Лабораторная диагностика нейросифилиса: пути оптимизации. Часть II. Современные подходы и биомаркеры

Потекаев Н.Н.

ГБУЗ Москвы «Московский научно-практический центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения г. Москвы»;
ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

ORCID: 0000-0002-9578-5490

Фриго Н.В.

ГБУЗ Москвы «Московский научно-практический центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения г. Москвы»;
МБУ ИНО ФГБУ «Государственный научный центр Российской Федерации — Федеральный медицинский биофизический центр им. А.И. Бурназяна» Федерального медико-биологического агентства России

ORCID: 0000-0001-6231-971X

Дмитриев Г.А.

ГБУЗ Москвы «Московский научно-практический центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения г. Москвы»;
ФБУН «Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского» Роспотребнадзора

ORCID: 0000-0002-4440-9516

Китаева Н.В.

ГБУЗ Москвы «Московский научно-практический центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения г. Москвы»

ORCID: 0000-0002-3620-2494

Доля О.В.

ГБУЗ Москвы «Московский научно-практический центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения г. Москвы»;
ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов им. Патриса Лумумбы» Минобрнауки России

ORCID: 0000-0001-5019-4593

Махновская Т.С.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов им. Патриса Лумумбы» Минобрнауки России

ORCID: 0000-0002-1928-4029

Жданович А.В.

ЗАО «Эколаб»

ORCID: 0000-0001-5131-1501

Лабораторная диагностика нейросифилиса: пути оптимизации. Часть II. Современные подходы и биомаркеры

Авторы:

Потекаев Н.Н., Фриго Н.В., Дмитриев Г.А., Китаева Н.В., Доля О.В., Махновская Т.С., Жданович А.В.

Подробнее об авторах

Журнал: Клиническая дерматология и венерология. 2024;23(1): 28‑36

DOI: 10.17116/klinderma20242301128

Загрузок: 3

Связаться с автором

Оглавление

Как цитировать:

Потекаев Н.Н., Фриго Н.В., Дмитриев Г.А., Китаева Н.В., Доля О.В., Махновская Т.С., Жданович А.В. Лабораторная диагностика нейросифилиса: пути оптимизации. Часть II. Современные подходы и биомаркеры. Клиническая дерматология и венерология. 2024;23(1):28‑36.
Potekaev NN, Frigo NV, Dmitriev GA, Kitaeva NV, Dolya OV, Mahnovskaya TS, Zhdanovich AV. Laboratory diagnosis of neurosyphilis: optimization ways. Part II. Current approaches and biomarkers. Russian Journal of Clinical Dermatology and Venereology. 2024;23(1):28‑36. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/klinderma20242301128

Доказательная гастроэнтерология: pro et contra

Актуальные вопросы педиатрической практики

Использование инфографики авторами научных работ

Закрыть метаданные

Рекомендуем статьи по данной теме:

Возможности оценки инволюционных изменений кожи в эстетической медицине. Роль ультразвуковой диагностики. Клиническая дерматология и венерология. 2023;(1):92-98

Исследование антител к окисленным липопротеинам низкой плотности у больных сифилисом. Клиническая дерматология и венерология. 2023;(2):153-160

Результаты исследования биомаркеров интратекального гуморального иммунного ответа при сифилисе. Клиническая дерматология и венерология. 2023;(2):173-180

Плейоморфизм цитокинового профиля в ткани полипов в зависимости от фенотипа полипозного риносинусита. Вестник оториноларингологии. 2023;(1):50-56

Хронический верхнечелюстной ателектаз, или синдром молчащего синуса. Российская ринология. 2023;(1):60-65

Диагностика и лечение неврологических орофациальных болевых синдромов. Российский журнал боли. 2023;(1):5-12

Спектральный анализ ротовой жидкости пациентов с хроническими формами нарушения мозгового кровообращения. Российская стоматология. 2023;(1):3-6

Особенности взаимосвязи субпопуляционного состава и содержания цитокинов в периферической крови и перитонеальной жидкости женщин с эндометриозом. Проблемы репродукции. 2023;(1):19-32

Десятилетний опыт диагностики и лечения закрытых травм поджелудочной железы. Эндоскопическая хирургия. 2023;(2):34-38

Патология эндометрия и клинико-диагностическое значение гликоделина. Российский вестник акушера-гинеколога. 2023;(2):53-62

В Российской Федерации в последние десятилетия, по официальным статистическим данным, на фоне снижения общей заболеваемости сифилисом отмечено увеличение удельного веса нейросифилиса (НС) — тяжелой формы инфекции, лабораторная диагностика которой представляет затруднения. Проанализированы данные литературы, касающиеся использования современных подходов и новых биомаркеров, предлагаемых для применения в ликвородиагностике НС. В современной ликвородиагностике НС большие надежды возлагаются на применение показателей (индексов), определяющих наличие интратекального синтеза антител к T. pallidum, а также на разработку и внедрение в практику иммуночипов, определяющих антитела к наиболее иммуногенным рекомбинантным белкам T. pallidum. В сложных для диагностики случаях может быть использована прямая детекция T. pallidum методом метагеномного секвенирования нового поколения. Совокупность применяемых показателей может быть оценена путем применения многомерного дискриминантного анализа. Потенциальными маркерами оценки активности иммунопатологического процесса при НС могут явиться неспецифические молекулярные индикаторы изменений ЦНС, в том числе белки, цитокины, хемокины, нейрофиламенты, а также метаболомные профили цереброспинальной жидкости.

Ключевые слова:

нейросифилис

диагностика

индексы интратекального синтеза антител

иммуночипы

многомерный дискриминантный анализ

хемокины

цитокины

нейрофиламенты

белки

метаболом

метагеномное секвенирование

Авторы:

Потекаев Н.Н.

ORCID: 0000-0002-9578-5490

Фриго Н.В.

ORCID: 0000-0001-6231-971X

Дмитриев Г.А.

ORCID: 0000-0002-4440-9516

Китаева Н.В.

ORCID: 0000-0002-3620-2494

Доля О.В.

ORCID: 0000-0001-5019-4593

Махновская Т.С.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов им. Патриса Лумумбы» Минобрнауки России

ORCID: 0000-0002-1928-4029

Жданович А.В.

ЗАО «Эколаб»

ORCID: 0000-0001-5131-1501

Дата поступления:

19.06.2023

Дата принятия в печать:

16.11.2023

Список литературы:

Gu W, Miller S, Chiu CY. Clinical metagenomic next-generation sequencing for pathogen detection. Annu Rev Pathol. 2019;14:319-338. https://doi.org/10.1146/annurev-pathmechdis-012418-012751
Wilson MR, Sample HA, Zorn KC, et al. Clinical metagenomic sequencing for diagnosis of meningitis and encephalitis. N Engl J Med. 2019;380(24): 2327-2340. https://doi.org/10.1056/NEJMoa1803396
Liu C, Zhang Y, Li Y, Bu H, Liu R, Ji Y, He J. Hong K. Neurosyphilis with a rare magnetic resonance imaging pattern confirmed by metagenomic next-generation sequencing: a case report. Eur J Med Res. 2022;27(1):49. https://doi.org/10.1186/s40001-022-00676-1
Müller F, Moskophidis S. Estimation of the local production of antibodies to Treponema pallidum in the central nervous system of patients with neurosyphilis. Br J Vener Dis. 1983;59(2):80-84.
Prange HW, Moskophidis M, Schipper HI, Müller F. Relationship between neurological features and intrathecal synthesis of IgG antibodies to Treponema pallidum in untreated and treated human neurosyphilis. J Neurol. 1983;230(4):241-252.
Дмитриев Г.А. Нейросифилис: проблемы и решения. М. 2016.
Негашева Е.С. Новые подходы и алгоритмы в лабораторной диагностике нейросифилиса: Дис. ... канд. мед. наук. М. 2019.
Клинические рекомендации Сифилис. 2020. Ссылка активна на 12.05.23. https://cr.minzdrav.gov.ru/recomend/197_1
Лукьянов А.М. Нейросифилис: современные аспекты клиники, диагностики, терапии. Минск. 2009.
Stockli HR. Neurosyphilis heute. Dermatologica. 1982;165:232-248.
Muller F, Moscophidis M. Estimation of the local production of antibodies to T. pallidum in the central nervous system of patients with neurosyphilis. Br J Vener Dis. 1983;2(59):80-84.
Luger AF, Schmidt BL, Kaulich M. Significance of laboratory findings for the diagnosis of neurosyphilis. Int J STD AIDS. 2000;11(4):224-234.
Poek K. Neurologie. 9th ed. Berlin: Springer; 1994.
Дмитриев Г.А., Доля О.В., Андрющенко А.В., Кулешов А.Н. Нейросифилис: оптимизация лабораторных методов диагностики и тактики ведения пациентов. Дерматология. Приложение к журналу CONSILIUM MEDICUM. 2014;4:28-31.
Levchik N, Ponomareva M, Surganova V, Zilberberg N, Kungurov N. Criteria for the diagnosis of neurosyphilis in cerebrospinal fluid: relationships with intrathecal immunoglobulin synthesis and blood-cerebrospinal fluid barrier dysfunction. Sex Transm Dis. 2013;40(12):917-922. https://doi.org/10.1097/OLQ.0000000000000049
Шпилевая М.В., Рунина А.В., Филиппова М.А., Кубанов А.А. Сравнение иммуночипов для диагностики сифилиса, выполненных по технологии сополимеризационной иммобилизации и методом бесконтактной печати. Клиническая лабораторная диагностика. 2020;1(65): 16-23.
Чеканова Т.А., Маркелов М.Л., Манзелюк И.Н., Сперанская А.С., Шишова А.В., Алексеева Ю.А., Судьина А.Е., Браславская С.И., Шипулин Г.А. Разработка иммуночипа для раздельной детекции антител к вирусу гепатита С. Клиническая лабораторная диагностика. 2008; 6:25-30.
Молочков В.А., Чеканова Т.А., Маркелов М.Л., Карань Л.С., Снарская Е.С., Ромашкина А.С. Выявление боррелиозной инфекции с помощью инновационной тест-системы в формате иммуночипа при склероатрофических поражениях кожи. Рос. журнал кожных и венерических болезней. 2012;2:32-35.
Потекаев Н.Н., Фриго Н.В., Ротанов С.В. Диагностика сифилиса: от Вассермана до наших дней. Владимир. 2018.
Wang Y, Gao W, Wang H, Luo Y. Preparation of a visual protein chip for detection of IgG against Treponema pallidum. Molecular biotechnology. 2005; 31(2):121-128. https://doi.org/10.1385/MB:31:2:121
Смердова М.А., Маркелов М.Л., Гущин А.Е., Судьина А.Е., Шишова А.В., Шипулин Г.А. Разработка экспериментальной тест-системы на основе иммуночипа для серодиагностики сифилиса. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2008;6:54-58.
Huang NL, YeL, Schneider ME, Du YX, Xu YH, Fan LB, Du WD. Development of a novel protein biochip enabling validation of immunological assays and detection of serum IgG and IgM antibodies against Treponema pallidum pathogens in the patients with syphilis. Biosensors and Bioelectronics. 2016;75:465-471.
Рунина А.В., Катунин Г. Л., Филиппова М.А., Затевалов А.М., Кубанов А.А., Дерябин Д.Г. Иммуночип для серологической диагностики сифилиса с использованием расширенной панели рекомбинантных антигенов Treponema pallidum. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2018;165(6):726-731.
Рунина А. Новые рекомбинантные белки — антигены T. pallidum для серологической диагностики сифилиса: Дис. ... канд. биол. наук. 2021.
Потекаев Н.Н., Негашева Е.С., Савинов Г.В., Стуколова О.А., Карасева И.П., Судьина А.Е. Маркелов М.Л., Шипулин Г.А., Дмитриев Г.А, Фриго Н.В. Эффективность современных методов диагностики нейросифилиса. Возможности и перспективы применения VDRL и иммуночипов. Клиническая дерматология и венерология. 2016;6:11-21. https://doi.org/10.17116/klinderma201615611-21
Потекаев Н.Н., Негашева Е.С., Жукова О.В., Фриго Н.В., Негашева М.А., Дмитриев Г.А., Китаева Н.В. Использование многомерного дискриминантного анализа в диагностике нейросифилиса. Клин дерматол и венерол. 2019;18(1):18-26. https://doi.org/10.17116/klinderma20191801118
Способ диагностики нейросифилиса: Патент РФ на изобретение №2699057. Опубликовано 03.09.19. Бюл. №25. Сссылка активна на 23.05.23. https://www1.fips.ru/registers-doc-view/fips_servlet
Marra CM, Tantalo LC, Sahi SK, Maxwell CL, Lukehart SA. CXCL13 as a cerebrospinal fluid marker for neurosyphilis in HIV-infected patients with syphilis. Sex Transm Dis. 2010;37(5):283-287. https://doi.org/10.1097/OLQ.0b013e3181d877a1
Mothapo KM, Verbeek MM, van der Velden LB, Ang CW, Koopmans PP, van der Ven A, Stelma F Has CXCL13 an added value in diagnosis of neurosyphilis? J Clin Microbiol. 2015;53(5):1693-1696. https://doi.org/10.1128/JCM.02917-14
Gudowska-Sawczuk M, Mroczko B. Chemokine Ligand 13 (CXCL13) in Neuroborreliosis and Neurosyphilis as Selected Spirochetal Neurological Diseases: A Review of Its Diagnostic Significance. Int J Mol Sci. 2020; 21(8):2927.
Masouris I, Klein M, Ködel U. The potential for CXCL13 in CSF as a differential diagnostic tool in central nervous system infection. Expert Rev Anti Infect Ther. 2020;18(9):875-885.
Hu R, Lu C, Lu S, Hu Y, Ma H, Lai W, Zhu G, Feng P, Lu R, Li Y. Value of CXCL13 in diagnosing asymptomatic neurosyphilis in HIV-infected patients. Int J STD AIDS. 2016;27(2):141-146. https://doi.org/10.1177/0956462415577229
Yongxing Yan, Jun Wang, Bin Qu, Yan Zhang, Yingnan Wei, Huili Liu, Chunli Wu CXCL13 and TH1/Th2 cytokines in the serum and cerebrospinal fluid of neurosyphilis patients. Medicine (Baltimore). 2017;96(47):e8850. https://doi.org/10.1097/MD.0000000000008850
Xiao-Yun Yu, Ning Yan, Zi-Hai Li, Wei Chen, Yun-Hui Hua, Yan Lu. Expressions of CXCL8, CXCL10 and Th1/Th2 cytokines in the serum and cerebrospinal fluid of patients with neurosyphilis. Zhonghua Nan Ke Xue. 2020; 26(4):335-340.
Li W, Wu W, Chang H, Jiang M, Gao J, Xu Y, Xu D, Yin L, Zhang X. Cerebrospinal fluid cytokines in patients with neurosyphilis: the significance of interleukin-10 for the disease. Biomed Res Int. 2020;2020:3812671. https://doi.org/10.1155/2020/3812671
Novikov YA, Ochlopkov VA, Indutny AV, Kravchenko EN. Interleukins — 23, -12p40 as markers of neural tissue damage in neurosyphilis. Klin Lab Diagn. 2019;64(2):94-97.
Wang C, Zhu L, Gao Z, Guan Z, Lu H, Shi M, Gao Y, Xu H, Yang XF, Zhou P. Increased interleukin-17 in peripheral blood and cerebrospinal fluid of neurosyphilis patients. PLoS Negl Trop Dis. 2014;8(7):e3004. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0003004
Shen Y, Dong X, Liu J, Lv H, Ge Y. Serum Interleukin-26 is a Potential Biomarker for the Differential Diagnosis of Neurosyphilis and Syphilis at Other Stages. Infect Drug Resist. 2022;15:3693-3702.
Li XX, Zhang J, Wang ZY, Chen SQ, Zhou WF, Wang TT, Man XY, Zheng M. Increased CCL24 and CXCL7 levels in the cerebrospinal fluid of patients with neurosyphilis. J Clin Lab Anal. 2020;34(9):e23366.
Pastuszczak M, Jakiela B, Wielowieyska-Szybinska D, Jaworek AK, Zeman J, Wojas-Pelc A. Elevated cerebrospinal fluid interleukin-17A and interferon-γ levels in early asymptomatic neurosyphilis. Sex Transm Dis. 2013;40(10):808-812. https://doi.org/10.1097/OLQ.0000000000000024
Lin L-R, Lin D-H, Tong M-L, Liu L-L, Fan J-Y, Zhu X-Z, Gao K, Chen M-J, Zheg W-H, Zhang H-L, Li S-L, Lin H-L, Lin Z-F, Niu J-J, Yang T-C. Macrophage migration inhibitory factor as a novel cerebrospinal fluid marker for neurosyphilis among HIV-negative patients. Clinica Chimica Acta. 2016;463:103-108. https://doi.org/10.1016/j.cca.2016.10.018
Paraskevas GP, Kapaki E, Kararizou E, Mitsonis C, Sfagos C, Vassilopoulos D. Cerebrospinal fluid tau protein is increased in neurosyphilis: a discrimination from syphilis without nervous system involvement? Sex Transm Dis. 2007;34:220-223. https://doi.org/10.1097/01.olq.0000233738.23278.4e
Способ диагностики нейросифилиса: Патент РФ на изобретение №2230323. Опубликовано: 10.06.04. Бюл. №16. Ссылка активна на 23.05.23. https://www1.fips.ru/registers-doc-view/fips_servlet
Svatoňová J, Bořecká K, Adam P, Lánská V. Beta2-Microglobulin as a Diagnostic Marker in Cerebrospinal Fluid: A Follow-Up Study. Disease Markers. 2014;2014:495402. https://doi.org/10.1155/2014/495402
Tagarro A, Garcıa-Alix A, Alarcon A, Hernanz A, Quero J. Congenital syphilis: β2-microglobulin in cerebrospinal fluid and diagnosis of neurosyphilis in an affected newborn. Journal of Perinatal Medicine. 2005;33(1):79-82.
Priller C, Bauer T, Mitteregger G, Krebs B, Kretzschmar HA, Herms J. Synapse Formation and Function Is Modulated by the Amyloid Precursor Protein. Journal of Neuroscience. 2006;26(27):7212-7221. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.1450-06.2006
Turner PR, O’Connor K, Tate WP, Abraham WC. Roles of amyloid precursor protein and its fragments in regulating neural activity, plasticity and memory. Prog Neurobiol. 2003;70(1):1-32. https://doi.org/10.1016/s0301-0082(03)00089-3
Zhang M, Zhong X, Shi H, Vanmechelen E, De Vos A, Liu S, Chen B, Mai N, Peng Q, Chen C, Wu Z, Hou L, Zhou H, Ouyang C, Zhang W, Liang W, Dai C, Ning Y. BACE1 and other alzheimer’s-related biomarkers in cerebrospinal fluid and plasma distinguish alzheimer’s disease patients from cognitively-impaired neurosyphilis patients. J Alzheimers Dis. 2020;77(1):313-322.
Li W, Chang H, Wu W, Xu D, Jiang M, Gao J, Huang Y, Xu Y, Yin L, Zhang X. Increased CSF soluble TREM2 concentration in patients with neurosyphilis. Front Neurol. 2020;11:62. https://doi.org/10.3389/fneur.2020.00062
Xu D-M, Cai S-N, Li R, Wu Y, Liu S-A, Lun W-H. Elevation of Cerebrospinal Fluid Light and Heavy Neurofilament Levels in Symptomatic Neurosyphilis. Sex Transm Dis. 2020;47(9):634-638. https://doi.org/10.1097/OLQ.0000000000001236
Li-Li Liu, Yong Lin, Wei Chen, Man-Li Tong, Xi Luo, Li-Rong Lin, Hui-Lin Zhang, Jiang-Hua Yan, Jian-Jun Niu, Tian-Ci Yang. Metabolite Profiles of the Cerebrospinal Fluid in Neurosyphilis Patients Determined by Untargeted Metabolomics Analysis. Front Neurosci. 2019;13:150. https://doi.org/10.3389/fnins.2019.00150
Qi S, Xu Y, Luo R, Li P, Huang Z, Huang S, Nie T, Zhang Q, Li Q. Novel Biochemical Insights in the Cerebrospinal Fluid of Patients with Neurosyphilis Based on a Metabonomics Study. J Mol Neurosci. 2019;69(1):39-48. https://doi.org/10.1007/s12031-019-01320-0
Способ диагностики изменений центральной нервной системы при сифилисе: Патент РФ на изобретение №2315303. Опубликовано 29.11.06. Бюл. №24. Ссылка активна на 23.05.23. https://www1.fips.ru/registers-doc-view/fips_servlet

Закрыть метаданные