Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Адамян Л.В.

ГБОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова» Минздрава России

Сибирская Е.В.

ФГБОУ ВО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова» Минздрава России;
ОСП Российская детская клиническая больница ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Пальм В.В.

ОСП Российская детская клиническая больница ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Кириллова Ю.А.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Аветисян Д.С.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет)

Лошкарева М.А.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Дифференциальная диагностика объемного образования органов малого таза и брюшной полости в практике врача-акушера-гинеколога и врача-нейрохирурга на примере серозоцеле (серомы)

Авторы:

Адамян Л.В., Сибирская Е.В., Пальм В.В., Кириллова Ю.А., Аветисян Д.С., Лошкарева М.А.

Подробнее об авторах

Журнал: Проблемы репродукции. 2024;30(1): 116‑121

Прочитано: 2610 раз


Как цитировать:

Адамян Л.В., Сибирская Е.В., Пальм В.В., Кириллова Ю.А., Аветисян Д.С., Лошкарева М.А. Дифференциальная диагностика объемного образования органов малого таза и брюшной полости в практике врача-акушера-гинеколога и врача-нейрохирурга на примере серозоцеле (серомы). Проблемы репродукции. 2024;30(1):116‑121.
Adamyan LV, Sibirskaya EV, Palm VV, Kirillova JA, Avetisyan JuS, Loshkareva MA. Differential diagnosis of volumetric formation of the pelvic organs and abdominal cavity in the practice of an obstetrician-gynecologist and neurosurgeon using the example of serozocele (seroma). Russian Journal of Human Reproduction. 2024;30(1):116‑121. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/repro202430011116

Рекомендуем статьи по данной теме:
Ле­че­ние ос­теоар­три­та ко­лен­но­го сус­та­ва ауто­ло­гич­ной стро­маль­но-вас­ку­ляр­ной фрак­ци­ей жи­ро­вой тка­ни: об­зор за­ру­беж­ной ли­те­ра­ту­ры. Вос­ста­но­ви­тель­ные би­отех­но­ло­гии, про­фи­лак­ти­чес­кая, циф­ро­вая и пре­дик­тив­ная ме­ди­ци­на. 2024;(4):27-37
Кон­сер­ва­тив­ное ле­че­ние при авас­ку­ляр­ном нек­ро­зе го­лов­ки бед­рен­ной кос­ти: сис­те­ма­ти­чес­кий об­зор. Вос­ста­но­ви­тель­ные би­отех­но­ло­гии, про­фи­лак­ти­чес­кая, циф­ро­вая и пре­дик­тив­ная ме­ди­ци­на. 2024;(4):52-67
Ана­то­мо-хи­рур­ги­чес­кие ис­сле­до­ва­ния в ней­ро­хи­рур­гии. Тра­ди­ции и трен­ды. Опе­ра­тив­ная хи­рур­гия и кли­ни­чес­кая ана­то­мия (Пи­ро­гов­ский на­уч­ный жур­нал). 2025;(1):56-65

Введение

Тазовая боль считается одной из главных причин обращения женщин за медицинской помощью и встречается от 4 до 25% случаев [1, 2]. Ведущими факторами возникновения тазовой боли являются хроническое, подострое воспаление внутренних органов, варикозная болезнь малого таза, спаечный процесс в малом тазу как следствие эндометриоза, перенесенного воспалительного процесса или серозоцеле [3]. Возникновение болевого синдрома при наличии спаечного процесса обусловлено ограничением подвижности внутренних органов, которое инициирует рецепторы растяжения гладкомышечных структур, вовлеченных в спаечный процесс, или брюшной стенки, а также раздражение рецепторов на спайках [4—6]. Воздействие механического, термического или носящего воспалительный характер раздражителя вызывает образование спаек брюшины, которые локализуют воздействие и ограничивают распространение патологического процесса в брюшной полости. Результатом такого «защитного механизма» является анатомо-физиологическое нарушение органов малого таза, развитие трубно-перитонеального бесплодия, синдрома тазовой боли и серозоцеле (жидкостное образование в малом тазу) [7]. Последнее представляет собой анатомическое мертвое пространство и является частым осложнением при различных оперативных вмешательствах. Серома нередко вызывает ощущение дискомфорта у пациенток, обусловливает потребность в многократных чрескожных аспирациях и несет риск инфицирования и возникновения абсцесса [8].

Клиническое наблюдение

Девочка, 8 лет, поступила с жалобами на периодические боли в животе. На момент поступления в приемное отделение состояние ребенка оценивалось как тяжелое по основному заболеванию. Живот мягкий, при пальпации незначительная болезненность в нижних отделах.

Из анамнеза известно, что на 34-й неделе внутриутробного развития при проведении ультразвукового исследования (УЗИ) у плода выявлена аневризма вены Галена, вызывающая окклюзионную гидроцефалию. После рождения появились клинические признаки гидроцефалии. По данным магнитно-резонансной томографии (МРТ), выявлена аневризма вены Галена, вызывающая окклюзию водопровода мозга. Боковые желудочки и III желудочек головного мозга значительно расширены, дно III желудочка прогибается вниз. Выполнено оперативное вмешательство — вентрикулоперитонеостомия слева и эндоваскулярная окклюзия аневризмы вены Галена.

В дальнейшем пациентка регулярно наблюдалась врачом-неврологом. В возрасте 2 лет установлен диагноз: детский церебральный паралич, правосторонний гемипарез, 1—2-й уровень двигательной активности; риск развития эпилепсии; задержка развития моторных функций; задержка темпов речевого развития. Девочка является ребенком-инвалидом. В 4 года находилась на стационарном лечении по поводу дисфункции шунтирующей системы. Выполнена ревизия шунта с заменой перитонеального катетера и проведено грыжесечение правосторонней паховой грыжи (выявленной при лапароскопии).

В возрасте 8 лет девочка осмотрена врачом-хирургом по поводу эпизода боли в животе, фебрильной температуры, рвоты. Острый аппендицит исключен. На УЗИ органов малого таза выявлено кистозное образование левого яичника. Заключение: Цистоаденома левого яичника; вероятность серозоцеле в связи с наличием вентрикулоперитонеального шунта. Пациентка госпитализирована в гинекологическое отделение для решения вопроса об оперативном лечении.

При проведении УЗИ органов малого таза выявлено: матка занимает срединное положение, наметился угол между телом и шейкой. Размеры тела 34×22×25 мм, шейка 15×10 мм, М-ЭХО 5 мм. Яичники: правый 24×15×28 мм с фолликулами до 3 мм и единичным фолликулом 14×7 мм, левый четко не визуализируется. Слева и выше мочевого пузыря визуализируется жидкостное образование 134×55×130 мм с перегородками (серома?); уровень свободной жидкости за маткой 7 мм.

При проведении МРТ органов брюшной полости и органов малого таза выявлено многокамерное макрокистозное образование в полости малого таза, вертикальный размер кисты 133 мм, поперечный — 144×60 мм, содержимое ее однородное и по релаксационным характеристикам соответствует жидкости, вероятнее всего серозоцеле. По правой поверхности кисты ближе к брюшной полости определяется компримированный правый яичник размером 19×9 мм, по правому контуру кисты ближе к задней поверхности — компримированный левый яичник 13×16 мм. Матка двурогая, подвержена также компрессии (рис. 1).

Рис. 1. Магнитно-резонансная томограмма объемного образования (серомы) малого таза, боковая проекция.

На обзорной рентгенографии органов брюшной полости признаков свободной жидкости в брюшной полости нет. Газонаполнение кишечника умеренное. Слева тень вентрикулоперитонеального шунта, проксимальный край повернут вверх, локализуется слева на уровне тела позвонка LIII ближе к подмышечной линии, в среднем этаже брюшной полости (рис. 2). Показано проведение диагностической оценки онкомаркеров, уровень СА 125 — 57 Ед/мл.

Рис. 2. Рентгенографическая картина неправильного (нарушенного) положения вентрикулоперитонеального шунта.

Ребенок проконсультирован врачом-нейрохирургом. Признаков дисфункции ликворошунтирующей системы на момент осмотра не было.

На основании данных анамнеза, общего гинекологического осмотра, результатов обследования по месту жительства и в стационаре пациентке с образованием больших размеров в полости малого таза и брюшной полости показано проведение диагностической лапароскопии. Объем оперативного вмешательства определен интраоперационно с учетом дифференциальной диагностики между серозоцеле и объемным образованием левого яичника.

При осмотре обнаружен выраженный спаечный процесс в нижних отделах брюшной полости, в полости малого таза, в левом латеральном канале, частично в правой подвздошной области с образованием многокамерного серозоцеле размером 10×14 см. В полости малого таза обнаружена дополнительная полость, изолированная, диаметром до 5—6 см. Содержимое серозоцеле — прозрачная жидкость, аспирирована полностью. С использованием биполярной коагуляции выполнено разделение спаек в указанных отделах с иссечением оболочек серозоцеле. Визуализировать червеобразный отросток не удалось из-за спаечного процесса. Обнаружен подпаянный большой сальник в месте вхождения шунта в брюшную полость. Сальник отделен, обнаружен шунт, запаянный плоскостными спайками в левом латеральном канале. Шунт выделен полностью. Большой сальник резко отечен, серого оттенка, с выраженной инъекцией сосудов и контактной кровоточивостью. На основании наличия воспалительных изменений большого сальника коллегиально решено выполнить его удаление. Большой сальник субтотально удален с использованием биполярной коагуляции. Шунт отклонен от места наиболее вероятного развития спаечного процесса, проведен через отверстие в круглой связке печени в подпеченочное пространство, фиксирован к круглой связке печени викриловой лигатурой 2/0 (рис. 3).

Рис. 3. Интраоперационная картина объемного образования (серомы).

а — содержимое серозецеле; б — установка вентрикулоперитонеального шунта; в, г — фиксация вентрикулоперитонеального шунта к круглой связке печени.

Матка расположена по средней линии, цилиндрической формы, размеры в пределах возрастной нормы, серозный покров розовый, гладкий. Обе маточные трубы и яичники визуально не изменены. Оболочки серозоцеле и большой сальник эвакуированы из брюшной полости. Другой патологии органов брюшной полости нет.

Ввиду отсутствия гинекологической патологии пациентка переведена в отделение нейрохирургии ОСП РДКБ ФГБОУ ВО РНИМУ им. Н.И. Пирогова Минздрава России для обследования по профилю отделения.

На обзорной рентгенограмме органов брюшной полости через 6 дней после операции выявлен вентрикулоперитонеальный шунт слева, конец его расположен проекционно на уровне позвонка LII, в левом подреберье, дистальная часть с треугольным изгибом. Газонаполнение кишки обычное. Оценка наличия свободного воздуха и жидкости в положении лежа невозможна (рис. 4).

Рис. 4. Рентгенографическая картина положения вентрикулоперитонеального шунта после коррекции его местоположения и фиксации.

При УЗИ органов малого таза через 7 дней после операции: матка занимает серединное положение. Размеры тела 29×15×36 мм, шейка 9×27 мм. Цервикальный канал не расширен. Угол между телом и шейкой слабо выражен. М-ЭХО 5 мм, гипоэхогенное. Яичники: правый 21×11×19 мм с фолликулами до 4 мм, левый четко не визуализируется, перекрыт жидкостным образованием. Данное образование (57×27×56 мм) имеет неправильную форму, с четкой неровной капсулой, в просвете небольшое количество взвеси и нити фибрина. Свободная жидкость в правой подвздошной области 27 мм. Петли кишечника не растянуты, стенки не утолщены, перистальтика слабо выражена. Результаты УЗИ проконсультированы врачом-акушером-гинекологом, рекомендован динамический контроль. В удовлетворительном состоянии ребенок выписан под наблюдение врача-нейрохирурга и врача-акушера-гинеколога по месту жительства.

Обсуждение

Данный клинический случай демонстрирует необходимость тщательного осмотра пациенток, перенесших оперативное вмешательство, в связи с возможным развитием сером (псевдокист) как послеоперационного осложнения.

Проведен поиск исследований в литературе по следующим ключевым словам: «ventriculoperitoneal shunt», «complication», «girl».

В литературе описан случай возникновения псевдокисты (серомы) у 12-летней девочки на фоне открытой пластики миеломенингоцеле, кифосколиоза и правостороннего вентрикулоперитонеального шунта in suti. По результатам УЗИ брюшной полости и компьютерной томографии (КТ) выявлена псевдокиста с перегородками (20×18×8 см), сдавливающая нижнюю полую вену. Проведено дренирование псевдокисты (серомы) и выведение шунта наружу с преобразованием в вентрикулопредсердный шунт [9]. T.G.O. Achufusi и соавт. сообщили о возникновении у 39-летней пациентки большой псевдокисты (серомы) как осложнения вследствие установки вентрикулоперитонеального шунта. При проведении УЗИ и КТ брюшной полости обнаружено четко очерченное кистозное образование. Выполнены лапароскопическое дренирование внутрибрюшинной кисты и открытая конверсия для восстановления петель кишечника вследствие случайного их повреждения во время лапароскопии, а также удаление одного нефункционирующего шунта и замена другого [10]. Имеются сведения о возникновении геморрагической псевдокисты (серомы) у 68-летней женщины вследствие шунтирования вентрикулоперитонеального шунта 15 лет назад. По данным КТ обнаружено большое кистозное скопление гомогенной жидкости изоплотности с четкими краями в правой нижней части живота. Проведено лапароскопическое дренирование кисты с удалением кистозного образования, в ходе которого обнаружено еще одно кистозное образование размером 15 см с толстыми стенками и организованным хроническим гематомным содержимым [11].

При нарушении функции вентрикулоперитонеальных шунтов могут образовываться серомы (псевдокисты), дифференциальная диагностика которых с опухолями брюшной полости и опухолями яичников представляет определенные сложности. Возникновение сером или псевдокист у пациенток с вентрикулоперитонеальными шунтами редко описывается в научной литературе, тем более не уделяется внимание совместному ведению данных пациенток с врачами-акушерами-гинекологами.

Особый клинический интерес представляет описание нашего клинического наблюдения в практике детской гинекологии в силу редкости данной патологии. Так, в литературе найдено описание всего лишь одного подобного случая у более взрослого пациента.

Необходимо учитывать, что риск возникновения послеоперационных сером (псевдокист) достаточно велик, снизить его позволяют ведение операционного периода с соблюдением правил асептики и антисептики, осуществление профилактической антибактериальной терапии.

Заключение

Представленный клинический случай серомы (псевдокисты) на фоне дисфункции шунта ветрикулоперитонеальной системы свидетельствует о необходимости взаимодействия врачей-акушеров-гинекологов и врачей-нейрохирургов при выполнении шунтирующих операций у девочек для оптимальной дифференциальной диагностики гинекологической патологии и возможных осложнений нейрохирургической патологии.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Сибирская Е.В., Адамян Л.В., Яцык С.П., Гераськина С.Г. Боли в животе у девочек, связанные с гинекологической патологией: ошибки диагностики и лечения. Педиатрическая фармакология. 2014;11(4):23-28. 
  2. Адамян Л.В., Сибирская Е.В., Шарков С.М., Медведева А.О. «Острый живот» у девочек-подростков. Особенности дифференциальной диагностики. Детская хирургия. 2019;23(2):86-90.  https://doi.org/10.18821/1560-9510-2019-23-2-86-90
  3. Гинекология. Национальное руководство. Под ред. Кулакова В.И., Савельевой Г.М., Манухина И.Б. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2014.
  4. Сибирская Е.В., Адамян Л.В., Яцык С.П., Гераськина С.Г. Абдоминальный болевой синдром у девочек при опухолях и опухолевидных образованиях придатков матки. Российский педиатрический журнал. 2015;18(3):54-59. 
  5. Адамян Л.В., Колтунов И.Е., Сибирская Е.В., Шарков С.М., Короткова С.А., Моксякова Е.Г., Мовсесян Э.Х. Особенности дифференциальной диагностики опухолей яичников у девочек. Детская хирургия. 2018;22(3):160-162.  https://doi.org/10.18821/1560-9510-2018-22-3-160-162
  6. Дубинская Е.Д. Клинико-эндоскопические корреляции при тазовых перитонеальных спайках. Врач. 2010;8:43-45. 
  7. Тотчиев Г.Ф. Спаечная болезнь: физиологические аспекты, механизмы предупреждения. Эффективная фармакотерапия. 2013;28:18-20. 
  8. Janis JE, Khansa L, Khansa I. Strategies for Postoperative Seroma Prevention. Plastic and Reconstructive Surgery. 2016;138(1):240-252.  https://doi.org/10.1097/prs.0000000000002245
  9. MPharm SM, Chowdhury YA, Soon WC, Rodrigues D, Lo WB. A rare case of inferior vena cava occlusion secondary to abdominal pseudocyst associated with ventriculoperitoneal shunt — case report and review of literature. Child’s Nervous System. 2022;38(6): 1233-1236. https://doi.org/10.1007/s00381-021-05391-6
  10. Achufusi TGO, Chebaya P, Rawlins S. Abdominal Cerebrospinal Fluid Pseudocyst as a Complication of Ventriculoperitoneal Shunt Placement. Cureus. 2020;12(7):e9363. https://doi.org/10.7759/cureus.9363
  11. Wang HC, Tong YL, Li SW, Chen MS, Wang BD, Chen H. Hemorrhagic abdominal pseudocyst following ventriculoperitoneal shunt: a case report. BMC Surgery. 2021;21(1):154.  https://doi.org/10.1186/s12893-021-01161-y
  • Hartman EK, Eslick GD. The prognosis of women diagnosed with breast cancer before, during and after pregnancy: a meta-analysis. Breast Cancer Research and Treatment. 2016;160(2):347-360.  https://doi.org/10.1007/s10549-016-3989-3
  • Khazzaka A, Rassy E, Sleiman Z, Boussios S, Pavlidis N. Systematic review of fetal and placental metastases among pregnant patients with cancer. Cancer Treatment Reviews. 2022;104:102356. https://doi.org/10.1016/j.ctrv.2022.102356
  • National Cancer Insitute. Accessed January 17, 2024. https://www.cancer.gov/about-cancer/causes-prevention/genetics/
  • Michaan N, Leshno M, Cohen Y, Safra T, Peleg-Hasson S, Laskov I, Grisaru D. Preimplantation genetic testing for BRCA gene mutation carriers: a cost effectiveness analysis. Reproductive Biology and Endocrinology. 2021;19(1):153.  https://doi.org/10.1186/s12958-021-00827-9
  • Hartnett KP, Mertens AC, Kramer MR, Lash TL, Spencer JB, Ward KC, Howards PP. Pregnancy after cancer: Does timing of conception affect infant health? Cancer. 2018;124(22):4401-4407. https://doi.org/10.1002/cncr.31732
  • Buonomo B, Brunello A, Noli S, Miglietta L, Del Mastro L, Lambertini M, Peccatori FA. Tamoxifen Exposure during Pregnancy: A Systematic Review and Three More Cases. Breast Care. 2020;15(2): 148-156.  https://doi.org/10.1159/000501473
  • Braems G, Denys H, De Wever O, Cocquyt V, Van den Broecke R. Use of tamoxifen before and during pregnancy. The Oncologist. 2011;16(11):1547-51.  https://doi.org/10.1634/theoncologist.2011-0121
  • Egashira K, Hiasa K, Yokota N, Kawamura T, Matsushita T, Okugawa K, Yahata H, Sonoda K, Kato K. Infertility after abdominal trachelectomy. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 2018; 97(11):1358-1364. https://doi.org/10.1111/aogs.13429
  • Schimberni M, Morgia F, Colabianchi J, Giallonardo A, Piscitelli C, Giannini P, Montigiani M, Sbracia M. Natural-cycle in vitro fertilization in poor responder patients: a survey of 500 consecutive cycles. Fertility and Sterility. 2009;92(4):1297-1301. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2008.07.1765
  • De Marco MP, Montanari G, Ruscito I, Giallonardo A, Ubaldi FM, Rienzi L, Costanzi F, Caserta D, Schimberni M, Schimberni M. Natural Cycle Results in Lower Implantation Failure than Ovarian Stimulation in Advanced-Age Poor Responders Undergoing IVF: Fertility Outcomes from 585 Patients. Reproductive Sciences. 2021; 28(7):1967-1973. https://doi.org/10.1007/s43032-020-00455-5
  • Chan JL, Johnson LN, Efymow BL, Sammel MD, Gracia CR. Outcomes of ovarian stimulation after treatment with chemotherapy. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2015;32(10):1537-1545. https://doi.org/10.1007/s10815-015-0575-2
  • Checa Vizcaíno MA, Corchado AR, Cuadri ME, Comadran MG, Brassesco M, Carreras R. The effects of letrozole on ovarian stimulation for fertility preservation in cancer-affected women. Reproductive Biomedicine Online. 2012;24(6):606-610.  https://doi.org/10.1016/j.rbmo.2012.02.020
  • Oktay K, Türkçüoğlu I, Rodriguez-Wallberg KA. GnRH agonist trigger for women with breast cancer undergoing fertility preservation by aromatase inhibitor/FSH stimulation. Reproductive Biomedicine Online. 2010;20(6):783-788.  https://doi.org/10.1016/j.rbmo.2010.03.004
  • Azim AA, Costantini-Ferrando M, Oktay K. Safety of fertility preservation by ovarian stimulation with letrozole and gonadotropins in patients with breast cancer: a prospective controlled study. Journal of Clinical Oncology. 2008;26(16):2630-2635. https://doi.org/10.1200/JCO.2007.14.8700
  • Turan V, Bedoschi G, Moy F, Oktay K. Safety and feasibility of performing two consecutive ovarian stimulation cycles with the use of letrozole-gonadotropin protocol for fertility preservation in breast cancer patients. Fertility and Sterility. 2013;100(6):1681-5.e1.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2013.08.030
  • Rosenberg E, Fredriksson A, Einbeigi Z, Bergh C, Strandell A. No increased risk of relapse of breast cancer for women who give birth after assisted conception. Human Reproduction Open. 2019;(4): hoz039. https://doi.org/10.1093/hropen/hoz039
  • Sonigo C, Sermondade N, Calvo J, Benard J, Sifer C, Grynberg M. Impact of letrozole supplementation during ovarian stimulation for fertility preservation in breast cancer patients. European Journal of Obstetrics and Gynecology and Reproductive Biology. 2019;4:100049. https://doi.org/10.1016/j.eurox.2019.100049
  • Bonardi B, Massarotti C, Bruzzone M, Goldrat O, Mangili G, Anserini P, Spinaci S, Arecco L, Del Mastro L, Ceppi M, Demeestere I, Lambertini M. Efficacy and Safety of Controlled Ovarian Stimulation With or Without Letrozole Co-administration for Fertility Preservation: A Systematic Review and Meta-Analysis. Frontiers in Oncology. 2020;10:574669. https://doi.org/10.3389/fonc.2020.574669
  • Chian RC, Buckett WM, Tulandi T, Tan SL. Prospective randomized study of human chorionic gonadotrophin priming before immature oocyte retrieval from unstimulated women with polycystic ovarian syndrome. Human Reproduction. 2000;15(1):165-170.  https://doi.org/10.1093/humrep/15.1.165
  • Holzer H, Scharf E, Chian RC, Demirtas E, Buckett W, Tan SL. In vitro maturation of oocytes collected from unstimulated ovaries for oocyte donation. Fertility and Sterility. 2007;88(1):62-67.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2006.11.087
  • Kedem A, Yerushalmi GM, Brengauz M, Raanani H, Orvieto R, Hourvitz A, Meirow D. Outcome of immature oocytes collection of 119 cancer patients during ovarian tissue harvesting for fertility preservation. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2018;35(5): 851-856.  https://doi.org/10.1007/s10815-018-1153-1
  • Park CW, Lee SH, Yang KM, Lee IH, Lim KT, Lee KH, Kim TJ. Cryopreservation of in vitro matured oocytes after ex vivo oocyte retrieval from gynecologic cancer patients undergoing radical surgery. Clinical and Experimental Reproductive Medicine. 2016;43(2):119-125.  https://doi.org/10.5653/cerm.2016.43.2.119
  • Kawamura K, Cheng Y, Kawamura N, Takae S, Okada A, Kawagoe Y, Mulders S, Terada Y, Hsueh AJ. Pre-ovulatory LH/hCG surge decreases C-type natriuretic peptide secretion by ovarian granulosa cells to promote meiotic resumption of pre-ovulatory oocytes. Human Reproduction. 2011;26(11):3094-3101. https://doi.org/10.1093/humrep/der282
  • Mohsenzadeh M, Khalili MA, Tabibnejad N, Yari N, Agha-Rahimi A, Karimi-Zarchi M. Embryo Cryopreservation Following In-Vitro Maturation for Fertility Preservation in a Woman with Mullerian Adenosarcoma: A Case Report. Journal of Human Reproductive Sciences. 2017;10(2):138-141.  https://doi.org/10.4103/jhrs.JHRS_93_16
  • Kirillova A, Bunyaeva E, Van Ranst H, Khabas G, Farmakovskaya M, Kamaletdinov N, Nazarenko T, Abubakirov A, Sukhikh G, Smitz JEJ. Improved maturation competence of ovarian tissue oocytes using a biphasic in vitro maturation system for patients with gynecological malignancy: a study on sibling oocytes. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2021;38(6):1331-1340. https://doi.org/10.1007/s10815-021-02118-z
  • Sanchez F, Le AH, Ho VNA, Romero S, Van Ranst H, De Vos M, Gilchrist RB, Ho TM, Vuong LN, Smitz J. Biphasic in vitro maturation (CAPA-IVM) specifically improves the developmental capacity of oocytes from small antral follicles. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2019;36(10):2135-2144. https://doi.org/10.1007/s10815-019-01551-5
  • De Roo C, Tilleman K. In Vitro Maturation of Oocytes Retrieved from Ovarian Tissue: Outcomes from Current Approaches and Future Perspectives. Journal of Clinical Medicine. 2021;10(20):4680. https://doi.org/10.3390/jcm10204680
  • Диникина Ю.В., Белогурова М.Б., Говоров И.Е., Гамзатова З.Х., Первунина Т.М., Комличенко Э.В. Криоконсервация ткани яичника у девочек с онкологической патологией: мультидисциплинарная программа. Российский журнал детской гематологии и онкологии. 2019;6(3):59-67.  https://doi.org/10.21682/2311-1267-2019-6-3-59-67
  • Абакушина Е.В., Отой Т., Каприн А.Д. Возможности восстановления репродуктивной функции онкологических больных за счет трансплантации криоконсервированной ткани яичника. Гены и клетки. 2015;10(1):18-27. 
  • Gougeon A, Chainy GB. Morphometric studies of small follicles in ovaries of women at different ages. Journal of Reproduction and Fertility. 1987;81(2):433-442.  https://doi.org/10.1530/jrf.0.0810433
  • Dolmans MM, von Wolff M, Poirot C, Diaz-Garcia C, Cacciottola L, Boissel N, Liebenthron J, Pellicer A, Donnez J, Andersen CY. Transplantation of cryopreserved ovarian tissue in a series of 285 women: a review of five leading European centers. Fertility and Sterility. 2021;115(5):1102-1115. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2021.03.008
  • Donnez J, Dolmans MM. Ovarian cortex transplantation: 60 reported live births brings the success and worldwide expansion of the technique towards routine clinical practice. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2015;32(8):1167-1170. https://doi.org/10.1007/s10815-015-0544-9
  • Roness H, Meirow D. Fertility preservation: Follicle reserve loss in ovarian tissue transplantation. Reproduction. 2019;158(5):F35-F44.  https://doi.org/10.1530/REP-19-0097
  • Nisolle M, Casanas-Roux F, Qu J, Motta P, Donnez J. Histologic and ultrastructural evaluation of fresh and frozen-thawed human ovarian xenografts in nude mice. Fertility and Sterility. 2000;74(1): 122-129.  https://doi.org/10.1016/s0015-0282(00)00548-3
  • Tanaka A, Nakamura H, Tabata Y, Fujimori Y, Kumasawa K, Kimura T. Effect of sustained release of basic fibroblast growth factor using biodegradable gelatin hydrogels on frozen-thawed human ovarian tissue in a xenograft model. The Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 2018;44(10):1947-1955. https://doi.org/10.1111/jog.13726
  • Wallace WH, Kelsey TW. Human ovarian reserve from conception to the menopause. PLoS One. 2010;5(1):e8772. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0008772
  • Dolmans MM, Marinescu C, Saussoy P, Van Langendonckt A, Amorim C, Donnez J. Reimplantation of cryopreserved ovarian tissue from patients with acute lymphoblastic leukemia is potentially unsafe. Blood. 2010;116(16):2908-2914. https://doi.org/10.1182/blood-2010-01-265751
  • Diaz-Garcia C, Domingo J, Garcia-Velasco JA, Herraiz S, Mirabet V, Iniesta I, Cobo A, Remohí J, Pellicer A. Oocyte vitrification versus ovarian cortex transplantation in fertility preservation for adult women undergoing gonadotoxic treatments: a prospective cohort study. Fertility and Sterility. 2018;109(3):478-485.e2.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2017.11.018
  • Arvold ND, Taghian AG, Niemierko A, Abi Raad RF, Sreedhara M, Nguyen PL, Bellon JR, Wong JS, Smith BL, Harris JR. Age, breast cancer subtype approximation, and local recurrence after breast-conserving therapy. Journal of Clinical Oncology. 2011;29(29): 3885-3891. https://doi.org/10.1200/JCO.2011.36.1105
  • Gellert SE, Pors SE, Kristensen SG, Bay-Bjørn AM, Ernst E, Yding Andersen C. Transplantation of frozen-thawed ovarian tissue: an update on worldwide activity published in peer-reviewed papers and on the Danish cohort. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2018;35(4):561-570.  https://doi.org/10.1007/s10815-018-1144-2
  • Salim N, Tumanova K, Stolbovoy A, Zvereva D, Popodko A Nosov V. Adaptive VMAT Radiotherapy to Avoid Brachytherapy in Cervical Cancer Treatment. International Journal of Radiation Oncology and Biology and Physics. 2022;114(supp 3):e262.
  • Bystrova O, Lapina E, Kalugina A, Lisyanskaya A, Tapilskaya N, Manikhas G. Heterotopic transplantation of cryopreserved ovarian tissue in cancer patients: a case series. Gynecological Endocrinology. 2019;35(12):1043-1049. https://doi.org/10.1080/09513590.2019.1648413
  • Donnez J. Chemotherapy and decline of the ovarian reserve: How can we explain it and how to prevent it? Fertility and Sterility. 2020; 114(4):722-724.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2020.08.010
  • ESHRE Guideline Group on Female Fertility Preservation; Anderson RA, Amant F, Braat D, D’Angelo A, Chuva de Sousa Lopes SM, Demeestere I, Dwek S, Frith L, Lambertini M, Maslin C, Moura-Ramos M, Nogueira D, Rodriguez-Wallberg K, Vermeulen N. ESHRE guideline: female fertility preservation. Human Reproduction Open. 2020;2020(4):hoaa052. https://doi.org/10.1093/hropen/hoaa052
  • Kindinger LM, Kyrgiou M, MacIntyre DA, Cacciatore S, Yulia A, Cook J, Terzidou V, Teoh TG, Bennett PR. Preterm Birth Prevention Post-Conization: A Model of Cervical Length Screening with Targeted Cerclage. PLoS One. 2016;11(11):e0163793. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0163793
  • Kyrgiou M, Athanasiou A, Paraskevaidi M, Mitra A, Kalliala I, Martin-Hirsch P, Arbyn M, Bennett P, Paraskevaidis E. Adverse obstetric outcomes after local treatment for cervical preinvasive and early invasive disease according to cone depth: systematic review and meta-analysis. BMJ. 2016;354:i3633. https://doi.org/10.1136/bmj.i3633
  • Li X, Li J, Wu X. Incidence, risk factors and treatment of cervical stenosis after radical trachelectomy: A systematic review. European Journal of Cancer. 2015;51(13):1751-1759. https://doi.org/10.1016/j.ejca.2015.05.012
  • Kasuga Y, Ikenoue S, Tanaka M, Ochiai D. Management of pregnancy after radical trachelectomy. Gynecological Oncology. 2021; 162(1):220-225.  https://doi.org/10.1016/j.ygyno.2021.04.023
  • Šimják P, Cibula D, Pařízek A, Sláma J. Management of pregnancy after fertility-sparing surgery for cervical cancer. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavia. 2020;99(7):830-838.  https://doi.org/10.1111/aogs.13917
  • Sato Y, Hidaka N, Sakai A, Kido S, Fujita Y, Okugawa K, Yahata H, Kato K. Evaluation of the efficacy of vaginal progesterone in preventing preterm birth after abdominal trachelectomy. European Journal of Obstetrics Gynecology and Reproducive Biology. 2021;259: 119-124.  https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2021.02.009
  • Signorello LB, Cohen SS, Bosetti C, Stovall M, Kasper CE, Weathers RE, Whitton JA, Green DM, Donaldson SS, Mertens AC, Robison LL, Boice JD Jr. Female survivors of childhood cancer: preterm birth and low birth weight among their children. Journal of National Cancer Institute. 2006;98(20):1453-1461. https://doi.org/10.1093/jnci/djj394
  • Schumer ST, Cannistra SA. Granulosa cell tumor of the ovary. Journal of Clinical Oncology. 2003;21(6):1180-1189. https://doi.org/10.1200/JCO.2003.10.019
  • Spanos CP, Mamopoulos A, Tsapas A, Syrakos T, Kiskinis D. Female fertility and colorectal cancer. International Journal of Colorectal Diseases. 2008;23(8):735-743.  https://doi.org/10.1007/s00384-008-0483-3
  • Lopategui DM, Yechieli R, Ramasamy R. Oncofertility in sarcoma patients. Translational Andrology and Urology. 2017;6(5):951-958.  https://doi.org/10.21037/tau.2017.07.03
  • Practice Committees of the American Society for Reproductive Medicine and the Society for Assisted Reproductive Technology. Mature oocyte cryopreservation: a guideline. Fertility and Sterility. 2013;99(1):37-43.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2012.09.028
  • Ахмедова З.Б., Умарова С.Г., Ашурова М.Дж. Фертильность и лимфома Ходжкина. Вестник Авиценны. 2013;(2):167-172. 
  • Hodgson DC, Pintilie M, Gitterman L, Dewitt B, Buckley CA, Ahmed S, Smith K, Schwartz A, Tsang RW, Crump M, Wells W, Sun A, Gospodarowicz MK. Fertility among female hodgkin lymphoma survivors attempting pregnancy following ABVD chemotherapy. Hematological Oncology. 2007;25(1):11-15.  https://doi.org/10.1002/hon.802
  • Watson M, Wheatley K, Harrison GA, Zittoun R, Gray RG, Goldstone AH, Burnett AK. Severe adverse impact on sexual functioning and fertility of bone marrow transplantation, either allogeneic or autologous, compared with consolidation chemotherapy alone: analysis of the MRC AML 10 trial. Cancer. 1999;86(7):1231-1239. https://doi.org/10.1002/(sici)1097-0142(19991001)86:7<1231::aid-cncr18>3.0.co;2-y
  • Подтверждение e-mail

    На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

    Подтверждение e-mail

    Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.