Мелкозерова О.А.

ФГБУ «Уральский научно-исследовательский институт материнства и младенчества» Минздрава России

Браславская Е.П.

ФГБУ «Уральский научно-исследовательский институт материнства и младенчества» Минздрава России

Михельсон А.А.

ФГБУ «Уральский научно-исследовательский институт материнства и младенчества» Минздрава России

Окулова Е.О.

ФГБУ «Уральский научно-исследовательский институт материнства и младенчества» Минздрава России

Авсеенко М.А.

ФГБУ «Уральский научно-исследовательский институт материнства и младенчества» Минздрава России

Роль микробиоты кишечного и репродуктивного тракта в прогрессировании и рецидивировании наружного генитального эндометриоза

Авторы:

Мелкозерова О.А., Браславская Е.П., Михельсон А.А., Окулова Е.О., Авсеенко М.А.

Подробнее об авторах

Журнал: Проблемы репродукции. 2023;29(4): 68‑74

Прочитано: 3316 раз


Как цитировать:

Мелкозерова О.А., Браславская Е.П., Михельсон А.А., Окулова Е.О., Авсеенко М.А. Роль микробиоты кишечного и репродуктивного тракта в прогрессировании и рецидивировании наружного генитального эндометриоза. Проблемы репродукции. 2023;29(4):68‑74.
Melkozerova OA, Braslavskaya EP, Mikhelson AA, Okulova EO, Avseenko MA. The role of the intestinal and reproductive tract microbiota in the progression and recurrence of genital endometriosis. Russian Journal of Human Reproduction. 2023;29(4):68‑74. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/repro20232904168

Рекомендуем статьи по данной теме:
Мик­ро­би­ота ки­шеч­ни­ка при би­по­ляр­ном аф­фек­тив­ном расстройстве. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(11):28-33

Эндометриоз — это хроническое нейровоспалительное эстрогензависимое заболевание, ассоциированное с нарушением фертильности и хронической тазовой болью, которое, по разным данным, поражает 6—10% женщин репродуктивного возраста, однако истинную распространенность эндометриоза оценить сложно, учитывая многоликость клинических проявлений заболевания и отсутствие надежных неинвазивных методов диагностики [1, 2]. Помимо жалоб со стороны репродуктивной системы 90% пациенток отмечают наличие желудочно-кишечных симптомов эндометриоза [3]. Наиболее распространенными среди них являются вздутие живота, тошнота, запор, диарея и рвота [3, 4].

В последние годы активно изучается влияние особенностей микробиоты на патогенез некоторых заболеваний, в том числе эндометриоза. Предполагается, что при эндометриозе дисбаланс в составе микробиоты кишечника и репродуктивного тракта приводит к повышению уровня провоспалительных цитокинов, нарушению и изменению профилей иммунных клеток, что может способствовать развитию и прогрессированию заболевания. Персистирующая иммунная дисрегуляция поддерживает хроническое воспаление, создавая среду, способствующую активации факторов адгезии и ангиогенеза, формируя порочный круг патогенеза заболевания. Длительное воспаление в очагах эндометриоза инициирует образование спаек и фиброз, что клинически проявляется хронической тазовой болью, дисменореей, диспареунией, дисхезией и бесплодием, значительно снижая качество жизни молодых женщин [3—6].

Современная концепция терапии эндометриоза включает хирургическое лечение в виде иссечения эндометриоидных очагов и гормональную модуляцию [7]. Несмотря на то что данные методы лечения повышают фертильность и снижают интенсивность болевого синдрома, они ассоциированы с хирургическими рисками, побочными эффектами гормональной терапии и высокой долей рецидивов заболевания [7, 8].

В большинстве исследований, посвященных изучению частоты рецидива эндометриоза после хирургического лечения, сообщается о краткосрочном или среднесрочном периоде наблюдения от 2 до 4 лет с тенденцией к увеличению частоты рецидивов в исследованиях с более длительным периодом наблюдения [9]. По данным S.W. Guo и соавт. (Турция, 2009), частота рецидива заболевания в виде возобновления болевого синдрома у женщин с глубоким инфильтрирующим эндометриозом колеблется от 2% до 43,5% и выше [9]. По данным A.W. Horne и соавт. (Англия, 2019), через 2 года после операции частота рецидива составляет 21,5%, а спустя 5 лет — 40—50%, что может свидетельствовать о неэффективности первичного вмешательства у некоторых категорий больных [10]. Около 12% пациенток сообщают об отсутствии какого-либо улучшения после хирургического вмешательства, 34% предъявляют жалобы на выраженный болевой синдром в послеоперационном периоде [10, 11].

Несмотря на колоссальное количество исследований, посвященных этиологии и патогенезу эндометриоза, до настоящего времени нет четкого понимания причин рецидивирующего течения заболевания у определенной когорты пациенток.

Отсутствие единой, общепринятой теории патогенеза эндометриоза является основанием для продолжения исследований, направленных на поиск возможных механизмов развития заболевания, с целью совершенствования принципов его диагностики, терапии и профилактики рецидивирующего течения. В последние годы активно изучается гипотеза бактериального заражения, впервые предложенная группой исследователей из Японии в 2010 г. Согласно данной теории, бактериальный эндотоксин — липополисахарид рассматривается как предполагаемый пусковой фактор развития и прогрессирования эндометриоза. Современные данные указывают на то, что изменение состава микробиоты кишечника и/или репродуктивного тракта может использоваться в качестве инструмента для диагностики эндометриоза, а также для оценки его формы и распространенности [12, 13].

Микробиота человека определяется как сумма всех микробных таксонов, к которым относятся бактерии, вирусы, грибы, простейшие, археи, и, по данным последних исследований, составляет до триллиона микроорганизмов. Микробиом — это совокупность генов всех представителей микробиоты, при оценке в кишечнике он представлен более чем 3 млн микробных генов, что превышает количество генов в геноме человека примерно в 150 раз. При этом микробиом у разных людей может отличаться на 80—90% [14, 15].

Флора кишечника играет незаменимую роль в усвоении и синтезе питательных веществ, поддержании целостности слизистой оболочки, защите от патогенов и работе иммунной системы. Помимо необходимости поддержания физиологической желудочно-кишечной функции также установлено, что микробиота кишечника является ключевым регулятором во многих воспалительных и пролиферативных состояниях, она влияет на метаболизм эстрогенов и гомеостаз стволовых клеток [15].

Известно, что микробиота кишечника участвует в метаболизме эстрогенов посредством эстроболома, который является совокупностью генов бактерий, обладающих способностью опосредованно метаболизировать эстрогены в кишечнике. Регуляция системных уровней эстрогенов происходит посредством β-глюкуронидазы, которая преобразует эстроген в его активные формы. При дисбиозе кишечника повышается секреция микробной β-глюкуронидазы, что увеличивает продукцию активных форм эстрогена и способствует активации его реабсорбции в сосудистое русло, вызывая гиперэстрогенемию. Данный механизм приводит к избыточному воздействию активных форм эстрогена на его рецепторы в тканях-мишенях. Таким образом, микробиота кишечника участвует в регуляции метаболизма эстрогенов в кишечнике и опосредованно влияет на их концентрацию в эстрогензависимых тканях [16].

M. Arumugam и соавт. (Германия, 2011), изучая нормальный состав микробиоты кишечника у людей, выявили, что в нем преобладают бактерии типов Bacteroidetes и Firmicutes, составляющие до 90% от всей массы микробных таксонов. Firmicutes представлены в основном такими родами бактерий, как Clostridium, Lactobacillus, Bacillus, Enterococcus и Ruminococcus; Bacteroides — родом Bacteroidetes. Оставшуюся долю микробиоты составляют Proteobacteria, которые включают роды Escherichia и Desulfovibrio, а также Actinobacteria, представленые родом Bifidobacterium [17].

M. Yuan и соавт. (Китай, 2018) в исследовании на мышиной модели эндометриоза выявили признаки дисбиоза кишечника у больных мышей, что проявлялось двукратным увеличением соотношения Firmicutes/Bacteroidetes, а также повышением доли протеобактерий, актинобактерий и цианобактерий [18].

J. Chen и соавт. (Китай, 2021), изучая состав микробиоты кишечника пациенток с эндометриозом, обнаружили увеличение популяций бактерий видов Eggerthella lenta и Eubacterium dolichum при заметном снижении доли таких бактерий, как Clostridia, Ruminococcus и Lachnospiraceae [19]. В нескольких исследованиях сообщается о повышенном содержании бактерий родов Prevotella и Alloprevotella семейства Prevotellaceae в составе микробиоты кишечника у женщин с эндометриозом [20, 21]. J. Shan и соавт. (Китай, 2021) выявили повышенное содержание грамположительных анаэробных бактерий рода Blautia у пациенток с эндометриозом, что коррелировало с повышенным уровнем эстрадиола в крови [22]. D.R. Uduwela и соавт. (Австралия, 2018) обнаружили повышение количества бактерий семейства Pseudomonadaceae (рода Pseudomonas) в перитониальной жидкости у пациенток с эндометриозом. Бактерии Pseudomonas aeruginosa способны опосредованно повышать активность арилсульфатазы — фермента, участвующего в стероидогенезе, который метаболизирует эстрона сульфат в его активную форму — эстрон [23]. Кроме того, бактерии рода Pseudomonas являются грамотрицательными микроорганизмами, способными высвобождать липополисахариды. Все это может приводить к возникновению локальной гиперэстрогении в брюшной полости, повышенной пролиферации клеток эктопического эндометрия и прогрессированию эндометриоза. Таким образом, повышение количества бактерий рода Pseudomonas в перитонеальной жидкости может быть потенциальным биомаркером эндометриоза, сообщают авторы [23].

S.B. Chadchan и соавт. (США, 2019) в исследовании на мышиной модели эндометриоза показали эффективность антибактериальной терапии метронидазолом в виде уменьшения размеров эндометриоидных очагов за счет сокращения доли бактериоидов [24]. Последующий перенос фекальной микробиоты от мышей с эндометриозом приводил к воспалительной реакции и возобновлению роста эндометриоидных инфильтратов. Данное исследование демонстрирует важную роль кишечной микробиоты в развитии эндометриоза, а также перспективы его лечения с применением антибактериальных препаратов [24, 25].

Помимо исследования роли кишечной микробиоты в последние годы активно изучается влияние микрофлоры репродуктивного тракта на развитие эндометриоза [26].

Нарушение состава микробиоты матки особенно актуально в период периимплантации, когда эпителий эндометрия демонстрирует повышенную проницаемость, способствуя формированию провоспалительной среды [26, 27]. Метаболиты жизнедеятельности микроорганизмов также влияют на локальную микросреду, изменяя pH, усугубляя явления дисбиоза [28]. Хроническое воспаление, вызванное восходящей инфекцией, может лежать в основе развития и прогрессирования эндометриоза.

Защитные свойства репродуктивного тракта обеспечивают комменсальные микроогранизмы, которые ограничивают колонизацию патогенной флорой. Так, присутствие лактобацилл в женском репродуктивном тракте предотвращает адгезию Neisseria gonorrhoeae [29]. Помимо этого, комменсальные бактерии непрерывно стимулируют Toll-подобные рецепторы (TLR), повышая иммунореактивность организма.

В относительно недавнем исследовании B. Ata и соавт. (Турция, 2019) сравнивали состав микробиоты шейки матки и кишечника у женщин с эндометриозом III—IV стадии и контрольной группы. Выявлено, что в микробиоте шейки матки женщин с эндометриозом обнаружено повышенное содержание потенциально патогенных видов, включая Gardnerella, Streptococcus, Escherichia, Shigella и Ureaplasma. В кишечной микробиоте группы с эндометриозом доминировали бактерии рода Shigella и Escherichia [30].

Микробиота полости матки остается менее изученной, в связи с чем до настоящего время отсутствует консенсус относительно нормального ее состава, а также ее роли в развитии эндометриоза [31, 32].

I. Moreno и соавт. (Испания, 2019) в своем исследовании обнаружили, что микробный состав полости матки отличался от вагинального и содержал до 191 таксономической единицы [33]. Данные микроорганизмы классифицированы либо как лактобактерии (LD, >90% Lactobacillus spp.), либо как нелактобактерии (NLD, <90% Lactobacillus spp., >10% других бактерий). Определены пять родов бактерий, наиболее представленные в эндометрии женщин репродуктивного возраста, такие как Lactobacillus (71,7% идентифицированных бактерий), Gardnerella (12,6%), Bifidobacterium (3,7%), Streptococcus (3,2%) и Prevotella (0,866%). В свою очередь, повышение содержания в эндометрии бактерий, связанных с бактериальным вагинозом, таких как Gardnerella, Prevotella и Bacteroides, способствует увеличению риска развития гинекологических заболеваний, включая эндометриоз [33, 34].

K.N. Khan и соавт. (Япония, 2010) выдвинули гипотезу, что при эндометриозе ряд грамотрицательных бактерий, в частности Escherichia coli, путем прямой восходящей миграции из влагалища способны контаминировать менструальную кровь и проникать в стенку матки. Авторы выявили значительное увеличение количества колониеобразующих единиц E. coli в менструальной крови, а также повышение уровня бактериального эндотоксина липополисахарида в менструальной крови и перитонеальной жидкости пациенток с эндометриозом. Бактериальный эндотоксин посредством Toll-подобных рецепторов 4-го типа (TLR-4) стимулирует выработку провоспалительных цитокинов и факторов роста. Концентрации фактора роста гепатоцитов (HGF), фактора роста эндотелия сосудов (VEGF), интерлейкина-6 (IL-6) и фактора некроза опухоли альфа (TNF-α) были значительно выше в культуральной среде E. coli, обработанной липополисахаридами. Кроме того, лиополисахарид бактериального эндотоксина может увеличивать пролиферацию эпителиальных и стромальных клеток эутопического и эктопического эндометрия у женщин с эндометриозом [28].

По данным современных исследований, диета является ключевым фактором формирования экосистемы кишечной микробиоты и имеет решающее значение для метаболизма питательных веществ в активные постбиотики [35].

Изменения в составе кишечной микробиоты зависят от вида бактерий, непосредственно потребляемых с пищей, длительности прохождения через желудочно-кишечный тракт, секреторной активности желудочного тракта, режима питания и регуляции экспрессии микробиома. Изменения в диете оказывают относительно быстрое (в течение недели) влияние на микробный состав и на его метаболиты.

A. Jain и соавт. (Сингапур, 2018) сравнили разнообразие кишечной микробиоты у людей, потребляющих в большем количестве растительную пищу, и у людей, придерживающихся рациона с продуктами животного происхождения. Выяснилось, что бактерии рода Prevotella преобладали у лиц первой группы. Авторы также выявили, что бактерии рода Bacteroides положительно коррелируют с длительным использованием диет, богатых животным белком и насыщенными жирами [36].

В одном из исследований выявлено, что сниженная биодоступность питательных веществ, обнаруживаемая в более крупных пищевых частицах, неповрежденных стенках клеток растений и продуктах без термической обработки, способствует поддержанию нормальной микробиоты кишечника [37]. Цельные растительные продукты обладают защитным действием, способствуя росту полезных бактерий, разрушающих клетчатку, в толстой кишке. Показано, что перевариваемые углеводы из фруктов (например, глюкоза, сахароза и фруктоза) уменьшают количество бактероидов и клостридий [38].

Дефицит питательных веществ, включая фолиевую кислоту, витамин B12, цинк и холин, может препятствовать метилированию ДНК, что приводит к эпигенетическим аномалиям за счет изменения экспрессии генов островка CpG (цитозин — фосфат — гуанин). При эндометриозе гипометилирование CpG может привести к чрезмерной экспрессии стероидогенного фактора 1 (SF1) или рецептора эстрогена β (ER-β) с последующим увеличением уровней эстрадиола и простагландина E2 (PGE2), активируя воспаление и пролиферацию [39].

Установлено, что отсутствие в рационе пациенток с эндометриозом определенных продуктов может вызывать прогрессирование заболевания и повышать риск рецидива. К продуктам, снижающим риск развития и прогрессирования эндометриоза, относят бобовые и цельнозерновую пищу, богатую фолатами, метионином, витаминами В6, А, С и Е, которые действуют на геном посредством метилирования ДНК. При дефиците данных питательных веществ происходит нарушение липидного метаболизма, активация окислительного стресса и эпигенетических мутаций [40, 41].

Еще в 2004 г. F. Parazzini и соавт. провели исследование, в котором изучали рацион питания у 504 женщин с генитальным эндометриозом в возрасте от 20 до 65 лет. Они обнаружили, что высокое еженедельное потребление фруктов и овощей отрицательно коррелировало с риском развития эндометриоза. Напротив, употребление красного мяса, мясного ассорти и колбас определено как фактор риска развития заболевания, что может быть связано с повышением концентрации эстрадиола и сульфата эстрона у данной категории женщин [42].

В исследовании выявили, что высокое потребление омега-3-полиненасыщенных жирных кислот (ПНЖК) снижает риск развития эндометриоза у женщин. На мышиной модели эндометриоза было показано, что диета, богатая ПНЖК, оказывает противовоспалительное действие за счет снижения маркеров воспаления TNF-α и IL-6, подавляя образование новых эндометриоидных очагов [43].

K. Khanaki и соавт., оценивая влияние полиненасыщенных жирных кислот на развитие эндометриоза, обнаружили, что изменение соотношения омега-6 и омега-3 в рационе питания связано с повышенной частотой дисменореи, эндокринных и аутоиммунных заболеваний у женщин с эндометриозом [43, 44].

A. Amaral и соавт. (Бразилия, 2021) в своем исследовании обнаружили, что женщины с эндометриозом потребляли более низкое количество полиненасыщенных жирных кислот (омега-3 и омега-6), чем женщины контрольной группы. Авторы предположили, что употребление омега-3 может замедлять рост эктопического эндометрия и уменьшать болевой синдром, улучшая качество жизни женщин с эндометриозом III и IV стадии [45].

J. Mier-Cabrera и соавт. (Мексика, 2009) обнаружили снижение содержания маркеров окислительного стресса у пациенток с эндометриозом при соблюдении диеты, богатой витаминами A, C и E, в течение 4 мес. Это обусловлено высокой антиоксидантной активностью данных витаминов, которые предотвращают перекисное окисление липидов [39].

Таким образом, анализ данных литературы позволяет сделать заключение, что микробиота кишечника и репродуктивного тракта играет важную роль в развитии и прогрессировании эндометриоза. В связи с этим представляется перспективным изучение новых подходов диагностики, терапии и профилактики данного заболевания.

Дисбиоз кишечника и репродуктивных путей приводит к аномальному метаболизму эстрогенов, иммунной дисрегуляции и хроническому воспалению, способствуя активации факторов адгезии и ангиогенеза, формируя порочный круг начала и прогрессирования эндометриоза. Коррекция состава микробиоты с помощью диетотерапии может быть эффективной в отношении профилактики и прогрессирования генитального эндометриоза [46—48].

Актуальным является исследование структуры микробиома кишечника и репродуктивного тракта у пациенток с генитальным эндометриозом для выявления специфичных колоний микроорганизмов, являющихся прогностическими маркерами неблагоприятного течения и рецидивирования заболевания.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования — Мелкозерова О.А., Михельсон А.А.

Сбор и обработка материала — Мелкозерова О.А., Браславская Е.П., Авсеенко М.А.

Написание текста — Браславская Е.П., Мелкозерова О.А.

Редактирование — Мелкозерова О.А., Михельсон А.А., Окулова Е.О.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Zondervan KT, Becker CM, Missmer SA. Endometriosis. New England Journal of Medicine. 2020;382(13):1244-1256. https://doi.org/10.1056/NEJMra1810764
  2. Zondervan KT, Becker CM, Koga K, Missmer SA, Taylor RN, Viganò P. Endometriosis. Nature Reviews. Disease Primers. 2018;4(1):9.  https://doi.org/10.1038/s41572-018-0008-5
  3. Vercellini P, Fedele L, Aimi G, Pietropaolo G, Consonni D, Crosignani PG. Association between endometriosis stage, lesion type, patient characteristics and severity of pelvic pain symptoms: a multivariate analysis of over 1000 patients. Human Reproduction. 2007;22(1):266-271.  https://doi.org/10.1093/humrep/del339
  4. Saidi K, Sharma S, Ohlsson B. A systematic review and meta-analysis of the associations between endometriosis and irritable bowel syndrome. European Journal of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Biology. 2020;246:99-105.  https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2020.01.031
  5. Pickard JM, Zeng MY, Caruso R, Núñez G. Gut microbiota: Role in pathogen colonization, immune responses, and inflammatory disease. Immunological Reviews. 2017;279(1):70-89.  https://doi.org/10.1111/imr.12567
  6. Jiang I, Yong PJ, Allaire C, Bedaiwy MA. Intricate Connections between the Microbiota and Endometriosis. International Journal of Molecular Sciences. 2021;22:5644. https://doi.org/10.3390/ijms22115644
  7. Brichant G, Laraki I, Henry L, Munaut C, Nisolle M. New Therapeutics in Endometriosis: A Review of Hormonal, Non-Hormonal, and Non-Coding RNA Treatments. International Journal of Molecular Sciences. 2021;22(19):10498. https://doi.org/10.3390/ijms221910498
  8. Kho RM, Andres MP, Borrelli GM, Neto JS, Zanluchi A, Abrão MS. Surgical treatment of different types of endometriosis: Comparison of major society guidelines and preferred clinical algorithms. Best Practice and Research. Clinical Obstetrics and Gynaecology. 2018; 51:102-110.  https://doi.org/10.1016/j.bpobgyn.2018.01.020
  9. Guo SW. Recurrence of endometriosis and its control. Human Reproduction Update. 2009;15(4):441-461.  https://doi.org/10.1093/humupd/dmp007
  10. Horne AW, Daniels J, Hummelshoj L, Cox E, Cooper KG. Surgical removal of superficial peritoneal endometriosis for managing women with chronic pelvic pain: time for a rethink? BJOG. 2019; 126(12):1414-1416. https://doi.org/10.1111/1471-0528
  11. Муфтайдинова Ш.К., Файзуллин Л.З., Чупрынин В.Д, Русейкин Н.С., Смольнова Т.Ю., Буралкина Н.А. Клинико-диагностические аспекты глубокого инфильтративного эндометриоза (диагностика, лечение, рецидивы). Гинекология. 2021;23(4): 307-313.  https://doi.org/10.26442/20795696.2021.4.201040
  12. Khan KN, Kitajima M, Hiraki K, Yamaguchi N, Katamine S, Matsuyama T, Masuzaki H. Escherichia coli contamination of menstrual blood and effect of bacterial endotoxin on endometriosis. Fertility and Sterility. 2010;94(7):2860-2863. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2010.04.053
  13. Huang L, Liu B, Liu Z, Feng W, Liu M, Wang Y, Peng D, Fu X, Zhu H, Cui Z, Xie L, Ma Y. Gut microbiota exceeds cervical microbiota for early diagnosis of endometriosis. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 2021;11:788836. https://doi.org/10.3389/fcimb.2021.788836
  14. Wheeler DA, Srinivasan M, Egholm M, Shen Y, Chen L, McGuire A, He W, Chen YJ, Makhijani V, Roth GT, Gomes X, Tartaro K, Niazi F, Turcotte CL, Irzyk GP, Lupski JR, Chinault C, Song XZ, Liu Y, Yuan Y, Nazareth L, Qin X, Muzny DM, Margulies M, Weinstock GM, Gibbs RA, Rothberg JM. The complete genome of an individual by massively parallel DNA sequencing. Nature. 2008; 452(7189):872-876.  https://doi.org/10.1038/nature06884
  15. Qin J, Li R, Raes J, Arumugam M, Burgdorf KS, Manichanh C, Nielsen T, Pons N, Levenez F, Yamada T, Mende DR, Li J, Xu J, Li S, Li D, Cao J, Wang B, Liang H, Zheng H, Xie Y, Tap J, Lepage P, Bertalan M, Batto JM, Hansen T, Le Paslier D, Linneberg A, Nielsen HB, Pelletier E, Renault P, Sicheritz-Ponten T, Turner K, Zhu H, Yu C, Li S, Jian M, Zhou Y, Li Y, Zhang X, Li S, Qin N, Yang H, Wang J, Brunak S, Doré J, Guarner F, Kristiansen K, Pedersen O, Parkhill J, Weissenbach J; MetaHIT Consortium; Bork P, Ehrlich SD, Wang J. A human gut microbial gene catalogue established by metagenomic sequencing. Nature. 2010;464(7285):59-65.  https://doi.org/10.1038/nature08821
  16. Ervin SM, Li H, Lim L, Roberts LR, Liang X, Mani S, Redinbo MR. Gut microbial β-glucuronidases reactivate estrogens as components of the estrobolome that reactivate estrogens. The Journal of Biological Chemistry. 2019;294(49):18586-18599. https://doi.org/10.1074/jbc.RA119.010950
  17. Arumugam M, Raes J, Pelletier E, Le Paslier D, Yamada T, Mende DR, Fernandes GR, Tap J, Bruls T, Batto JM, Bertalan M, Borruel N, Casellas F, Fernandez L, Gautier L, Hansen T, Hattori M, Hayashi T, Kleerebezem M, Kurokawa K, Leclerc M, Levenez F, Manichanh C, Nielsen HB, Nielsen T, Pons N, Poulain J, Qin J, Sicheritz-Ponten T, Tims S, Torrents D, Ugarte E, Zoetendal EG, Wang J, Guarner F, Pedersen O, de Vos WM, Brunak S, Doré J; Antolín M, Artiguenave F, Blottiere HM, Almeida M, Brechot C, Cara C, Chervaux C, Cultrone A, Delorme C, Denariaz G, Dervyn R, Foerstner KU, Friss C, van de Guchte M, Guedon E, Haimet F, Huber W, van Hylckama-Vlieg J, Jamet A, Juste C, Kaci G, Knol J, Lakhdari O, Layec S, Le Roux K, Maguin E, Mérieux A, Melo Minardi R, M’rini C, Muller J, Oozeer R, Parkhill J, Renault P, Rescigno M, Sanchez N, Sunagawa S, Torrejon A, Turner K, Vandemeulebrouck G, Varela E, Winogradsky Y, Zeller G, Weissenbach J, Ehrlich SD, Bork P. Enterotypes of the human gut microbiome. Nature. 2011;473(7346): 174-180.  https://doi.org/10.1038/nature09944
  18. Yuan M, Li D, Zhang Z, Sun H, An M, Wang G. Endometriosis induces gut microbiota alterations in mice. Human Reproduction. 2018;33(4):607-616.  https://doi.org/10.1093/humrep/dex372
  19. Chen J, Li Y, Tian Y, Huang C, Li D, Zhong Q, Ma X. Interaction between Microbes and Host Intestinal Health: Modulation by Dietary Nutrients and Gut-Brain-Endocrine-Immune Axis. Current Protein and Peptide Science. 2015;16(7):592-603.  https://doi.org/10.2174/1389203716666150630135720
  20. Hooper LV, Littman DR, Macpherson AJ. Interactions between the microbiota and the immune system. Science. 2012;336(6086): 1268-1273. https://doi.org/10.1126/science.1223490
  21. Hantschel J, Weis S, Schäfer KH, Menger MD, Kohl M, Egert M, Laschke MW. Effect of endometriosis on the fecal bacteriota composition of mice during the acute phase of lesion formation. PLoS One. 2019;14(12):e0226835. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0226835
  22. Shan J, Ni Z, Cheng W, Zhou L, Zhai D, Sun S, Yu C. Gut microbiota imbalance and its correlations with hormone and inflammatory factors in patients with stage ¾ endometriosis. Archives of Gynecology and Obstetrics. 2021;304(5):1363-1373. https://ddoi.org/10.1007/s00404-021-06057-z
  23. Uduwela DR, Pabis A, Stevenson BJ, Kamerlin SCL, McLeod MD. Enhancing the steroid sulfatase activity of the arylsulfatase from pseudomonas aeruginosa. ACS Catalysis. 2018;8:8902-8914. https://doi.org/10.1021/acscatal.8b02905.
  24. Chadchan SB, Cheng M, Parnell LA, Yin Y, Schriefer A, Mysorekar IU, Kommagani R. Antibiotic therapy with metronidazole reduces endometriosis disease progression in mice: a potential role for gut microbiota. Human Reproduction. 2019;34(6):1106-1116. https://doi.org/10.1093/humrep/dez041
  25. Salliss ME, Farland LV, Mahnert ND, Herbst-Kralovetz MM. The role of gut and genital microbiota and the estrobolome in endometriosis, infertility and chronic pelvic pain. Human Reproduction Update. 2021;28(1):92-131.  https://doi.org/10.1093/humupd/dmab035
  26. Martin DH, Marrazzo JM. The Vaginal Microbiome: Current Understanding and Future Directions. Journal of Infectious Diseases. 2016;214(1):36-41.  https://doi.org/10.1093/infdis/jiw184
  27. Svensson A, Brunkwall L, Roth B, Orho-Melander M, Ohlsson B. Associations between endometriosis and gut microbiota. Reproductive Sciences. 2021;28(8):2367-2377. https://doi.org/10.1007/s43032-021-00506-5
  28. Khan KN, Kitajima M, Yamaguchi N, Fujishita A, Nakashima M, Ishimaru T, Masuzaki H. Role of prostaglandin E2 in bacterial growth in women with endometriosis. Human Reproduction. 2012;27(12):3417-3424. https://doi.org/10.1093/humrep/des331
  29. Spurbeck RR, Arvidson CG. Inhibition of Neisseria gonorrhoeae epithelial cell interactions by vaginal Lactobacillus species. Infection and Immunity. 2008;76(7):3124-3130. https://doi.org/10.1128/IAI.00101-08
  30. Ata B, Yildiz S, Turkgeldi E, Brocal VP, Dinleyici EC, Moya A, Urman B. The Endobiota Study: Comparison of vaginal, cervical and gut microbiota between women with stage 3/4 endometriosis and healthy controls. Scientific Reports. 2019;9(1):2204. https://doi.org/10.1038/s41598-019-39700-6
  31. Muzny CA, Łaniewski P, Schwebke JR, Herbst-Kralovetz MM. Host-vaginal microbiota interactions in the pathogenesis of bacterial vaginosis. Current Opinion in Infectious Diseases. 2020;33(1):59-65.  https://doi.org/10.1097/QCO.0000000000000620
  32. Muzny CA, Taylor CM, Swords WE, Tamhane A, Chattopadhyay D, Cerca N, Schwebke JR. An Updated Conceptual Model on the Pathogenesis of Bacterial Vaginosis. Journal of Infectious Diseases. 2019; 220(9):1399-1405. https://doi.org/10.1093/infdis/jiz342
  33. Moreno I, Codoñer FM, Vilella F, Valbuena D, Martinez-Blanch JF, Jimenez-Almazán J, Alonso R, Alamá P, Remohí J, Pellicer A, Ramon D, Simon C. Evidence that the endometrial microbiota has an effect on implantation success or failure. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 2016;215(6):684-703.  https://doi.org/10.1016/j.ajog.2016.09.075
  34. Kamińska D, Gajecka M. Is the role of human female reproductive tract microbiota underestimated? Beneficial Microbes. 2017;8(3):327-343.  https://doi.org/10.3920/BM2015.0174
  35. Mitchell C, Marrazzo J. Bacterial vaginosis and the cervicovaginal immune response. American Journal of Reproductive Immunology. 2014;71(6):555-563.  https://doi.org/10.1111/aji.12264
  36. Jain A, Li XH, Chen WN. Similarities and differences in gut microbiome composition correlate with dietary patterns of Indian and Chinese adults. AMB Express. 2018;8(1):104.  https://doi.org/10.1186/s13568-018-0632-1
  37. Ercolini D, Fogliano V. Food Design to Feed the Human Gut Microbiota. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2018;66(15): 3754-3758. https://doi.org/10.1021/acs.jafc.8b00456
  38. Singh RK, Chang HW, Yan D, Lee KM, Ucmak D, Wong K, Abrouk M, Farahnik B, Nakamura M, Zhu TH, Bhutani T, Liao W. Influence of diet on the gut microbiome and implications for human health. Journal of Translational Medicine. 2017;15(1):73.  https://doi.org/10.1186/s12967-017-1175-y
  39. Mier-Cabrera J, Aburto-Soto T, Burrola-Méndez S, Jiménez-Zamudio L, Tolentino MC, Casanueva E, Hernández-Guerrero C. Women with endometriosis improved their peripheral antioxidant markers after the application of a high antioxidant diet. Reproductive Biology and Endocrinology. 2009;7:54.  https://doi.org/10.1186/1477-7827-7-54
  40. Trabert B, Peters U, De Roos AJ, Scholes D, Holt VL. Diet and risk of endometriosis in a population-based case-control study. British Journal of Nutrition. 2011;105(3):459-467.  https://doi.org/10.1017/S0007114510003661
  41. Darling AM, Chavarro JE, Malspeis S, Harris HR, Missmer SA. A prospective cohort study of Vitamins B, C, E, and multivitamin intake and endometriosis. Journal of Endometriosis. 2013;5(1):17-26.  https://doi.org/10.5301/je.5000151
  42. Parazzini F, Chiaffarino F, Surace M, Chatenoud L, Cipriani S, Chiantera V, Benzi G, Fedele L. Selected food intake and risk of endometriosis. Human Reproduction. 2004;19(8):1755-1759. https://doi.org/10.1093/humrep/deh395
  43. Khanaki K, Nouri M, Ardekani AM, Ghassemzadeh A, Shahnazi V, Sadeghi MR, Darabi M, Mehdizadeh A, Dolatkhah H, Saremi A, Imani AR, Rahimipour A. Evaluation of the relationship between endometriosis and omega-3 and omega-6 polyunsaturated fatty acids. Iranian Biomedical Journal. 2012;16(1):38-43.  https://doi.org/10.6091/ibj.1025.2012
  44. Missmer SA, Chavarro JE, Malspeis S, Bertone-Johnson ER, Hornstein MD, Spiegelman D, Barbieri RL, Willett WC, Hankinson SE. A prospective study of dietary fat consumption and endometriosis risk. Human Reproduction. 2010;25(6):1528-1535. https://doi.org/10.1093/humrep/deq044
  45. Savaris AL, do Amaral VF. Nutrient intake, anthropometric data and correlations with the systemic antioxidant capacity of women with pelvic endometriosis. European Journal of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Biology. 2011;158(2):314-318.  https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2011.05.014
  46. Эндометриоз. Клинические рекомендации. М.: Министерство здравоохранения Российской Федерации. 2020. Ссылка активна на 12.05.23.  https://minzdrav.samregion.ru/wp-content/uploads/sites/28/2020/12/endometrioz.pdf?ysclid=lfgnra6oc3298261126
  47. Australian clinical guideline on the diagnosis and management of endometriosis. RANZCOG: 2021. Accessed May 12, 2023. https://ranzcog.edu.au/news/australian-endometriosis-guideline
  48. ESHRE guideline: endometriosis. Human Reproduction Open. 2022;2:hoac009. https://doi.org/10.1093/hropen/hoac009
  • Nguyen Manh T, Bui Van N, Le Thi H, Vo Hoang L, Nguyen Si Anh H, Trinh Thi Thu H, Nguyen Xuan T, Vu Thi N, Minh LB, Chu DT. Pregnancy with heart disease: maternal outcomes and risk factors for fetal growth restriction. International Journal of Environmental Research and Public Health. 2019;16(12):2075. https://doi.org/10.3390/ijerph16122075
  • Hart MV, Morton MJ, Hosenpud JD, Metcalfe J. Aortic function during normal human pregnancy. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 1986;154(4):887-891.  https://doi.org/10.1016/0002-9378(86)90477-1
  • Bons LR, Roos-Hesselink JW. Aortic disease and pregnancy. Current Opinion in Cardiology. 2016;31(6):611-617.  https://doi.org/10.1097/HCO.0000000000000336
  • Little B. Water and electrolyte balance during pregnancy. Anesthesiology. 1965;26:408.  https://doi.org/10.1097/00000542-196507000-00005
  • Kumar P, Magon N. Hormones in pregnancy. Nigerian Medical Journal. 2012;53(4):179-183.  https://doi.org/10.4103/0300-1652.107549
  • Napso T, Yong HEJ, Lopez-Tello J and Sferruzzi-Perri AN. The Role of Placental Hormones in Mediating Maternal Adaptations to Support Pregnancy and Lactation. Frontiers in Physiology. 2018;9:1091. https://doi.org/10.3389/fphys.2018.01091
  • Van Hagen IM, Roos-Hesselink JW. Aorta pathology and pregnancy. Best Practice and Research. Clinical Obstetrics and Gynaecology. 2014;28(4):537-550. 
  • Warnes CA. Pregnancy and Delivery in Women with Congenital Heart Disease. Circulation Journal. 2015;(79):1416-1421. https://doi.org/10.1253/circj.CJ-15-0572
  • Wald RM, Silversides CK, Kingdom J, Toi A, Lau CS, Mason J, Colman JM, Sermer M, Siu SC. Maternal cardiac output and fetal doppler predict adverse neonatal outcomes in pregnant women with heart disease. Journal of the American Heart Association. 2015;4(11):e002414. https://doi.org/10.1161/JAHA.115.002414
  • Verlohren S, Melchiorre K, Khalil A, Thilaganathan.B. Uterine artery Doppler, birth weight and timing of onset of pre-eclampsia: providing insights into the dual etiology of late-onset pre-eclampsia. Ultrasound in Obstetrics and Gynecology. 2014;44(3):293-298.  https://doi.org/10.1002/uog.13310
  • Thalmann M, Sodeck G.H, Domanovits H, Grassberger M, Loewe C, Michael Grimm, Czerny M. Acute type A aortic dissection and pregnancy: a population-based study. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery. 2011;39(Issue 6):159-e163. https://doi.org/10.1016/j.ejcts.2010.12.070
  • Friel LA. Troubles Cardiaques Pendant la Grossesse University of Texas Health Medical School at Houston. McGovern Medical School;2017.
  • Niwa K, Perloff JK, Bhuta SM, Laks H, Drinkwater DC, Child JS, Miner PD. Structural abnormalities of great arterial walls in congenital heart disease: light and electron microscopic analyses. Circulation. 2001;103(3):393-400.  https://doi.org/10.1161/01.cir.103.3.393
  • Oliver JM, Gallego P, Gonzalez A, Aroca A, Bret M, Mesa JM. Risk factors for aortic complications in adults with coarctation of the aorta. Journal of the American College of Cardiology. 2004;44(8):1641-1647. https://doi.org/10.1016/j.jacc.2004.07.037
  • Krywko DM, King KC. Aortocaval Compression Syndrome. StatPearls Publishing. Aug 08, 2022.
  • Ohlson L. Effects of the pregnant uterus on the abdominal aorta and its branches. Acta Radiologica: Diagnosis.1978;19(2):369-376.  https://doi.org/10.1177/028418517801900212
  • Saeki N, Taguchi S, Kawamoto M. Successful management ofa patient with Marfan syndrome complicated with acute aorticdissection using landiolol during cesarean section. Journal of Anesthesia. 2010;24(2):277-279.  https://doi.org/10.1007/s00540-009-0859-8
  • Yuan Shi-Min. Bicuspid aortic valve in pregnancy. Taiwanese Journal of Obstetrics and Gynecology. 2014;53(4):476-480.  https://doi.org/10.1016/j.tjog.2013.06.018
  • Kamel H, Roman MJ, Pitcher A, Devereux RB. Pregnancy and the Risk of Aortic Dissection or Rupture. A Cohort-Crossover Analysis. Circulation. 2016;134(7):527-533.  https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.116.021594
  • Yuan S-M. Aortic Dissection During Pregnancy: A Difficult Clinical Scenario. Clinical Cardiology. 2013;36(10):576-584.  https://doi.org/10.1002/clc.22165
  • Wanga S, Silversides C, Dore A, de Waard V, Mulder B. Pregnancy and thoracic aortic disease: managing the risks. Canadian Journal of Cardiology. 2016;32(1):78-85.  https://doi.org/10.1016/j.cjca.2015.09.003
  • Osol G, Ko NL, Mandalà M. Plasticity of the maternal vasculature during pregnancy. Annual Review of Physiology. 2019;81:89-111.  https://doi.org/10.1146/annurev-physiol-020518-114435
  • Cherpak BV, Davydova YV, Kravchenko VI, Yaschuk NS, Siromakha SO, Lazoryshynets VV. Management of percutaneous treatment of aorta coarctation diagnosed during pregnancy. Journal of Medicine and Life. 2022;15(2):208-213.  https://doi.org/10.25122/jml-2021-0363
  • Connolly HM, Huston J 3rd, Brown RD Jr, Warnes CA, Ammash NM, Tajik AJ. Intracranial aneurysms in patients with coarctation of the aorta: a prospective magnetic resonance angiographic study of 100 patients. Mayo Clinic Proceedings. 2003;78(12):1491-1499. https://doi.org/10.4065/78.12.1491
  • Singh PK, Marzo A, Staicu C, William MG, Wilkinson I, Lawford PV, Rufenacht DA, Bijlenga P, Frangi AF, Hose R, Patel UJ, Coley SC. The Effects of Aortic Coarctation on Cerebral Hemodynamics and its Importance in the Etiopathogenesis of Intracranial Aneurysms. Journal of Vascular and Interventional Neurology. 2010;3(1):17-30. 
  • Dias MS, Sekhar LN. Intracranial haemorrhage from aneurysms and arteriovenous malformations during pregnancy and the puerperium. Neurosurgery. 1990;27(6):855-865.  https://doi.org/10.1097/00006123-199012000-00001
  • Mehrotra M, Mehrotra A, Nair A, Srivastava A, Sahu RN, Pradhan M, Kuma R. Intracranial hemorrhage from giant aneurysm in pregnancy: A rare association. Asian Journal of Neurosurgery. 2017; 12(1):142-144.  https://doi.org/10.4103/1793-5482.145553
  • Miller HJ, Hinkley CM: Berry aneurysms in pregnancy: a 10 year report. Southern Medical Journal. 1970;63(3):279.  https://doi.org/10.1097/00007611-197003000-00007
  • Kim YW, Neal D, Hoh BL. Cerebral Aneurysms in Pregnancy and Delivery: Pregnancy and Delivery Do Not Increase the Risk of Aneurysm Rupture. Neurosurgery. 2013;72(Issue 2):143-150.  https://doi.org/10.1227/NEU.0b013e3182796af9
  • Stout KK, Daniels CJ, Aboulhosn JA, Bozkurt B, Broberg CS, Colman JM, Crumb SR, Dearani JA, Fuller S, Gurvitz M, Khairy P, Landzberg MJ, Saidi A, Valente AM, Van Hare GF. 2018 ACC/AHA guidelines on adult congenital heart disease: Executive summary: A report of the American College of Cardiology/American Heart Association task force on clinical practice guidelines. Circulation. 2019;139(14):637-697.  https://doi.org/10.1161/CIR.0000000000000602
  • Ntiloudi D, Zegkos T, Bazmpani MA, Parcharidou D, Panagiotidis T, Hadjimiltiades S, Karvounis H, Giannakoulas G. Pregnancy outcome in women with congenital heart disease: A single-center experience. Hellenic Journal of Cardiology. 2018;59(3):155-159.  https://doi.org/10.1016/j.hjc.2017.08.008
  • Pieper PG, Balci A, Aarnoudse JG, Kampman MA, Sollie KM, Groen H, Mulder BJ, Oudijk MA, Roos-Hesselink JW, Cornette J, van Dijk AP, Spaanderman ME, Drenthen W, van Veldhuisen DJ; ZAHARA II investigators. Uteroplacental blood flow, cardiac function, and pregnancy outcome in women with congenital heart disease. Circulation. 2013;128(23): 2478-2487. https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.113.002810
  • Siegmund AS, Kampman MAM, Bilardo CM, Balci A, van Dijk APJ, Oudijk MA, Mulder BJM, Roos-Hesselink JW, Sieswerda GT, Koenen SV, Sollie-Szarynska KM, Ebels T, van Veldhuisen DJ, Pieper PG; ZAHARA investigators. Pregnancy in women with corrected aortic coarctation: uteroplacental doppler flow and pregnancy outcome. Journal of Cardiology. 2017;249:145-150.  https://doi.org/10.1016/j.ijcard.2017.09.167
  • Avanzas P, García-Fernández M.A, Quiles J, Datino T, Moreno M. Pseudoaneurysm complicating aortic coarctation in a pregnant woman. International Journal of Cardiology. 2004;9(1):157-158.  https://doi.org/10.1016/j.ijcard.2003.06.037
  • Мравян С.Р., Петрухин В.А., Пронина В.П., Вишнякова М.В., Абраменко А.С., Хапий Н.Х., Лысенко С Н. Течение беременности и родоразрешение пациенток, перенесших операцию по поводу коарктации аорты. Российский вестник акушера-гинеколога. 2014;14(6):49-54. 
  • Иртюга О.Б., Мгдесян К.О., Моисеева О.М. Особенности ведения беременности и родов у пациенток с патологией аорты и аортального клапана. Российский кардиологический журнал. 2017;2:80-86. 
  • Butalia S, Audibert F, Côté AM. Hypertension Canada’s 2018 Guidelines for the Management of Hypertension in Pregnancy. Canadian Journal of Cardiology. 2018;(34):526-531.  https://doi.org/10.1016/j.cjca.2018.02.021
  • Melchiorre K, Sharma R, Thilaganathan B. Cardiovascular implications in preeclampsia: an overview. Circulation. 2014;130:703-714.  https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.113.003664
  • Moore LG, Shriver M, Bemis L, Hickler B, Wilson M, Brutsaert T, Parra E, Vargas E. Maternal adaptation to high-altitude pregnancy: an experiment of nature — a review. Placenta. 2004;25(Suppl A): 60-71.  https://doi.org/10.1016/j.placenta.2004.01.008
  • Ladouceur M, Benoit L, Radojevic J, Basquin A, Dauphin C, Hascoet S, Moceri P, Bredy C, Iserin L, Gouton M, Nizard J. Pregnancy Outcomes in Patients with Pulmonary Arterial Hypertension Associated with Congenital Heart Disease. Heart. 2017;103(4): 287-292.  https://doi.org/10.1136/heartjnl-2016-310003
  • Knight M, Nair M, Tuffnell D, Shakespeare J, Kenyon S, Kurinczuk JJ, eds; on behalf of MBRRACE-UK. Saving Lives, Improving Mothers’ Care—Lessons Learned to Inform Maternity Care from the UK and Ireland Confidential Enquiries into Maternal Deaths and Morbidity 2013–15. Oxford: National Perinatal Epidemiology Unit. University of Oxford, 2017 
  • Ramlakhan KP, Tobler D, Greutmann M, Schwerzmann M, Baris L, Yetman AT, Nihoyannopoulos P, Manga P, Boersma E, Maggioni AP, Johnson MR, Hall R, Roos-Hesselink JW; ROPAC investigators group. On behalf of the ROPAC investigators group. Pregnancy outcomes in women with aortic coarctation. Heart. 2021;107(4): 290-298.  https://doi.org/10.1136/heartjnl-2020-317513
  • WHO Recommendations for Prevention and Treatment of Pre-Eclampsia and Eclampsia. Geneva World Health Organization; 2011.
  • Ananth CV, Keyes KM, Wapner RJ. Pre-Eclampsia rates in the United States, 1980-2010: age-period-cohort analysis. BMJ. 2013;347:f6564. https://doi.org/10.1136/bmj.f6564
  • Boerma T, Ronsmans C, Melesse DY, Barros AJD, Barros FC, Juan L, Moller AB, Say L, Hosseinpoor AR, Yi M, de Lyra Rabello Neto D, Temmerman M. Global epidemiology of use of and disparities in caesarean sections. Lancet. 2018;392:1341-1348. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(18)31928-7
  • Подтверждение e-mail

    На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

    Подтверждение e-mail

    Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.