Диагностика инфекций, передаваемых половым путем. Реальность и перспективы

Закрыть метаданные

Рекомендуем статьи по данной теме:

Эпидемиология и клиническое значение экстрагенитальных форм инфекций, передаваемых половым путем, у женщин. Клиническая дерматология и венерология. 2023;(3):236-243

Эпидемиология и факторы, влияющие на частоту выявления инфекций, передаваемых половым путем. Клиническая дерматология и венерология. 2023;(4):375-381

Лабораторная диагностика «ключевых» инфекций, передаваемых половым путем (обзор литературы). Часть I. Клиническая дерматология и венерология. 2023;(6):643-650

Клинико-эпидемиологические особенности инфекций, передаваемых половым путем, локализующихся в полости рта. Клиническая дерматология и венерология. 2023;(6):725-732

Анализ содержания острофазовых белков и провоспалительных цитокинов в сыворотке крови беременных с хламидийной инфекцией. Российский вестник акушера-гинеколога. 2023;(6):5-11

Своевременное выявление инфекций, передаваемых половым путем (ИППП), и адекватное лечение — актуальные задачи здравоохранения. Среди невирусных ИППП наибольшее значение имеют N. gonorrhoeae, C. trachomatis, T. vaginalis и M. genitalium. С 1990-х годов в лабораторной диагностике ИППП осуществлен прорыв — впервые начали использовать высокочувствительный и специфичный метод амплификации нуклеиновых кислот (ПЦР) для идентификации патогенных организмов мочеполового тракта. С учетом общности путей передачи возможно одновременное инфицирование несколькими возбудителями ИППП. В настоящее время внедрение новых организационных форм тестирования на ИППП в сочетании с традиционными может обеспечить более быструю и эффективную диагностику ИППП. Для оптимизации выявления ИППП среди населения актуален вопрос о массовом внедрении инновационных методов получения биологического материала в сочетании с современными методами лабораторной диагностики ИППП. В мировой практике наравне со стандартными методиками успешно используется самостоятельное получение, например, мочи у мужчин или биологического материала влагалища у женщин для тестирования на ИППП. Собранные пациентками образцы влагалищного отделяемого эквивалентны по чувствительности и специфичности образцам, полученным в клинических условиях. Эта стратегия скрининга весьма приемлема для женщин, о чем свидетельствуют научные исследования, проведенные во многих странах мира. В Российской Федерации вопрос о клиническом значении неинвазивных методов получения биологического материала (самозабор) для выявления возбудителей ИППП не изучен.

Ключевые слова:

ИППП

обследование на ИППП

заболеваемость ИППП

гонококковая инфекция

трихомонадная инфекция

хламидийная инфекция

M.genitalium-инфекция

самозабор биологического материала

Авторы:

Кисина В.И.

ГБУЗ «Московский научно-практический Центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения г. Москвы»

ORCID: 0000-0002-3761-9400

Анохина Л.С.

ORCID: 0000-0001-9004-9761

Романова И.В.

ORCID: 0000-0001-9702-4655

Гущин А.Е.

ORCID: 0000-0002-0399-1167

Дата поступления:

06.09.2022

Дата принятия в печать:

14.07.2023

Список литературы:

Banerjee P, Thorley N, Radcliffe K. A service evaluation comparing home-based testing to clinic-based testing for Chlamydia and gonorrhoea in Birmingham and Solihull. International Journal of STD & AIDS. 2018;29(10): 974-979. https://doi.org/10.1177/0956462418767180
World Health Organization. Global Health Sector Strategy on Sexually Transmitted Infections, 2016—2021. Accessed Aug 25, 2022. https://www.who.int/reproductivehealth/publications/rtis/ghss-stis/en/
Потекаев Н.Н., Кисина В.И., Гущин А.Е., Новожилова О.Л., Фриго Н.В., Головешкина Е.Н., Ходырева Л.А. Современные проблемы по организации выявления и регистрации гонококковой инфекции в Москве. Клиническая дерматология и венерология. 2019;18(6):668-674. https://doi.org/10.17116/klinderma201918061668
Gaydos CA, Cartwright CP, Colaninno P, Welsch J, Holden J, Ho SY, et al. Performance of the Abbott RealTime CT/NG for detection of Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae. J Clin Microbiol. 2010;48:3236-3243. https://doi.org/10.1128/JCM.01019-10
Потекаев Н.Н. Принципы профилактики инфекций, передаваемых половым путем, среди молодежи города Москвы. Методические рекомендации №91 от 2019 г.
Кубанова А.А. Ресурсы и деятельность медицинских организаций дерматовенерологического профиля в Российской Федерации в 2013 году. Вестник дерматологии и венерологии. 2014;3:16-36. https://doi.org/10.25208/0042-4609-2014-90-3-16-36
Кулаков В.И., Прилепская В.Н. Практическая гинекология. Клинические лекции М.: МЕДпресс-информ; 2006.
Sereina AH, Christian LA, Jannere CM. Timing of progression from Chlamydia trachomatis infection to pelvic inflammatory disease: a mathematical modeling study. BMS Infect Dis. 2012;12:187. https://doi.org/10.1186/1471-2334-12-187
Пестрикова Т.Ю., Юрасов И.В., Юрасова Е.А. Современный взгляд на клиническое течение, диагностику и лечение воспалительных заболеваний органов малого таза у женщин. Российский вестник акушера-гинеколога. 2015;15(4):23-28. https://doi.org/10.17116/rosakush201515423-28
Price MJ, Ades AE, De Angelis D, et al. Risk of pelvic inflammatory disease following Chlamydia trachomatis infection: analysis of prospective studies with a multistate model. Am J Epidemiol. 2013;178(3):484-492. https://doi.org/10.1093/aje/kws583
Risser WL, Risser JM, Benjamins LJ. Pelvic inflammatory disease in adolescents between the time of testing and treatment and after treatment for gonorrhoeal and chlamydial infection. Int J STD AIDS. 2012;23(7):457-458. https://doi.org/10.1258/ijsa.2011.011362
Tsevat DG, Wiesenfeld HC, Parks C, Peipert JF. Sexually transmitted diseases and infertility. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 2017; 216(1):1-9. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2016.08.008
Holland SM, Gaydos CA, Quinn TC: Detection and differentiation of Chlamydia trachomatis, C. psittaci, and C. pneumoniae by DNA amplification. J Infect Dis. 1990;162:984-987. https://doi.org/10.1093/infdis/162.4.984
Jaschek G, Gaydos C, Welsh L, Quinn TC: Direct detection of Chlamydia trachomatis in urine specimens from syptomatic and asymptomatic men by using a rpid polymerase chain reaction assay. J Clin Microbiol. 1993;31: 1209-1212. https://doi.org/10.1128/jcm.31.5.1209-1212.1993
Polaneczky M, Quigley C, Pollock L, et al. Use of self-collected vaginal specimens for detection of Chlamydia trachomatis infection. Obstet Gynecol. 1998;91:375-378. https://doi.org/10.1016/s0029-7844(97)00674-1
Гущин А.Е., Кисина В.И., Хайруллина Г.А. Современный взгляд на проблемы диагностики и лечения моно- и микстинфекций, передаваемых половым путем. Клиническая дерматология и венерология. 2015;3:85-93. https://doi.org/10.17116/klinderma201514385-93
Дмитрюкова М.Ю., Сенина М.Е., Суровцев В.В., Гущин А.Е. Диагностика патогенных возбудителей микробиоты влагалища методом количественной ПЦР в реальном времени. Трудный пациент. 2019;8-9:7-9. https://doi.org/10.24411/2074-1995-2019-10054
Гущин А.Е., Рыжих П.Г., Савочкина Ю.А., Шипулина О.Ю., Шипулин Г.А. Изучение распространенности возбудителей ИППП (C. trachomatis, N. gonorrhoeae, M. genitalium, T. vaginalis) с помощью ПЦР в реальном времени в формате «МУЛЬТИПРАЙМ». Клиническая дерматология и венерология. 2011;9(4):90-93.
Rumyantseva T, Golparian D, Nilsson CS, Johansson E, Falk M, Fredlund H, Unemo M. Evaluation of the new AmpliSens multiplex real-time PCR assay for simultaneous detection of Neisseria gonorrhoeae, Chlamydia trachomatis, Mycoplasma genitalium, and Trichomonas vaginalis. APMIS. 2015;123(10):879-886. https://doi.org/10.1111/apm.12430
Инструкция по применению набора реагентов для определения ДНК Neisseria gonorrhoeae, Chlamydia trachomatis, Mycoplasma genitalium и Trichomonas vaginalis методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) для диагностики in vitro «АмплиПрайм NCMT. 2015.
Australasian Sexual Health Alliance 2018. Australian STI Management Guidelines. Accessed Aug 25, 2022. www.sti.guidelines.org.au
Workowski KA, Bachmann LH, Chan PA, Johnston CM, Muzny CA, Park I, Reno H, Zenilman JM, Bolan GA. Sexually Transmitted Infections Treatment Guidelines, 2021. MMWR Recomm Rep. 2021;70(4):1-187. https://doi.org/10.15585/mmwr.rr7004a1
Mangin D, Murdoch D, Wells JE, Coughlan E, Bagshaw S, Corwin P, Toop L. Chlamydia trachomatis Testing Sensitivity in Midstream Compared With First-Void Urine Specimens. The Annals of Family Medicine. 2012; 10(1);50-53. https://doi.org/10.1370/afm.1323
Unemo M, Ballard R, Catherine I, David L, Ndowa FV, et al. Laboratory diagnosis of sexually transmitted infections, including human immunodeficiency virus. World Health Organization. 2013. Accessed Aug 25, 2022. https://apps.who.int/iris/handle/10665/85343
Wisniewski CA, White JA, Michel C-EC, Mahilum-Tapay L, Magbanua JPV, Nadala ECB, Lee HH. Optimal Method of Collection of First-Void Urine for Diagnosis of Chlamydia trachomatis Infection in Men. Journal of Clinical Microbiology. 2008;46(4):1466-1469. https://doi.org/10.1128/jcm.02241-07
Howell MR, Quinn TC, Gaydos CA. Screening for Chlamydia trachomatis in asymptomatic women attending family planning clinics: A cost effectiveness analysis of three preventive strategies. Ann Intern Med. 1998;128:277-284. https://doi.org/10.7326/0003-4819-128-4-199802150-00005
Howell MR, Quinn TC, Brathwaite W, Gaydos CA. Screening women for Chlamydia trachomatis in family planning clinics: the cost-effectiveness of DNA amplification assays. Sex Transm Dis. 1998;25:108-117. https://doi.org/10.1097/00007435-199802000-00008
Miller WC, Ford CA, Morris M, et al. Prevalence of chlamydial and gonococcal infections among young adults in the United States. JAMA. 2004; 291:2229-2236. https://doi.org/10.1001/jama.291.18.2229
Arcari CM, Gaydos JC, Howell MR, et al. Feasibility and short-term impact of linked education and urine screening interventions for chlamydia and gonorrhea in male army recruits. Sex Transm Dis. 2004;31:443-447. https://doi.org/10.1097/01.olq.0000129950.91427.34
De Baetselier I, Smet H, Abdellati S, De Deken B, Cuylaerts V, Reyniers T, Vuylsteke B, Crucitti T. Evaluation of the ‘Colli-Pee’, a first-void urine collection device for selfsampling at home for the detection of sexually transmitted infections, versus a routine clinic-based urine collection in a one-to-one comparison study design: efficacy and acceptability among MSM in Belgium. BMJ Open. 2019;9(4):e028145. https://doi.org/10.1136/bmjopen-2018-028145
Gray RH, Wawer MJ, Girdner J, et al. Use of self-collected vaginal swabs for detection of Chlamydia trachomais infection. Sex Transm Dis. 1998; 25:450. https://doi.org/10.1097/00007435-199809000-00014
Weisenfeld HC, Lowry DLB, Heine RP, et al. Self-collection of vaginal swabs for the detection of Chlamydia, gonorrhea, and trichomonas. Sex Transm Dis. 2001;28:321-325. https://doi.org/10.1097/00007435-200106000-00003
Hook III EW, Smith K, Mullen C, et al. Diagnosis of genitourinary Chalmydia trachomatis infections by using the ligase chain reaction on patient-obtained vaginal swabs. J Clin Microbiol. 1997;35:2133-2135. https://doi.org/10.1128/jcm.35.8.2133-2135.1997
Centers for Disease Control and Prevention. Recommendations for the laboratory-based detection of Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae-2014. MMWR Recomm Rep. 2014;63(2):1-19. PMID: 24622331. PMCID: PMC4047970.
Rompalo AM, Gaydos CA, Shah N, et al. Evaluation of use of a single intravaginal swab to detect multiple sexually transmitted infections in active-duty military women. Clin Infect Dis. 2001;33:1455-1461. https://doi.org/10.1086/322588
Centers for Disease Control and Prevention (2009) Laboaratory diagnostic testing for Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae. American Public Health Laboratories website; [updated 2009; accessed 25 April 2011].
Dong Q, Nelson DE, Toh E, Diao L, Gao X, Fortenberry JD, et al. The Microbial Communities in Male First Catch Urine Are Highly Similar to Those in Paired Urethral Swab Specimens. PLoS ONE. 2011;6(5):e19709. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0019709
Coorevits L, Traen A, Bingé L, Van Dorpe J, Praet M, Boelens J, Padalko E. Identifying a consensus sample type to test for Chlamydia trachomatis, Neisseria gonorrhoeae, Mycoplasma genitalium, Trichomonas vaginalis and human papillomavirus. Clinical Microbial Infect. 2018;24(12):1328-1332. https://doi.org/10.1016/j.cmi.2018.03.013
Fajardo-Bernal L, Angel-Müller E, Aponte-Gonzalez J, Rincon C, Gaitán HG, Low N. 2014. Home-based versus clinic-based management strategy for Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae. Cochrane Database of Systematic Reviews. https://doi.org/10.1002/14651858.cd011317
Bertucci M, Bonnet E, Satger L, Kreiche A, Chappert J-L, Loy-Morel S, Boulle N. Acceptability of vaginal self-sampling with high-risk human papillomavirus testing for cervical cancer screening: a French questionnaire-based study. Women & Health. 2020;61(1):83-94. https://doi.org/10.1080/03630242.2020.1831683
Modibbo F, Iregbu KC, Okuma J, Leeman A, Kasius A, de Koning M, Adebamowo C. Randomized trial evaluating self-sampling for HPV DNA based tests for cervical cancer screening in Nigeria. Infectious Agents and Cancer. 2017;12(1):123. https://doi.org/10.1186/s13027-017-0123-z
Артымук Н.В., Марочко К.В. Эффективность выявления вируса папилломы человека при помощи устройства для самостоятельного забора вагинального отделяемого. Акушерство и гинекология. 2016; 3:85-91. https://doi.org/10.18565/aig.2016.3.85-91
Туранова О.В. Оптимизация профилактики рака шейки матки у женщин репродуктивного возраста: Дис. ... канд. мед. наук. Иркутск. 2020.
Белокриницкая Т.Е., Фролова Н.И., Туранова О.В., Шемякина К.Н., Плетнева В.А., Самбуева Н.Б., Мальцева Е.Е. Результативность и приемлемость обследования на вирус папилломы человека при самостоятельном и врачебном заборе вагинального отделяемого. Акушерство и гинекология. 2017;2:97-105. https://doi.org/10.18565/aig.2017.2.97-105
European Centre for Disease Prevention and Control. Technical Report: Technologies, strategies and approaches for testing populations at risk of sexually transmitted infections in the EU/EEA. Stockholm: ECDC; 2021. Stockholm, March 2021. Catalogue number TQ-03-21-114-EN-N European Centre for Disease Prevention and Control, 2021. https://doi.org/10.2900/632292
Bowden FJ, Currie MJ, Todkill M, Schmidt M, Webeck S, Del Rosario R, et al. A pragmatic assessment of the relative efficiency of outreach chlamydia screening events conducted in non-clinical settings. BMC Public Health. 2012;12(1):341. https://doi.org/10.1186/1471-2458-12-341
Dolan P, Rudisill C. The effect of financial incentives on chlamydia testing rates: Evidence from a randomized experiment. Social Science & Medicine. 2014;105:140-148. https://doi.org/10.1016/j.socscimed.2013.11.018
Estcourt CS, Gibbs J, Sutcliffe LJ, Gkatzidou V, Tickle L, Hone K, et al. Is an automated online clinical care pathway for people with genital chlamydia (chlamydiaoccp) within an esexual health clinic feasible and acceptable? Proof of concept study. Sexually transmitted infections. 2015;91(2):A55. https://doi.org/10.1136/sextrans-2015-052270.153
Fisher M, Wayal S, Smith H, Llewellyn C, Alexander S, Ison C, et al. Home Sampling for Sexually Transmitted Infections and HIV in Men Who Have Sex with Men: A Prospective Observational Study. Plos One. 2015;10(4): e0120810. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0120810
Gill ten Hoor, Jpa Hoebe C, Eam van Bergen J, Ehg Brouwers E, Ac Ruiter R, Kok G. The influence of two different invitation letters on Chlamydia testing participation: randomized controlled trial. Journal of Medical Internet Research. 2014;16(1):e24-10. https://doi.org/10.2196/jmir.2907
Jenkins WD, Weis R, Campbell P, Barnes M, Barnes P, Gaydos C, et al. Comparative effectiveness of two self-collected sample kit distribution systems for chlamydia screening on a university campus. Sexually transmitted infections. 2012;88(5):363-367. https://doi.org/10.1136/sextrans-2011-050379
Kersaudy-Rahib D, Lydie N, Leroy C, March L, Bebear C, Arwidson P, et al. Chlamyweb Study II: a randomised controlled trial (RCT) of an online offer of home-based Chlamydia trachomatis sampling in France. Sexually transmitted infections. 2017;93(3);179-187. https://doi.org/10.1136/sextrans-2015-052510
Kløvstad H, Natås O, Tverdal A, Aavitsland P. Systematic screening with information and home sampling for genital Chlamydia trachomatis infections in young men and women in Norway: a randomized controlled trial. BMC Infectious Diseases. 2013;13(1):30. https://doi.org/10.1186/1471-2334-13-30
Lundgren PT, Detanne S, Dunais B, Bruno P, Bentz L, Khouri P, et al. Promoting primary care screening for Chlamydia trachomatis infection. Sante Publique. 2016;28(3):299-308.
Niza C, Rudisill C, Dolan P. Vouchers versus lotteries: what works best in promoting chlamydia screening? A cluster randomized controlled trial. Applied Economic Perspectives and Policy. 2014;36(1):109-124. https://doi.org/10.1093/aepp/ppt033
Reagan MM, Xu H, Shih SL, Secura GM, Peipert JF, Reagan MM, et al. A randomized trial of home versus clinic-based sexually transmitted disease screening among men. Sexually Transmitted Diseases. 2012;39(11):842-847. https://doi.org/10.1097/OLQ.0b013e3182649165
Rooijen MS, Koekenbier RH, Hendriks A, de Vries HJC, van Leeuwen P, van Veen MG. Young Low-Risk Heterosexual Clients Prefer a Chlamydia Home Collection Test to a Sexually Transmitted Infection Clinic Visit in Amsterdam, the Netherlands, A Cross-Sectional Study. Sexually Transmitted Diseases. 2016;43(11):710-716. https://doi.org/10.1097/OLQ.0000000000000517
Van Den Broek IVF, Van Bergen JEAM, Brouwers EEHG, Fennema JSA, Götz HM, Hoebe CJPA, et al. Effectiveness of yearly, register based screening for chlamydia in the Netherlands: controlled trial with randomised stepped wedge implementation. BMJ: British Medical Journal (Overseas & Retired Doctors Edition). 2012;345(7869):14. https://doi.org/10.1136/bmj.e4316
Warren K, Junghans C, Coley D, Draeger E. Self-sampling in sexual reproductive health: Who uses this service and are we missing the opportunity to screen for other sexually transmitted infections? Sexually transmitted infections. 2016;92(1):A91.
Wood M, Ellks R, Grobicki M. Outreach sexual infection screening and postal tests in men who have sex with men: are they comparable to clinic screening? International Journal of STD & AIDS. 2015;26(6):428-431. https://doi.org/10.1177/0956462414539668
Woodhall SC, Nichols T, Alexander S, da Silva FC, Mercer CH, Ison C, et al. Can we use postal surveys with anonymous testing to monitor chlamydia prevalence in young women in England? Pilot study incorporating randomised controlled trial of recruitment methods. Sexually transmitted infections. 2015;91(6):412-414. https://doi.org/10.1136/sextrans-2015-052067
Wilson E, Free C, Morris TP, Syred J, Ahamed I, Menon-Johansson AS, et al. Internet-accessed sexually transmitted infection (e-STI) testing and results service: A randomised, single-blind, controlled trial. PLoS Medicine. 2017;14(12):120. https://doi.org/10.1371/journal.pmed.1002479
Shih SL, Graseck AS, Secura GM & Peipert JF. Screening for sexually transmitted infections at home or in the clinic? Current Opinion in Infectious Diseases. 2011;24(1):78-84. https://doi.org/10.1097/qco.0b013e32834204a8

Закрыть метаданные