Выбор схемы вакцинации против ортопоксвирусных инфекций на модели мышей

Щелкунов С.Н.

ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"» Роспотребнадзора

ORCID: 0000-0002-6255-9745

Сергеев А.А.

ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"» Роспотребнадзора

ORCID: 0000-0001-8355-5551

Якубицкий С.Н.

ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"» Роспотребнадзора

ORCID: 0000-0002-0496-390X

Титова К.А.

ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"» Роспотребнадзора

ORCID: 0000-0001-8764-9408

Пьянков С.А.

ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"» Роспотребнадзора

ORCID: 0000-0002-6593-6614

Выбор схемы вакцинации против ортопоксвирусных инфекций на модели мышей

Авторы:

Щелкунов С.Н., Сергеев А.А., Якубицкий С.Н., Титова К.А., Пьянков С.А.

Подробнее об авторах

Журнал: Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2024;42(2): 45‑50

DOI: 10.17116/molgen20244202145

Прочитано: 535 раз

Связаться с автором

Оглавление

Как цитировать:

Щелкунов С.Н., Сергеев А.А., Якубицкий С.Н., Титова К.А., Пьянков С.А. Выбор схемы вакцинации против ортопоксвирусных инфекций на модели мышей. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2024;42(2):45‑50.
Shchelkunov SN, Sergeev AA, Yakubitskiy SN, Titova KA, Pyankov SA. Chioce of vaccination regimen against orthopoxvirus infections in a mouse model. Molecular Genetics, Microbiology and Virology. 2024;42(2):45‑50. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/molgen20244202145

Подписка 2025-2 (Molecular Genetics, Microbiology and Virology)

Закрыть метаданные

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ

Изучение влияния дозы и кратности иммунизации мышей линии BALB/c при внутрикожной (в/к) инъекции штамма LIVP вируса осповакцины (VACV) на уровень их защиты от высоковирулентного для мышей вируса эктромелии (ECTV).

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

Иммунизацию мышей осуществляли методом в/к инъекции при однократном или двукратном введении с интервалом 28 дней VACV LIVP в дозе 10⁵ БОЕ, а также при однократном введении в дозе 10⁶ БОЕ. В сыворотках крови, взятой у мышей прижизненно, методом ИФА определяли динамику биосинтеза VACV-специфичных IgG до 140 дня после вакцинации (дпв). На 142 дпв группы иммунизированных вирусом LIVP и контрольных животных интраназально заражали летальной дозой ECTV и фиксировали показатели клинических проявлений инфекции, массу тела животных и их гибель.

РЕЗУЛЬТАТЫ

На 28 дпв уровень антител у мышей, вакцинированных VACV LIVP в дозе 10⁶ БОЕ, достоверно превышал аналогичный уровень у мышей, вакцинированных этим же вирусом в дозе 10⁵ БОЕ. Повторная иммунизация VACV LIVP в дозе 10⁵ БОЕ на 28 дпв привела к значительному увеличению биосинтеза вирусспецифичных IgG и уровень анализируемых антител в этой группе мышей соответствовал аналогичному показателю для группы мышей, однократно вакцинированных VACV LIVP в дозе 10⁶ БОЕ. После заражения летальной дозой ECTV все животные контрольной группы (невакцинированные) погибли к 8 дню после заражения, а вакцинированные VACV LIVP однократно в дозе 10⁵ БОЕ — к 14 дню. В группах мышей, дважды вакцинированных в дозе 10⁵ БОЕ и однократно в дозе 10⁶ БОЕ, выжило по 80% особей.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Для сохранения долговременного протективного иммунного ответа на вакцинацию живым VACV необходимо применять высокую дозу этого вируса. Альтернативно можно использовать меньшую вакцинирующую дозу, но в этом случае следует осуществлять ревакцинацию.

Ключевые слова:

ортопоксвирусы

вирус осповакцины

иммунизация

антитела

протективный иммунный ответ

Авторы:

Щелкунов С.Н.

ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"» Роспотребнадзора

ORCID: 0000-0002-6255-9745

Сергеев А.А.

ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"» Роспотребнадзора

ORCID: 0000-0001-8355-5551

Якубицкий С.Н.

ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"» Роспотребнадзора

ORCID: 0000-0002-0496-390X

Титова К.А.

ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"» Роспотребнадзора

ORCID: 0000-0001-8764-9408

Пьянков С.А.

ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"» Роспотребнадзора

ORCID: 0000-0002-6593-6614

Дата поступления:

18.10.2023

Дата принятия в печать:

15.01.2024

Список литературы:

Fenner F, Henderson DA, Arita I, Jezek Z, Ladnyi ID. Smallpox and Its Eradication; World Health Organization: Geneva, Switzerlands, 1988.
Shchelkunov SN. An increasing danger of zoonotic orthopoxvirus infections. PLoS Pathog. 2013;9:e1003756. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1003756
Shchelkunova GA, Shchelkunov SN. Smallpox, monkeypox and other human orthopoxvirus infections. Viruses. 2023;5:103. https://doi.org/10.3390/v15010103
Shchelkunov SN, Marennikova SS, Moyer RW. Orthopoxviruses Pathogenic for Humans; Springer: New York, NY, USA; 2005.
Jezek Z, Fenner F. Human monkeypox. In: Monographs in Virology; Karger: Basel, Switzerland; 1988;14:1-140.
Likos AM, Sammons SA, Olson VA, Frace AM, Li Y, Olsen-Rasmussen M, et al. A tale of two clades: Monkeypox viruses. J Gen Virol. 2005;86:2661-2672. https://doi.org/10.1099/vir.0.81215-0
Gigante CM, Korber B, Seabolt MH, Wilkins K, Davidson W, Rao AK, et al. Multiple lineages of monkeypox virus detected in the United States, 2021—2022. Science. 2022;378:560-565. https://doi.org/10.1126/science.add4153
Hutson CL, Self J, Weiss S, Carroll DS, Hughes CM, Braden ZH, et al. Dosage comparison of Congo Basin and West African strains of monkeypox virus using a prairie dog animal model of systemic orthopox disease. Virology. 2010;402:72-82. https://doi.org/10.1016/j.virol.2010.03.012
Hutson CL, Gallardo-Romero NF, Carroll DS, Clemmons C, Salzer JS, Nagy T, et al. Transmissibility of the monkeypox virus clades via respiratory transmission: Investigation using the prairie dog-monkeypox virus challenge system. PLoS ONE. 2013;8:e55488. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0055488
Hutson CL, Carroll DS, Gallardo-Romero N, Drew C, Zaki SR, Nagy T, et al. Comparison of monkeypox virus clade kinetics and pathology within the prairie dog animal model using a serial sacrifice study design. BioMed Res Int. 2015;2015:965710. https://doi.org/10.1155/2015/965710
Rimoin AW, Mulembakani PM, Johnston SC, Lloyd Smith JO, Kisalu NK, Kinkela TL, et al. Major increase in human monkeypox incidence 30 years after smallpox vaccination campaigns cease in the Democratic Republic of Congo. Proc Natl Acad Sci USA. 2010;107:16262-16267. https://doi.org/10.1073/pnas.1005769107
Reynolds MG, Doty JB, McCollum AM, Olson VA, Nakazawa Y. Monkeypox re-emergence in Africa: A call to expand the concept and practice of One Health. Expert Rev Anti Infect Ther. 2019;17:129-139. https://doi.org/10.1080/14787210.2019.1567330
Kabuga AI, El Zowalaty ME. A review of the monkeypox virus and a recent outbreak of skin rash disease in Nigeria. J Med Virol. 2019;91:533-540. https://doi.org/10.1002/jmv.25348
Alakunle E, Moens U, Nchinda G, Okeke MI. Monkeypox virus in Nigeria: Infection biology, epidemiology, and evolution. Viruses. 2020;12:1257. https://doi.org/10.3390/v12111257
WHO. Monkeypox. Geneva, Switzerland. https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/monkeypox.
Erez N, Achdout H, Milrot E, Schwartz Y, Wiener-Well Y, Paran N, et al. Diagnosis of imported monkeypox, Israel, 2018. Emerg Infect Dis. 2019;25:980-983. https://doi.org/10.3201/eid2505.190076
Holloway IW. Lessons for community-based scale-up of monkeypox vaccination from previous disease outbreaks among gay, bisexual, and other men who have sex with men in the United States. Amer J Public Health. 2022;112:1572-1575. https://doi.org/10.2105/AJPH.2022.307075
Zhu M, Ji J, Shi D, Lu X, Wang B, Wu N, et al. Unusual global outbreak of monkeypox: What should we do? Front Med. 2022;16:507-517. https://doi.org/10.1007/s11684-022-0952-z
Centers for Disease Control and Prevention (CDC). 2022 Monkeypox Outbreak Global Map. https://www.cdc.gov/poxvirus/monkeypox/response/2022/world-map.html
Sanchez-Sampedro L, Perdiguero B, Mejias-Perez E, Garcia-Arriaza J, Di Pilato M, Esteban M. The evolution of poxvirus vaccines. Viruses. 2015;7:1726-1803. https://doi.org/10.3390/v7041726
Shchelkunov SN, Sergeev AA, Titova KA, Pyankov SA, Starostina EV, Borgoyakova MB, et al. Comparison of the effectiveness of transepidemal and intradermal immunization of mice with the vacinia virus. Acta Naturae. 2022;14:111-118. https://doi.org/10.32607/actanaturae.11857
Yakubitskiy SN, Kolosova IV, Maksyutov RA, Shchelkunov SN. Attenuation of vaccinia virus. Acta Naturae. 2015;7:113-121. https://doi.org/10.32607/20758251-2015-7-4-113-121
Shchelkunov SN, Yakubitskiy SN, Sergeev AA, Starostina EV, Titova KA, Pyankov SA, et al. Enhancing the immunogenicity of vaccinia virus. Viruses. 2022;14:1453. https://doi.org/10.3390/v14071453
Shchelkunov SN, Yakubitskiy SN, Sergeev AA, Kabanov AS, Bauer TV, Bulychev LE, et al. Effect of the route of administration of the vaccinia virus strain LIVP to mice on its virulence and immunogenicity. Viruses. 2020;12:795. https://doi.org/10.3390/v12080795
Sachs L. Statistische Auswertungsmethoden; Springer: Heidelberg, Germany; 1972;193.
Shchelkunov S.N., Sergeev A.A., Pyankov S.A., Titova K.A., Yakubitskiy S.N. Smallpox vaccination in a mouse model. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2023;27(6):712-718. https://doi.org/10.18699/VJGB-23-82
Ferrier-Rembert A., Drillien R., Tournier J.-N., Garin D., Crance J.-M. Intranasal cowpox virus infection of the mouse as a model for preclinical evaluation of smallpox vaccines. Vaccine. 2007;25:4809-4817. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2007.04.011
Moss B. Smallpox vaccines: targets of protective immunity. Immunol. Rev. 2011;239:8-26. https://doi.org/10.1111/j.1600-065X.2010.00975.x

Закрыть метаданные