Биохимические маркеры неполного выкидыша (неполного самопроизвольного аборта)

Кошулько П.А.

ФГБОУ ВО «Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова»

ORCID: 0000-0003-2806-4017

Коваленко М.С.

ФГБОУ ВО «Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова»

ORCID: 0000-0002-2275-5426

Абаленихина Ю.В.

ФГБОУ ВО «Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова» Минздрава России

Scopus AuthorID: 57195266939
ORCID: 0000-0003-0427-0967

Дмитриева М.Н.

ФГБОУ ВО «Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова»

ORCID: 0000-0003-0915-026X

Рокунов Е.Д.

ФГБОУ ВО «Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова»

ORCID: 0000-0002-1817-2439

Биохимические маркеры неполного выкидыша (неполного самопроизвольного аборта)

Авторы:

Кошулько П.А., Коваленко М.С., Абаленихина Ю.В., Дмитриева М.Н., Рокунов Е.Д.

Подробнее об авторах

Журнал: Проблемы репродукции. 2023;29(5): 79‑84

DOI: 10.17116/repro20232905179

Загрузок: 1

Связаться с автором

Оглавление

Как цитировать:

Кошулько П.А., Коваленко М.С., Абаленихина Ю.В., Дмитриева М.Н., Рокунов Е.Д. Биохимические маркеры неполного выкидыша (неполного самопроизвольного аборта). Проблемы репродукции. 2023;29(5):79‑84.
Koshulko PA, Kovalenko MS, Abalenikhina YuV, Dmitrieva MN, Rokunov ED. Biochemical markers of incomplete miscarriage (incomplete spontaneous abortion). Russian Journal of Human Reproduction. 2023;29(5):79‑84. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/repro20232905179

Доказательная гастроэнтерология: pro et contra

Актуальные вопросы педиатрической практики

Использование инфографики авторами научных работ

Закрыть метаданные

Рекомендуем статьи по данной теме:

Особенности эндометриальной экспрессии лейкемия-ингибирующего фактора у женщин репродуктивного возраста при различной толщине эндометрия. Проблемы репродукции. 2023;(4):6-17

Цитокины при нормальном течении беременности и невынашивании. Проблемы репродукции. 2024;(1):72-81

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ

Создание и внедрение в практику методики ранней диагностики и прогнозирования патологии беременности (неполного выкидыша) на основании изменения уровня активности протеаз крови.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

В исследование вошли 70 беременных, которые составили две группы: 1-я (контрольная группа) была представлена 35 клинически здоровыми пациентками с физиологически текущей беременностью, во 2-ю (основную) группу вошли остальные 35 пациенток с неполным самопроизвольным абортом. Активность протеаз исследовали при помощи наборов для определения активности катепсинов, с дальнейшей ее оценкой спектрофлуриометрическими методами.

РЕЗУЛЬТАТЫ

В результате исследования доказана высокая специфичность и чувствительность новых методов диагностики неполного выкидыша.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

По результатам исследования была доказана роль катепсинов в качестве маркеров неполного самопроизвольного аборта и создана методика ранней диагностики и прогнозирования данной патологии беременности.

Ключевые слова:

катепсины B

протеазы

неполный самопроизвольный аборт

невынашивание беременности

неполный выкидыш

Авторы:

Кошулько П.А.

ФГБОУ ВО «Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова»

ORCID: 0000-0003-2806-4017

Коваленко М.С.

ФГБОУ ВО «Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова»

ORCID: 0000-0002-2275-5426

Абаленихина Ю.В.

ФГБОУ ВО «Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова» Минздрава России

Scopus AuthorID: 57195266939
ORCID: 0000-0003-0427-0967

Дмитриева М.Н.

ФГБОУ ВО «Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова»

ORCID: 0000-0003-0915-026X

Рокунов Е.Д.

ФГБОУ ВО «Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова»

ORCID: 0000-0002-1817-2439

Дата поступления:

18.10.2022

Дата принятия в печать:

16.08.2023

Список литературы:

Wyatt PR, Owolabi T, Meier C, Huang T. Age-specific risk of fetal loss observed in a second trimester serum screening population. Obstetrics & Gynecology. 2005;192(6):231-237. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2004.06.099
Vaskoska R, Ha M, Ong L, Kearney G, White JD, Gras S, Warner RD. Ageing and cathepsin inhibition affect the shrinkage of fibre fragments of bovine semitendinosus, biceps femoris and psoas major during heating. Meat Science. 2021;172(7):37-45. https://doi.org/10.1016/j.meatsci.2020.108339
Andrault PM, Panwar P, Brömme D. Characterization of cathepsin S exosites that govern its elastolytic activity. Biochemical Journal. 2020;477(1):227-242. https://doi.org/10.1042/BCJ20190847
Di Spiezio A, Marques ARA, Schmidt L, Thießen N, Gallwitz L, Fogh J, Bartsch U, Saftig P. Analysis of cathepsin B and cathepsin L treatment to clear toxic lysosomal protein aggregates in neuronal ceroid lipofuscinosis. Biochimica et Biophysica Acta. 2021;1867(10): 47-55. https://doi.org/10.1016/j.bbadis.2021.166205
Lu J, Wang M, Wang Z, Fu Z, Lu A, Zhang G. Advances in the discovery of cathepsin K inhibitors on bone resorption. Journal of Enzyme Inhibition and Medicinal Chemistry. 2018;33(1):890-904. https://doi.org/10.1080/14756366.2018.1465417
Akinyemi AO, Pereira GB, Rocha FV. Role of cathepsin B in cancer progression: A potential target for coordination compounds. Mini-Reviews in Medicinal Chemistry. 2021;21(13):1612-1624. https://doi.org/10.2174/1389557521666210212152937
Vitzthum VJ, Spielvogel H, Thornburg J, West B. A prospective study of early pregnancy loss in humans. Fertility and Sterility. 2006;86(4):355-361. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2006.01.021
Sawaya GF, Grady D, Kerlikowske K, Grimes DA. Antibiotics at the time of induced abortion: the case for universal prophylaxis based on a meta-analysis. Obstetrics & Gynecology. 1996;87(5 Pt 2):884-890.
Bick RL. Recurrent miscarriage syndrome and infertility caused by blood coagulation protein or platelet defects. Hematologic Clinical. 2000;14(5):1117-31.
Bradford MM. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Biochemistry. 1976;7(72):248-254. https://doi.org/10.1006/abio.1976.9999
Brugiere O, Verleden SE. Putting the spotlight on macrophage-derived cathepsin in the pathophysiology of obliterative bronchiolitis. European Respiratory Journal. 2021;57(5): 2004607. https://doi.org/10.1183/13993003.04607-2020
Stavreus-Evers A, Aghajanova L, Brismar H, Eriksson H, Landgren B-M, Hovatta O. Co-existence of he-parin-binding epidermal growth factor-like growth factor and pinopodes in human endometrium at the time of implantation. Molecular Human Reproduction. 2002;8(8):765-770. https://doi.org/10.1093/molehr/8.8.765
Xu Q, Mariman ECM, Goossens GH, Blaak EE, Jocken JWE. Cathepsin gene expression in abdominal subcutaneous adipose tissue of obese/overweight humans. Adipocyte. 2020;9(1):246-252. https://doi.org/10.1080/21623945.2020.1775035
Sato T, Yamashina S, Izumi K, Ueno T, Koike M, Ikejima K, Peters C, Watanabe S. Cathepsin L-deficiency enhances liver regeneration after partial hepatectomy. Life Sciences. 2019;221(15):293-300. https://doi.org/10.1016/j.lfs.2019.02.040
Zhou Z, Chen X, Zhu M, Wang W, Ao Z, Zhao J, Tang W, Hong L. Cathepsin D knockdown regulates biological behaviors of granulosa cells and affects litter size traits in goats. Journal of Zhejiang University Science B. 2021;22(11):893-905. https://doi.org/10.1631/jzus.B2100366
Nagakannan P, Islam MI, Conrad M, Eftekharpour E. Cathepsin B is an executioner of ferroptosis. Eftekharpour. Biochimica et Biophysica Acta. 2021;1868(3):118928. https://doi.org/10.1016/j.bbamcr.2020.118928
Park S, Huang H, Kwon W, Kim H-Y, Park J-K, Han JE, Cho G-J, Han S-H, Sung Y, Ryoo ZY, Kim MO, Choi S-K. Cathepsin A regulates pluripotency, proliferation and differentiation in mouse embryonic stem cells. Cell Biochemistry & Function. 2021;39(1):67-76. https://doi.org/10.1002/cbf.3554
Bhuiyan AI, Rathod P, Ghoshal S, Dana D, Das T, Li G, Dickson AA, Rafi F, Subramaniam GS, Fath KR, Paroly S, Chang EJ, Pathak SK. Clickable, selective, and cell-permeable activity-based probe of human cathepsin B — Minimalistic approach for enhanced selectivity. Bioorganic Chemistry. 2021;117(3):21-29. https://doi.org/10.1016/j.bioorg.2021.105463
Choudhury D, Biswas S. Structure-guided protein engineering of human cathepsin L for efficient collagenolytic activity. Protein Engineering, Design and Selection. 2021;34(4):36-43. https://doi.org/10.1093/protein/gzab005
Morrone C, Smirnova NF, Jeridi A, Kneidinger N, Hollauer C, Schupp JC, Kaminski N, Jenne D, Eickelberg O, Yildirim AÖ. Cathepsin B promotes collagen biosynthesis, which drives bronchiolitis obliterans syndrome. European Respiratory Journal. 2021;57(5): 37-45. https://doi.org/10.1183/13993003.01416-2020
Pontious C, Kaul S, Hong M, Hart PA, Krishna SG, Lara L, Conwell DL, Cruz-Monserrate Z. Cathepsin E expression and activity: Role in the detection and treatment of pancreatic cancer. Pancreatology. 2019;19(7):951-956. https://doi.org/10.1016/j.pan.2019.09.009
Karimkhanloo H, Keenan SN, Sun EW, Wattchow DA, Keating DJ, Montgomery MK, Watt MJ. Circulating cathepsin S improves glycaemic control in mice. Journal of Endocrinology. 2021;248(2):167-179. https://doi.org/10.1530/JOE-20-0408
Brown R, Nath S, Lora A, Samaha G, Elgamal Z, Kaiser R, Taggart C, Weldon S, Geraghty P. Cathepsin S: investigating an old player in lung disease pathogenesis, comorbidities, and potential therapeutics. Respiratory Research. 2020;21(111):71-82.

Закрыть метаданные