;17(12):1735-1744. https://doi.org/10.1007/s00586-008-0799-2
  36. Morimoto Tokimitsu, Takashi Kaito, Yohei Matsuo, Tsuyoshi Sugiura, Masafumi Kashii, Takahiro Makino, Motoki Iwasaki, Hideki Yoshikawa. The Bone Morphogenetic Protein-2/7 Heterodimer Is a Stronger Inducer of Bone Regeneration than the Individual Homodimers in a Rat Spinal Fusion Model. The Spine Journal. 2015;15(6):1379-1390. https://doi.org/10.1016/j.spinee.2015.02.034
  37. Obremskey William T. The Introduction of Biologics in Orthopaedics: Issues of Cost, Commercialism, and Ethics. The Journal of Bone and Joint Surgery (American). 2007;89(7):1641. https://doi.org/10.2106/JBJS.F.01185
  38. Ong Kevin L, Marta L Villarraga, Edmund Lau, Leah Y Carreon, Steven M Kurtz, Steven D. Glassman. Off-Label Use of Bone Morphogenetic Proteins in the United States Using Administrative Data. Spine. 2010;35(19):1794-1800. https://doi.org/10.1097/BRS.0b013e3181ecf6e4
  39. Qing Wang, Chen Guang-Xing, Guo Lin, Yang Liu. The Osteogenic Study of Tissue Engineering Bone with BMP2 and BMP7 Gene-Modified Rat Adipose-Derived Stem Cell. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2012. https://doi.org/10.1155/2012/410879
  40. Sharma Sunita, Dipak Sapkota, Ying Xue, Yang Sun, Anna Finne-Wistrand, Ove Bruland, Kamal Mustafa. Adenoviral Mediated Expression of BMP2 by Bone Marrow Stromal Cells Cultured in 3D Copolymer Scaffolds Enhances Bone Formation. Edited by Xing-Ming Shi. PLOS ONE. 2016;11(1): e0147507. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0147507
  41. Siegel Rebecca L, Kimberly D Miller, Ahmedin Jemal. Cancer Statistics, 2017. CA. A Cancer Journal for Clinicians. 2017;67(1):7-30. https://doi.org/10.3322/caac.21387
  42. Sigurdsson TJ, Fu E, Tatakis DN, Rohrer MD, Wikesjö UM. Bone Morphogenetic Protein-2 for Peri-Implant Bone Regeneration and Osseointegration. Clinical Oral Implants Research. 1997;8(5):367-374. https://doi.org/10.1034/j.1600-0501.1997.080503.x
  43. Skovrlj Branko, Steven M Koehler, Paul A Anderson, Sheeraz A Qureshi, Andrew C Hecht, James C Iatridis, Samuel K Cho. Association Between BMP-2 and Carcinogenicity. SPINE. 2015;40(23):1862-1871. https://doi.org/10.1097/BRS.0000000000001126
  44. Sun Yoo-Kyung, Jae-Kook Cha, Daniel Stefan Thoma, So-Ra Yoon, Jung-Seok Lee, Seong-Ho Choi, Ui-Won Jung. Bone Regeneration of Peri-Implant Defects Using a Collagen Membrane as a Carrier for Recombinant Human Bone Morphogenetic Protein-2. Biomed Research International. 2018: 1-9. https://doi.org/10.1155/2018/5437361
  45. Tan Yanlin, Scott R Montgomery, Bayan G Aghdasi, Hirokazu Inoue, Tuncay Kaner, Haijun Tian, Rodney Terrell, Xiangsheng Zhang, Jeffrey C Wang, Michael D Daubs. The Effect of Corticosteroid Administration on Soft-Tissue Inflammation Associated With rhBMP-2 Use in a Rodent Model of Inflammation. Spine. 2013;38(10):806-813. https://doi.org/10.1097/BRS.0b013e31827eca09
  46. Torrecillas-Martinez, Laura, Alberto Monje, Michael A Pikos, Inmaculada Ortega-Oller, Fernando Suarez, Pablo Galindo-Moreno, Hom-Lay Wang. Effect of rhBMP-2 Upon Maxillary Sinus Augmentation. A Comprehensive Review. Implant Dentistry. 2013;22(3):232-237. https://doi.org/10.1097/ID.0b013e31829262a8
  47. Triplett R Gilbert, Myron Nevins, Robert E Marx, Daniel B Spagnoli, Thomas W Oates, Peter K Moy, Philip J Boyne. Pivotal, Randomized, Parallel Evaluation of Recombinant Human Bone Morphogenetic Protein-2/Absorbable Collagen Sponge and Autogenous Bone Graft for Maxillary Sinus Floor Augmentation. Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 2009;67(9):1947-1960. https://doi.org/10.1016/j.joms.2009.04.085
  48. Urist MR. Bone: Formation by Autoinduction. Science. 1965;150(3698):893-899. https://doi.org/10.1126/science.150.3698.893
  49. Urist Marshall R, Basil S Strates. Bone Morphogenetic Protein. Journal of Dental Research. 1971;50(6):1392-1406. https://doi.org/10.1177/00220345710500060601
  50. Wang Lin, Paul Park, Huina Zhang, Frank La Marca, Amy Claeson, Juan Valdivia, Chia-Ying Lin. BMP-2 Inhibits the Tumorigenicity of Cancer Stem Cells in Human Osteosarcoma OS99-1 Cell Line. Cancer Biology & Therapy. 2011;11(5):457-463. https://doi.org/10.4161/cbt.11.5.14372
  51. Wang Richard N, Jordan Green, Zhongliang Wang, Youlin Deng, Min Qiao, Michael Peabody, Qian Zhang, et al. Bone Morphogenetic Protein (BMP) Signaling in Development and Human Diseases. Genes & Diseases. 2014;1(1):87-105. https://doi.org/10.1016/j.gendis.2014.07.005
  52. White Andrew P, Alexander R Vaccaro, Jeremy A Hall, Peter G Whang, Brian C Friel, Michael D Mckee. Clinical Applications of BMP-7/OP-1 in Fractures, Nonunions and Spinal Fusion. International Orthopaedics. 2007;31(6):735-741. https://doi.org/10.1007/s00264-007-0422-x
  53. Wysocki Robert W, Mark S Cohen. 2. Ectopic Ossification of the Triceps Muscle After Application of Bone Morphogenetic Protein-7 to the Distal Humerus for Recalcitrant Nonunion: A Case Report. The Journal of Hand Surgery. 2007;32(5):647-650. https://doi.org/10.1016/j.jhsa.2007.03.001
  54. Xiong Chengjie, Michael D Daubs, Scott R. Montgomery, Bayan Aghdasi, Hirokazu Inoue, Haijun Tian, Akinobu Suzuki, et al. BMP-2 Adverse Reactions Treated with Human Dose Equivalent Dexamethasone in a Rodent Model of Soft-Tissue Inflammation. Spine. 2013;38(19):1640-1647. https://doi.org/10.1097/BRS.0b013e31829cf348
  55. Yeh Lee-Chuan C. In Vitro and In Vivo Studies on the Effects of Bone Morphogenetic Protein-7 on Human Kidney and Lung Tumor Cells. International Journal of Biomedical Science: IJBS. 2010;6(3):176-181.
  56. Zhang Lijie, Yingnan Ye, Xinxin Long, Pei Xiao, Xiubao Ren, Jinpu Yu. BMP Signaling and Its Paradoxical Effects in Tumorigenesis and Dissemination. Oncotarget. 2016;7(47):78206-78218. https://doi.org/10.18632/oncotarget.12151
  57. Zhang Yunyuan, Xian Chen, Min Qiao, Bing-Qiang Zhang, Ning Wang, Zhonglin Zhang, Zhan Liao, et al. Bone Morphogenetic Protein 2 Inhibits the Proliferation and Growth of Human Colorectal Cancer Cells. Oncology Reports. 2014;32(3):1013-1020. https://doi.org/10.3892/or.2014.3308
  58. Zheng Ying, Xuemei Wang, Haidong Wang, Wei Yan, Quan Zhang, Xin Chang. Bone Morphogenetic Protein 2 Inhibits Hepatocellular Carcinoma Growth and Migration through Downregulation of the PI3K/AKT Pathway. Tumor Biology. 2014;35(6):5189-5198. https://doi.org/10.1007/s13277-014-1673-y
  59. Zheng Yuanna, Gang Wu, Juan Zhao, Linhong Wang, Ping Sun, Zhiyuan Gu. rhBMP2/7 Heterodimer: An Osteoblastogenesis Inducer of Not Higher Potency but Lower Effective Concentration Compared with rhbmp2 and rhbmp7 Homodimers. Tissue Engineering Part A. 2010;16(3):879-887. https://doi.org/10.1089/ten.tea.2009.0312
  60. Заболеваемость всего населения России в 2017 г. Статистические материалы. Часть II. 2018. Министерство здравоохранения Российской Федерации; ФГБУ Центральный научно-исследовательский институт организации и информатизации здравоохранения Министерства здравоохранения Российской Федерации.
  61. Злокачественные новообразования в России в 2016 г. (заболеваемость и смертность). М.: МНИОИ им. П.А. Герцена — филиал ФГБУ НМИЦ радиологии Минздрава России; 2018.
  62. Полежаев Л.В. Восстановление нерегенерирующих костей черепа у млекопитающих. Изд. АН СССР. 1957;(5):556-571.

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.