Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Клычева О.Н.

ГУЗ «Липецкий областной онкологический диспансер»

Шинкарев С.А.

ГУЗ «Липецкий областной онкологический диспансер»;
ФГБОУ ВО «Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко» Минздрава России

Латышев Ю.П.

ГУЗ «Липецкий областной онкологический диспансер»

Биологический матрикс: виды и опыт применения

Авторы:

Клычева О.Н., Шинкарев С.А., Латышев Ю.П.

Подробнее об авторах

Прочитано: 1130 раз


Как цитировать:

Клычева О.Н., Шинкарев С.А., Латышев Ю.П. Биологический матрикс: виды и опыт применения. Пластическая хирургия и эстетическая медицина. 2024;(2):87‑93.
Klycheva ON, Shinkarev SA, Latyshev YuP. Biological matrix: types and application experience. Plastic Surgery and Aesthetic Medicine. 2024;(2):87‑93. (In Russ., In Engl.)
https://doi.org/10.17116/plast.hirurgia202402187

Введение

Ксенопластика (гетеропластика) — метод пластической хирургии, при котором используются ткани и органы животных [6].

В 1980 г. в Институте сердечно-сосудистой хирургии им. А.Н. Бакулева АМН СССР был разработан уникальный способ обработки биоткани (патент №2197818), позволяющий лишить ее антигенных свойств и дающий ей возможность приобрести уникальную структуру, что привело к активному использованию ксеноперикардиальных тканей в различных отраслях хирургии [1, 3, 4, 8—11, 13, 16].

Биологические сетки получают из дермы трупа человека (Alloderm, Allomax, FlexHD, DermaCell), свиньи (Strattice, Permacol), ткани бычьего перикарда (Veritas, «Кардиоплант»), кожи крупного рогатого скота («Коллост», SurgiMend) посредством специальной обработки [2, 19, 46, 50, 52, 53].

Материал действует как регенеративный каркас, поддерживающий ремоделирование и формирование нового коллагена [34, 49]. Характеристики каждого материала уникальны и зависят от источника ткани и методов, используемых для удаления клеточных элементов и стерилизации трансплантата [5, 18, 28]. Биохимические изменения в структуре коллагена, происходящие в результате этой обработки, влияют на биосовместимость, реакцию на инородное тело и иммуногенный потенциал трансплантата [21, 30, 36].

Биологическая сетка является альтернативой синтетической сетке; она интегрируется в нативную ткань и менее восприимчива к инфекции [12, 20, 23, 41, 47].

Доступно множество различных типов биологических сеток: бычьи, свиные и человеческие имплантаты [45].

Сравнительные характеристики биологических сеток [47] представлены в табл. 1.

Таблица 1. Сравнительные характеристики биологических сеток [47]

Параметр

Strattice

Epiflex

Permacol

SurgiMend

Allomax

Flex HD

DermaMatrix

Источник

Матрица свиного происхождения (несшитая)

Кожа человека (несшитая)

Кожный матрикс свиньи (сшитый)

Эмбриональный бычий кожный коллаген (несшитый)

Человеческая матрица (несшитая)

Аллотрансплантат кожи человека (несшитый)

Кожа человека (несшитая)

Децеллюляризация/обработка

Ацетон, гипертонический раствор, гипотонический раствор, H2O2, NaOH

Гипертонический раствор

Хлорид натрия, обеззараженный кислотными и антисептическими реагентами

Стерилизация

Излучение электронного пучка

Стерилизация перуксусной кислотой

Гамма- излучение

Окись этилена

Гамма- излучение

Этанол и надуксусная кислота (без окончательной стерилизации)

Дезинфицирующий раствор

Толщина

1—2 мм

>0,3 и >0,8 мм

0,5—1,5 см

0,4—0,75 и 0,75—1,54 мм

0,8—1,8 мм

0,4—0,8 мм, и 0,8—1,7 мм, и 1,8 мм

0,2—0,4 мм, и 0,4—0,8 мм, и 0,8—1,7 мм, и 1,7+ мм

Прочность на растяжение

270 Н/см

70 Н/см

66 Н/см

432 Н/см

290 Н/см

929 Н/см

146 Н/см

Физиологическая эластичность при 16 Н/см

9,6%

13,1%

6,4%

26,2%

21,2%

12,6%

Трансплантаты подвергаются воздействию различных ферментов, которые со временем разрушают их [26]. Для обеспечения хорошего результата они должны сохранять свою структуру достаточно долго, чтобы интегрироваться в ткань реципиента [17, 22, 31, 51].

Коллагеназы — это ферменты, которые обычно встречаются при заживлении ран и участвуют в расщеплении коллагена. Коллагеновая матрица может быть химически сшита, чтобы противостоять деградации этими ферментами. Несшитая сетка обычно разлагается через 2—3 мес, тогда как сшитый материал может прослужить несколько лет. Теоретически это позволяет сетке сохранять свою структуру с более медленным внедрением в нативную ткань. Скорость деградации и способность выдерживать механические нагрузки уникальны для каждого материала [14, 36, 37, 42].

В последние годы наблюдается растущая тенденция к использованию биологической сетки в контаминированных/инфицированных хирургических полях [15, 12, 23, 48]. Биологические сетки активно применяются для пластики параколостомических грыж [24, 27], а также для пластики дефекта промежности после брюшно-промежностной экстирпации прямой кишки, сакрэктомии и эвисцерации [17, 38, 39, 43].

Выбор наилучшего способа закрытия дефекта промежности после абдоминоперинеального иссечения при раке прямой кишки и анального канала остается предметом дискуссий.

Репопуляризация экстралеваторной резекции означает, что колоректальные хирурги сталкиваются с ранами промежности больших размеров. В настоящее время известны различные способы закрытия промежностной раны: местными тканями, синтетическими и биологическими сетками, свободными или перемещенными мышечными и кожно-мышечными лоскутами [54].

Каждый метод имеет свои достоинства и недостатки, и выбор оптимального способа пластики дефекта тазового дна все еще находится в стадии изучения. В настоящее время нет единого мнения о том, какой метод является «идеальным» [25, 29, 33, 40].

В последние годы в отечественной и зарубежной литературе возросло количество публикаций о применении биологической сетки для пластики тазового дна. Выводы авторов противоречивы: одни сообщают о хороших результатах использования ксенотканей и меньшем количестве осложнений по сравнению с первичным закрытием лоскутом — 12% против 36% соответственно (p<0,05) [19]; другие говорят о худших результатах лечения при использовании биологической сетки. Осложнения со стороны раны промежности были значительно выше в группе с сеткой — 55% против 33,9% в группе ушивания мягких тканей промежности (p<0,01) [43].

Это явно вызывает озабоченность и требует проведения дальнейших исследований в данном направлении. В настоящей статье представлены результаты лечения пациентов с использованием различных методик закрытия промежностной раны (таких как простая пластика, ксенопластика).

Материал и методы

В наше исследование включены пациенты с клиническим диагнозом рака прямой кишки и анального канала, которым выполнена брюшно-промежностная экстирпация прямой кишки в возрасте от 30 до 80 лет.

Критерии исключения из исследования: отдаленные метастазы; тяжелые и декомпенсированные сопутствующие соматические заболевания; синхронные онкологические заболевания; беременность и период лактации; аллергия на продукты из свинины; тяжелые системные заболевания, влияющие на заживление ран, за исключением диабета; нежелание участвовать в исследовании.

После подписания информированного добровольного согласия на участие в исследовании 90 пациентов методом случайных чисел были рандомизированы на две группы: в 1-й группе (45 пациентов: 24 мужчины и 21 женщина; средний возраст 64±11 года) пластика промежностной раны была выполнена ксеноперикардиальной пластиной, на данную методику пластики получен патент Российской Федерации на изобретение №2636417; во 2-й группе (45 пациентов: 25 мужчин и 20 женщин; средний возраст 65±14 года) было проведено послойное ушивание мягких тканей промежности.

Группы сопоставимы по половому признаку, возрасту, сопутствующей патологии, стадии опухолевого процесса. Сравнение проводилось по методике хи-квадрат Пирсона и с использованием теста Краскела—Уоллиса.

В 1-й группе средний индекс массы тела пациентов составил 27,04 (18,50—48,0) кг/м2; средние сроки заживления — 12,21 дня (от 9 до 17 дней); 17 операций выполнены лапароскопически, 13 операций — лапаротомным способом, 7 операций были комбинированными. 22 больным проведена неоадъювантная ДЛТ/ХЛТ в СОД 48—50 Гр. Среднее время операции составило 154,72 (90—300) мин. 23 больным была выполнена классическая брюшно-промежностная экстирпация прямой кишки, 7 больным — экстралеваторная. 23 пациента были с диагнозом рака прямой кишки, 5 пациентов — с диагнозом рака анального канала, в 2 случаях был оперирован рецидивный рак.

Во 2-й группе средний индекс массы тела пациентов составил 28,43 (18—38) кг/м2; средние сроки заживления — 32 дня (от 15 до 88 дней); 9 операций выполнены лапароскопически, 26 — открытым доступом. 32 больным проведена неоадъювантная ДЛТ/ХЛТ в СОД 48—50 Гр. Среднее время операции составило 166 (100—280) мин. 33 больным была выполнена классическая брюшно-промежностная экстирпация прямой кишки, 2 больным — экстралеваторная. 24 пациента были с диагнозом рака прямой кишки, 9 пациентов — с диагнозом рака анального канала, в 2 случаях был оперирован рецидивный рак, в 6 случаях были проведены комбинированные операции. Различия между показателями групп значимы (p≤0,05).

У всех пациентов были злокачественные опухоли, в основном аденокарциномы различной степени дифференцировки. Распределение больных по стадиям представлено в табл. 2.

Таблица 2. Распределение больных по стадиям

Параметр

1-я группа

2-я группа

Стадия опухолевого процесса Т, п:

T3

23

29

T4

7

6

Стадия опухолевого процесса N, п:

N0

17

22

N1—2

13

13

Стадия опухолевого процесса M, п:

M1

2 (печень)

2 (легкие, головной мозг)

Примечание. Различия между показателями внутри строки незначимы (p>0,05).

Результаты

Анализируя сроки заживления раны в представленных группах, можно отметить, что наименьшие сроки заживления отмечены у пациентов 1-й группы: средние сроки заживления раны составили в 1-й группе 27,4 сут, во 2-й группе — 32 сут (p≤0,05).

В раннем послеоперационном периоде осложнения имели место у 4 (19%) больных 1-й группы (серома послеоперационной раны промежности у 3 больных, эвакуирована, извлечения материала не потребовалось; 1 случай нагноения, материал из раны извлечен) и у 15 (52,8%) больных 2-й группы (11 случаев нагноения послеоперационной раны, швы частично сняты; 4 случая серомы). Различия между группами по данному показателю значимы (p≤0,05).

Результаты ультразвукового исследования мягких тканей промежности. Через 6 мес после операции пациентам 1-й группы было выполнено ультразвуковое исследование мягких тканей промежности на аппарате Logiq S7 Expert линейным датчиком. Обследованы все 45 пациентов. Получены следующие результаты:

1) в 16 случаях при сканировании мягких тканей промежности в проекции ксеноперикардиальной пластины гипоэхогенных зон и эхонегативных образований на момент осмотра не выявлено (рис. 1);

Рис. 1. Мягкие ткани промежности после пластики ксеноперикардиальной пластиной «Кардиоплант».

1 — мягкие ткани промежности; 2 — ксеноперикардиальная пластина.

2) у 5 больных при сканировании мягких тканей промежности на глубине от 5—7 мм до 5—8 см от поверхности кожи в проекции ксеноперикардиальной пластины лоцируется жидкостный коллектор неправильной вытянутой формы «Д» от 1—2 мм до 2—3 см с содержимым повышенной эхогенности за счет взвеси разнородных линейных включений, с пролабирующими петлями кишечника, структура которого без особенностей (рис. 2);

Рис. 2. Мягкие ткани промежности после пластики ксеноперикардиальной пластиной.

1 — мягкие ткани промежности; 2 — ксеноперикардиальная пластина; 3 — включения; 4 — жидкостный коллектор; 5 — петли тонкого кишечника.

3) у 8 больных при сканировании мягких тканей промежности на глубине от 7—9 мм до 3—6 см от поверхности кожи лоцируется гипоэхогенная область линейной формы толщиной от 10—15 мм до 1,2—3 см с относительно однородной внутренней структурой, кзади лоцируется гипоэхогенное образование неровной округлой формы с неровными, относительно четкими контурами размерами от 3,0×2,0 см до 4,0×5,0 см и с неравномерной гетерогенной внутренней структурой (рис. 3).

Рис. 3. Мягкие ткани промежности после пластики ксеноперикардиальной пластиной.

1 — мягкие ткани промежности; 2 — ксеноперикардиальная пластина; 3 — жидкостный коллектор; 4 — петли тонкого кишечника.

Таким образом, в 16 случаях ксеноперикардиальная пластина не была визуализирована, она проросла тканями и создала каркас в области тазового дна; у 8 больных ксеноперикардиальная пластина была визуализирована, окружающие ее мягкие ткани без особенностей; в 13 случаях в проекции ксеноперикардиальной пластины определялась небольшая жидкостная зона, в некоторых случаях были визуализированы перистальтирующие петли тонкой кишки. Клинических и лабораторных признаков воспаления у больных не наблюдалось. Мягкие ткани промежности без признаков воспаления.

Результаты магнитно-резонансной томографии органов малого таза. Через 6 мес после операции была выполнена магнитно-резонансная томография (МРТ) органов малого таза. Получены следующие результаты. В 16 случаях органы малого таза без особенностей, данных за рецидив нет, определяется ксеноперикардиальная пластина. В 13 случаях определяется небольшое количество свободной жидкости. На МРТ-изображениях тазового дна каких-либо повреждений тазового дна не выявлено, признаков грыжевого выпячивания нет, нисходящей миграции кишечника, мочевого пузыря, матки, влагалища ниже лобково-копчиковой линии не выявлено. МРТ-изображение представлено на рис. 4. Полученные нами данные совпадают с данными, имеющимися в литературе по этой теме.

Рис. 4. Магнитно-резонансная томография органов малого таза у пациента с пластикой дефекта промежности ксеноперикардиальной пластиной.

1 — крестец; 2 — копчик; 3 — петли тонкого кишечника; 4 —ксеноперикардиальная пластина; 5 — мочевой пузырь; 6 — лобковая кость.

Ксеноперикардиальная пластина позволяет восстановить функциональную целостность тазового дна, что может быть четко визуализировано с помощью МРТ органов малого таза.

Обсуждение

Реконструкция тазового дна с использованием биологической сетки является более простой и быстрой манипуляцией по сравнению с реконструкцией тазового дна мышечными лоскутами. Биологические сетки абсорбируются и могут использоваться в инфицированных тканях [32, 47]. Биологическая сетка вызывает естественный клеточный рост и способствует репарации тканей. Она также может действовать как механический барьер, поддерживая тазовое содержимое (сальник, тонкую кишку, матку) и сводя к минимуму давление на кожу и ишиоректальную клетчатку по мере их заживления [54]. Биологическая сетка является альтернативой синтетической сетке. Она интегрируется в нативную ткань и менее восприимчива к инфекции [41, 47].

При всем многообразии зарубежных биоматериалов на отечественном рынке есть хорошие российские аналоги. Одна из областей их применения — онкоколопроктология. Рана промежности после брюшно-промежностной экстирпации прямой кишки — проблема каждого практикующего хирурга. Применение ксенотканей для восстановления целостности тазового дна позволит улучшить результаты лечения этой сложной категории больных.

Заключение

На данный момент на мировом рынке представлено большое количество биологических сеток, которые отличаются друг от друга по толщине, свойствам, способу децелляризации, материалу основы, прочности. Биоматериалы активно применяются во всех сферах медицины. На отечественном рынке есть аналоги ксенотканей. Предлагаемый в нашем исследовании способ пластики ксеноперикардом может быть применен для пластики промежностной раны. В группе, где применялся данный материал, наблюдается меньшее количество осложнений в послеоперационном периоде, также меньше сроки заживления. Полученные данные по отечественному материалу сопоставимы с данными, опубликованными в зарубежной литературе по импортным аналогам. Учитывая данные ультразвукового исследования и магнитно-резонансной томографии, можно предположить, что материал хорошо переносится тканями реципиента, не вызывая избыточной воспалительной реакции и рубцевания.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Баулин А.В., Середин С.А., Митрошин А.Н., Зюлькин Г.А., Баулин В.А., Баулин А.А. Разработка новых способов герниопластики. Известия высших учебных заведений. Поволжский регион. Медицинские науки. 2012;2(22):33-41. 
  2. Баулин А.В., Середин С.А., Квасов А.Е., Митрошин А.Н., Баулин В.А., Венедиктов А.А., Лембас А.Н., Никишин Д.В. Ксеноперикардиальная герниопластика: возможности и перспективы. Бюллетень медицинских Интернет-конференций. 2011;5:11-15. 
  3. Баулина О.А., Ивачев А.С., Баулин В.А., Баулин А.А. Лапароскопическая фиксация угла Гиса ксеноперикардиальной лентой в хирургии гастроэзофагеальной рефлюксной болезни. Новости хирургии. 2014; 22(2):164-170. 
  4. Башков В.А., Никольский А.В., Михеев В.В. Применение ксеноперикарда в хирургическом лечении стрессового недержания мочи. Новые задачи современной медицины: материалы II Международной научной конференции (Санкт-Петербург, май 2013 года). СПб: Реноме; 2013:33-36. 
  5. Белов Ю.В., Степаненко А.Б., Генс А.П., Белов Д.Ю. Протезирование всей аорты при ее аневризме с использованием техники «хобот слона». Ангиология и сосудистая хирургия. 2002;4:116-121. 
  6. Большая Медицинская Энциклопедия (БМЭ). Под ред. Петровского Б.В. 3-е издание, том 5. 
  7. Венедиктов А.А. Разработка биоматериалов для реконструктивной хирургии на основе ксеноперикардиальной ткани: Дисс. ... канд. мед. наук. М. 2014.
  8. Груша Я.О., Федоров А.А., Блинова И.В., Хоссейн Пур Х. Комбинированное применение биоимплантов и карботекстима-М в хирургии травматических деформаций орбиты. Вестник офтальмологии. 2008; 124(3):30-35. 
  9. Груша Я.О., Федоров А.А., Дземешкевич В.В., Блинова И.В. Клинико-морфологические особенности использования ксеноперикарда при пластике век и орбиты. Вестник офтальмологии. 2004;120(5):19-21. 
  10. Иванов П.В. Булкина Н.В. Никишин Д.В. Капралова Г.А. Гистологическая оценка эффективности применения ксеноперикардиальной пластины «Кардиоплант» в качестве резорбируемой мембраны, при лечении хронического генерализованного пародонтита. Современные проблемы науки и образования. 2013;3:158. 
  11. Иванов П.В., Капралова Г.А., Никишин Д.В., Зюлькина Л.А., Кузнецова Н.К., Игидбашян В.М. Эффективность использования пластины ксеноперикардиальной «Кардиоплант» в качестве резорбируемой мембраны при использовании метода направленной регенерации костной ткани// Современные проблемы науки и образования. 2012;1:2. 
  12. Калмин О.В., Никольский В.И., Федорова М.Г., Янгуразова Е.В., Никольский А.В. Морфологические изменения ксеноперикарда в условиях гнойно-воспалительного процесса. Известия высших учебных заведений. Поволжский регион. Медицинские науки. 2011;4(20):12-20. 
  13. Митрошин А.Н., Кибиткин А.С., Абдуллаев А.К. Результаты разработки и применения пластического биоматериала на основе ксеноперикарда для замещения дефектов сухожилия и связок. Фундаментальные исследования. 2014;4-1:109-113. 
  14. Никольский А.В., Михеев В.В. Нефропексия ксеноперикардом: первый опыт. Новые задачи современной медицины: материалы международной научной конференции. Пермь: Меркурий; 2012:75-77. 
  15. Никольский В.И., Юткина Е.Г., Янгуразова Е.В. Лапаростомия при ведении боьных панкреонекрозом. Хирургия. 2011;5(14):122-124. 
  16. Соколов Ю.Ю., Хаспеков Д.В., Топилин О.Г., Карцева Е.В., Кузнецова Е.В., Колягина Н.С., Пачес А.О. Эндохирургический доступ при различных видах диафрагмальных грыж у детей. Детская хирургия. 2015;19(4):17-19. 
  17. Abhinav K, Shaaban M, Raymond T, Oke T, Gullan R, Montgomery AC. Primary reconstruction of pelvic floor defects following sacrectomy using Permacol graft. Eur J Surg Oncol. 2009;35(4):439-443. 
  18. Barret JP, Dziewulski P, McCauley RL, Herndon DN, Desai MH. Dural reconstruction of a class IV calvarial burn with decellularized human dermis. Burns. 1999;25(5):459-462. 
  19. Buscail E, Canivet C, Shourick J, Chantalat E, Carrere N, Duffas JP, Philis A, Berard E, Buscail L, Ghouti L, Chaput B. Perineal Wound Closure Following Abdominoperineal Resection and Pelvic Exenteration for Cancer: A Systematic Review and Meta-Analysis. Cancers (Basel). 2021;13(4): 721. PMID: 33578769; PMCID: PMC7916499. https://doi.org/10.3390/cancers13040721
  20. Caviggioli F, Klinger FM, Lisa A, Maione L, Forcellini D, Vinci V, Codolini L, Klinger M. Matching biological mesh and negative pressure wound therapy in reconstructing an open abdomen defect. Case Rep Med. 2014;2014:235930. Epub 2014 Mar 19. PMID: 24778655; PMCID: PMC3977490. https://doi.org/10.1155/2014/235930
  21. Chang M, Ahn SE, Baek S. The effect and applications of acellular dermal allograft (AlloDerm) in ophthalmic plastic surgery. J Craniomaxillofac Surg. 2014;42(5):695-699. 
  22. Clark JM, Saffold SH, Israel JM. Decellularized dermal grafting in cleft palate repair. Arch Facial Plast Surg. 2003;5(1):40-44; discussion 45. PMID: 12533137. https://doi.org/10.1001/archfaci.5.1.40
  23. Connolly PT, Teubner A, Lees NP, Anderson ID, Scott NA, Carlson GL. Outcome of reconstructive surgery for intestinal fistula in the open abdomen. Ann Surg. 2008;247(3):440-444. 
  24. Cornille JB, Pathak S, Daniels IR, Smart NJ. Prophylactic mesh use during primary stoma formation to prevent parastomal hernia. Ann R Coll Surg Engl. 2017;99(1):2-11. Epub 2016 June 08. PMID: 27269439; PMCID: PMC5392779. https://doi.org/10.1308/rcsann.2016.0186
  25. Russello D, Sofia M, Conti P, Latteri S, Pesce A, Scaravilli F, Vasta F, Trombatore G, Randazzo V, Schembari E, Barchitta M, Agodi A, La Greca G. A retrospective, Italian multicenter study of complex abdominal wall defect repair with a Permacol biological mesh. Sci Rep. 2020;10(1):3367. PMID: 32099052; PMCID: PMC7042221. https://doi.org/10.1038/s41598-020-60019-0
  26. Dunn RM. Cross-linking in biomaterials: A primer for clinicians. Plast Reconstr Surg. 2012;130(5)2:18S-26S. 
  27. Fortelny RH, Hofmann A, May C, Köckerling F; BioMesh Study Group. Prevention of a Parastomal Hernia by Biological Mesh Reinforcement. Front Surg. 2015;2:53. PMID: 26557646; PMCID: PMC4614361. https://doi.org/10.3389/fsurg.2015.00053
  28. Gryskiewicz JM, Rohrich RJ, Reagan BJ. The use of alloderm for the correction of nasal contour deformities. Plast Reconstr Surg. 2001;107(2):561-570; discussion 571. PMID: 11214076. https://doi.org/10.1097/00006534-200102000-00040
  29. Logan Ellis H, Asaolu O, Nebo V, Kasem A. Biological and synthetic mesh use in breast reconstructive surgery: A literature review. World J Surg Oncol. 2016;14:121. PMID: 27102580; PMCID: PMC4839154. https://doi.org/10.1186/s12957-016-0874-9
  30. Hughes OB, Rakosi A, Macquhae F, Herskovitz I, Fox JD, Kirsner RS. A review of cellular and acellular matrix products: indications, techniques, and outcomes. Plast Reconstr Surg. 2016;138(3 Suppl):138S-147S. PMID: 27556754. https://doi.org/10.1097/PRS.0000000000002643
  31. Huntington CR, Cox TC, Blair LJ. Biologic mesh in ventral hernia repair: Outcomes, recurrence, and charge analysis. Surgery. 2016;160(6):1517-1527.
  32. Jansen LA, De Caigny P, Guay NA, Lineaweaver WC, Shokrollahi K. The evidence base for the acellular dermal matrix AlloDerm: A systematic review. Ann Plast Surg. 2013;70(5):587-594. 
  33. Köckerling F, Alam NN, Antoniou SA, Daniels IR, Famiglietti F, Fortelny RH, Heiss MM, Kallinowski F, Kyle-Leinhase I, Mayer F, Miserez M, Montgomery A, Morales-Conde S, Muysoms F, Narang SK, Petter-Puchner A, Reinpold W, Scheuerlein H, Smietanski M, Stechemesser B, Strey C, Woeste G, Smart NJ. What is the evidence for the use of biologic or biosynthetic meshes in abdominal wall reconstruction? Hernia. 2018;22(2):249-269. Epub 2018 Jan 31. PMID: 29388080; PMCID: PMC5978919. https://doi.org/10.1007/s10029-018-1735-y
  34. Komorowska-Timek E, Oberg KC, Timek TA, Gridley DS, Miles DA. The effect of AlloDerm envelopes on periprosthetic capsule formation with and without radiation. Plast Reconstr Surg. 2009;123(3):807-816. 
  35. Krpata DM, Stein SL, Eston M, Ermlich B, Blatnik JA, Novitsky YW, Rosen MJ. Outcomes of simultaneous large complex abdominal wall reconstruction and enterocutaneous fistula takedown. Am J Surg. 2013;205(3):354-358. 
  36. Petrie K, Cox CT, Becker BC, MacKay BJ. Clinical applications of acellular dermal matrices: A review. Scars Burn Heal. 2022;8:20595131211038313. PMID: 35083065; PMCID: PMC8785275. https://doi.org/10.1177/20595131211038313
  37. Mendenhall SD, Schmucker RW, Daugherty THF, Kottwitz KM, Reichensperger JD, Koirala J, Cederna PS, Neumeister MW. A Microbiological and Ultrastructural Comparison of Aseptic versus Sterile Acellular Dermal Matrix as a Reconstructive Material and a Scaffold for Stem Cell Ingrowth. Plast Reconstr Surg. 2017;140(1):97-108. PMID: 28654596. https://doi.org/10.1097/PRS.0000000000003448
  38. Mericli AF, Martin JP, Campbell CA. An algorithmic anatomical subunit approach to pelvic wound reconstruction. Plast Reconstr Surg. 2016;137(3): 1004-1017. PMID: 26910686. https://doi.org/10.1097/01.prs.0000479973.45051.b6
  39. Momoh AO, Kamat AM, Butler CE. Reconstruction of the pelvic floor with human acellular dermal matrix and omental flap following anterior pelvic exenteration. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 2010;63(12):2185-2187.
  40. Moyer H R, Pinell-White X, Losken A. The effect of radiation on acellular dermal matrix and capsule formation in breast reconstruction: clinical outcomes and histologic analysis. Plast Reconstr Surg. 2014;133(02):214-221. 
  41. Baloch N, Nordenvall C, Johansson H, Nygren J, Nilsson PJ. Perineal healing following salvage surgery for anal cancer. Colorectal Dis. 2021;23(5):1102-1108. Epub 2021 Jan 01. PMID: 33336448; PMCID: PMC8246882. https://doi.org/10.1111/codi.15496
  42. Osoria H, Jacoby A, Hooper RC, et al. Perforation of acellular dermal matrices increases the rate of cellular invasion. Plast Reconstr Surg. 2014;134 (4 Suppl 1):26. 
  43. Sancho-Muriel J, Ocaña J, Cholewa H, Nuñez J. Biological mesh reconstruction versus primary closure for preventing perineal morbidity after extralevator abdominoperineal excision: A multicentre retrospective study. Colorectal Dis. 2020;22(11):1714-1723.
  44. Scheuerlein H, Settmacher U, Lenschow M, Rauchfuss F. Complex incisional hernias. Arch Clin Gastroenterol. 2016;2(1):17-26. 
  45. Shorr N, Perry JD, Goldberg RA, Hoenig J, Shorr J. The safety and applications of acellular human dermal allograft in ophthalmic plastic and reconstructive surgery: A preliminary report. Ophthal Plast Reconstr Surg. 2000; 16(3):223-230. 
  46. Seth AK, Hirsch EM, Fine NA, Kim JY. Utility of acellular dermis-assisted breast reconstruction in the setting of radiation: A comparative analysis. Plast Reconstr Surg. 2012;130(4):750-758. 
  47. Tork S, Jefferson RC, Janis JE. Acellular Dermal Matrices: Applications in Plastic Surgery. Semin Plast Surg. 2019;33(3):173-184. Epub 2019 Aug 02. PMID: 31384233; PMCID: PMC6680075. https://doi.org/10.1055/s-0039-1693019
  48. Kalaba S, Gerhard E, Winder JS, Pauli EM, Haluck RS, Yang J. Design Strategies and Applications of Biomaterials and Devices for Hernia Repair. Bioact Mater. 2016;1(1):2-17. Epub 2016 May 30. PMID: 28349130; PMCID: PMC5365083. https://doi.org/10.1016/j.bioactmat.2016.05.002
  49. Sutton PA, Evans JP, Uzair S, Varghese JV. The use of Gore Bio-A in the management of the open abdomen. BMJ Case Rep. 2013;2013:bcr2012008064. PMID: 23440987; PMCID: PMC3603798. https://doi.org/10.1136/bcr-2012-008064
  50. Tao Y, Han JG, Wang ZJ. Comparison of perineal morbidity between biologic mesh reconstruction and primary closure following extralevator abdominoperineal excision: A systematic review and meta-analysis. Int J Colorectal Dis. 2021;36(5):893-902. Epub 2021 Jan 07. PMID: 33409565. https://doi.org/10.1007/s00384-020-03820-7
  51. Uflacker AB, Janis JE. The use of acellular dermal matrix in the correction of visible parasternal deformities after breast reconstruction. Plast Reconstr Surg. 2010;126(1):34e-36e. 
  52. Wan D, Potter JK. Biomaterials. In: Janis JE. Essentials of plastic surgery. 2nd edition. CRC Press, Boca Raton (FL). 2016:87-104. 
  53. Yurteri-Kaplan LA, Gutman RE. The use of biological materials in urogynecologic reconstruction: A systematic review. Plast Reconstr Surg. 2012;130 (5 Suppl 2):242S-253S. PMID: 23096979. https://doi.org/10.1097/PRS.0b013e31826154e4
  54. Zaheer Ahmad N, Abbas MH, Al-Naimi NMAB, Parvaiz A. Meta-analysis of biological mesh reconstruction versus primary perineal closure after abdominoperineal excision of rectal cancer. Int J Colorectal Dis. 2021;36(3): 477-492. Epub 2021. https://doi.org/10.1007/s00384-020-03827-0

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.