ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроектыО насРекламаДоставка/ОплатаКонтакты
+7 (495) 482-43-29
  • Главная
  • / Журналы
  • / Вернуться в журнал
  • / Содержание номера
  • / Статья
Оценка морфологической активности болезни Шегрена по биоптатам малых слюнных желез

Оценка морфологической активности болезни Шегрена по биоптатам малых слюнных желез

Авторы:
Раденска-Лоповок С.Г.,
Каранова М.С.,
Александр Сергеевич Занозин,
Родионова Е.Б.,
Пальшина С.Г.,
Цветанов М.С.,
Анна Васильевна Трегубова,
Васильев В.И.

Журнал: Архив патологии. 2023;85(1):5-9.

DOI: 10.17116/patol2023850115

Прочитано: 4890 раз

Скачать PDF

Резюме

Результаты морфологического исследования малых слюнных желез могут быть использованы для оценки активности болезни Шегрена и при решении вопроса об адекватной терапии. Существующий протокол The Sjögren’s International Clinical Collaborative Alliance (SICCA) предписывает методологию исследования биоптатов при подозрении на болезнь Шегрена, однако специалисты по-разному трактуют данные анализа гистологических препаратов.

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ

Ретроспективный анализ биоптатов малых слюнных желез у больных с достоверным диагнозом болезни Шегрена для выявления морфологических форм сиаладенита, а также определения индекса морфологической активности у российских пациентов.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

Изучены биоптаты малых слюнных желез 92 больных болезнью Шегрена и 42 пациентов без ревматического заболевания.

РЕЗУЛЬТАТЫ

У 69 больных болезнью Шегрена был выявлен очаговый лимфоцитарный сиаладенит. Индекс морфологической активности у больных болезнью Шегрена составил 7,32 (от 2,8 до 14,17). У больных без ревматических заболеваний этот индекс был 0,48 (p≤0,05). Больные со сливными лимфоцитарными инфильтратами нуждаются в иммуногистохимическом исследовании и динамическом наблюдении для исключения лимфопролиферативных заболеваний.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Индекс морфологической активности сиаладенита при болезни Шегрена составляет от 2,8 до 14,17 и отражает активность основного заболевания. Он должен учитываться в диагностике и назначении адекватной терапии. Дальнейшее изучение корреляций морфологических и клинико-лабораторных показателей приведет к уточнению критериальных признаков заболевания.

Ключевые слова

  • болезнь Шегрена
  • синдром Шегрена
  • морфология малых слюнных желез
  • индекс морфологической активности

Дата поступления: 10.10.2022

Дата принятия в печать: 26.10.2022

Дата публикации: 14.02.2023

Биопсия малых слюнных желез (МСЖ) широко используется в диагностике болезни Шегрена (БШ) и является неотъемлемой частью диагностического процесса [1—4]. В соответствии с консенсусным соглашением диагностических критериев Европейской лиги против ревматизма и Американским колледжем ревматологии (EULAR/ACR) результаты морфологического исследования могут быть использованы для оценки активности заболевания при решении вопроса об адекватной терапии [5—8], а также стать биомаркером в клинических испытаниях [9—14]. Очаговый лимфоцитарный сиаладенит (ОЛС) обладает высокой специфичностью и чувствительностью (более 80 и 98% соответственно) при диагностике БШ. Многие авторы [14—16] описывают выраженные скопления лимфоцитов и других моноцитов (преимущественно периваскулярно и перидуктально; 50 клеток и более в очаге).

Определение индекса морфологической активности (ИМА), или Focus score (FS), было предложено в 1974 г. Дальнейшие исследования установили, что ИМА 1 фокус и более на 4 мм2 является критерием диагностики БШ [17]. Международный клинический центр по изучению синдрома Шегрена опубликовал протокол исследования биоптатов при подозрении на БШ (The Sjögren’s International Clinical Collaborative Alliance — SICCA) [11, 18]. Тем не менее специалисты по-разному трактуют данные анализа гистологических препаратов.

Протокол SICCA указывает, что ОЛС и сохранные ацинусы располагаются рядом, а признаки неспецифического хронического сиаладенита (НХС), такие как атрофия и дилатация протоков, выявляются часто и могут встречаться при БШ. НХС может быть связан с инфильтрацией лимфоцитами и даже их агрегацией, что создает проблемы для интерпретации и подсчета ИМА [8, 19]. Протокол SICCA не предоставляет никаких дополнительных указаний, кроме расчета ИМА. Отсутствуют данные о размере очагов, степени их организации, наличии зародышевых центров, а также лимфоэпителиальных поражениях и гиперплазии базальных клеток протоков с формированием плоскоклеточной метаплазии. Эти изменения могут также иметь прогностическое значение [20]. В клинической практике наиболее широко используется биопсия МСЖ. Процедура получения биоптата стоматологом малоинвазивна, а морфологические изменения коррелируют с таковыми в больших слюнных железах. Следует отметить, что в современной русскоязычной литературе недостаточно раскрыты проблема морфологической диагностики и оценка морфологической активности изменений МСЖ при БШ.

Цель исследования — ретроспективный анализ биоптатов МСЖ больных с достоверным диагнозом БШ и выявление морфологических форм сиаладенита, а также определение ИМА у российских пациентов.

Материал и методы

Изучены 134 биоптата МСЖ: 92 больных БШ и 42 — без ревматического заболевания. На момент исследования распределение по полу и возрасту было следующее: 6 мужчин в возрасте от 57 до 63 лет (средний возраст 60±1,5 года) и 128 женщин от 25 до 75 лет (средний возраст 49,64±2,8 года). Пациентов обследовали по поводу жалоб на сухость в полости рта, однако диагноз ревматического заболевания 42 больным не был поставлен. После осмотра полости рта стоматолог брал 4—5 МСЖ с внутренней поверхности нижней губы, ближе к углу рта. Для инфильтрационной биопсии использовали 2% раствор лидокаина, затем накладывали швы. После фиксации в 10% растворе нейтрального формалина материал изучали с помощью гистологических методов исследования, препараты окрашивали гематоксилином и эозином, пикрофуксином по Ван Гизону и использовали PAS-реакцию. Проводили морфометрическое исследование в соответствии с протоколом SICCA [14]. На первом этапе, согласно этому протоколу, подсчитывали количество желез в препарате и ставили один из морфологических диагнозов: ОЛС (при подозрении на MALT-лимфому проводили иммуногистохимическое исследование), очаговый/склерозирующий лимфоцитарный сиаладенит, НХС, склерозирующий сиаладенит, гранулематозное воспаление, дистрофические изменения (сиаладеноз), пациентов с сохранными железами в биоптатах выделяли в отдельную группу.

На следующем этапе при увеличении микроскопа в 40 раз подсчитывали количество очагов лимфогистиоцитарного воспаления, в которых было более 50 клеток, замеряли площадь паренхимы (в мм2). Определяли ИМА (FS) по формуле:

,

где: N — количество очагов, S — общая площадь паренхимы за вычетом площади склероза и липоматоза.

Результаты и обсуждение

В исследовании преобладали больные ОЛС (рис. 1), в эту группу вошли 69 человек. У 6 пациентов были выявлены сливные инфильтраты, занимающие целую дольку желез, даже с формированием светлых центров размножения (рис. 2). Проводили иммуногистохимическое исследование для исключения лимфопролиферативного процесса, пациенты оставались под тщательным наблюдением ревматолога и гематолога.

Рис. 1. Очаговый сиаладенит, очаг лимфоцитарного инфильтрата в перидуктальном тракте.

Окраска гематоксилином и эозином, ×250.

Рис. 2. Очаговый сиаладенит, сливной лимфоцитарный инфильтрат с центрами размножения.

Окраска гематоксилином и эозином, ×250.

Очаговый/склерозирующий лимфоцитарный сиаладенит характеризовался сочетанием выраженного склероза с очаговыми лимфогистиоцитарными инфильтратами в паренхиме (рис. 3). Таких больных было 9. В исследованной группе у 8 пациентов выявили сохранную ткань слюнной железы, несмотря на жалобы на сухость во рту. Однако у этих пациентов имелось снижение стимулированной секреции слюны, отмечались стоматологические и сиалографические изменения, иммунологические нарушения в крови и сухой кератоконъюнктивит, что дало основание поставить диагноз БШ, несмотря на морфологически сохранную ткань МСЖ.

Рис. 3. Очаговый/склерозирующий лимфоцитарный сиаладенит.

Очаг лимфоцитарного инфильтрата в перидуктальном тракте, выраженный склероз, атрофия паренхимы. Окраска гематоксилином и эозином, ×250.

В группу сравнения вошли 42 пациента, которые обратились к ревматологу по поводу жалоб на сухость во рту и глазах, артралгии. При детальном обследовании какое-либо ревматическое заболевание не было выявлено. В биоптатах МСЖ были выявлены ОЛС (9 случаев), НХС (9), склерозирующий сиаладенит (11), дистрофические изменения (сиаладеноз) (7) и сохранные железы (6).

На втором этапе проводили морфометрическое исследование для определения ИМА. Здесь установили большие разбросы общей площади паренхимы при БШ. Это объясняется различным количеством (от 3 до 6) МСЖ у пациентов. Считаем, что этот показатель сам по себе не имеет диагностического значения. Важно знать количество очаговых инфильтратов на 4 мм2 препарата, т.е. определить ИМА.

ИМА в группе больных БШ составил от 2,8 до 14,17, в среднем 7,32 (p≤0,05).

Наряду с этим у 9 пациентов группы сравнения с ОЛС этот показатель варьировал от 0,3 до 0,8. Очаги воспалительного инфильтрата в случаях НХС содержали менее 50 клеток, а следовательно, эти больные не могли быть включены в группу определения ИМА, так как не соответствовали критериям международного протокола.

Российские и зарубежные критерии диагностики БШ включают гистологическую характеристику поражения МСЖ. Очень важно правильно оценить морфологическую активность воспаления для того, чтобы дать инструмент в руки клиницистов для назначения адекватной терапии [21]. Наш опыт показал, что для определения разновидности сиаладенита или активности процесса бывает недостаточно выявить воспаление или дистрофические изменения в ткани. ИМА позволяет получить полуколичественную оценку или приблизительно определить степень сиаладенита у каждого пациента. Наряду с этим существует трудность оценки количества клеток в очаге, поэтому данный показатель не совсем точен. Следует подчеркнуть, что для повышения точности оценки ИМА необходимо изучить большое количество срезов.

Проведенное исследование выявило трудности в определении площади ткани в связи с ее неровными контурами. Это особенно заметно при использовании сетки Автандилова, но нивелируется морфометрическими программами, которые сейчас существуют для просмотра сканированных препаратов, или другим программным обеспечением. Этот факт отмечают и другие исследователи [22, 23].

Существуют трудности в полуколичественной оценке ИМА в случаях сливных инфильтратов, при наличии эпимиоэпителиальных островков и фолликулоподобных структур в МСЖ. Возникает вопрос, какие клетки участвуют в развитии БШ. Чтобы оценить типы T-клеток слюнной железы, M. Joachims и соавт. [20] оценили подтипы T-клеток в слюнной железе и сравнили транскриптомы T-клеток памяти CD4+ у пациентов с БШ и без него. Авторы показали, что фиброз слюнной железы положительно коррелировал с количеством T-клеток памяти. Соотношение CD4+/CD45RA-T коррелировало с оценкой ИМА (r=0,43, p<0,0001). В таких случаях необходимо проведение иммуногистохимического исследования для исключения лимфопролиферативного процесса с поражением МСЖ [24]. Пациенты с эпимиоэпителиальными островками в МСЖ и сливными инфильтратами нуждаются в динамическом проспективном наблюдении. K. Delli и соавт. [17] отмечают трудности в трактовке существующих зародышевых центров в фолликулоподобных структурах, а также в определении их прогностического значения.

Отмечают два варианта неточного определения ИМА. Во-первых, когда имеются массивные инфильтраты и нужно решить, есть ли один сливной очаг или это несколько мелких. Сливные инфильтраты приравнивают к максимальному баллу 12. Во-вторых, возникает сложность при определении порога 50 клеток в очаге, чтобы решить, достаточно ли плотен воспалительный инфильтрат. В инфильтрате могут присутствовать плазматические клетки, и мнения экспертов расходятся при оценке их значимости в определении ИМА.

Случаи с наличием атрофии паренхимы, расширением протоков и склерозом стромы не могут быть отнесены к ОЛС. Эти биоптаты рассматривают в зависимости от общей гистологической картины как склерозирующий сиаладенит, НХС или сиаладеноз, наряду с этим у части больных БШ могут быть такие изменения в МСЖ. Поэтому патологоанатом должен отмечать все изменения в описании и комментариях к заключению для того, чтобы клиницист при постановке диагноза сопоставил эти результаты с данными лабораторного обследования и клиническими признаками.

Заключение

Индекс морфологической активности при болезни Шегрена отражает выраженность морфологических изменений в малых слюнных железах. Этот показатель может быть использован в процессе дифференциальной диагностики болезни Шегрена. Для того чтобы включить индекс морфологической активности в критерии оценки тяжести заболевания, необходимо глубокое исследование корреляции клинических, лабораторных и морфологических изменений, учитывая уровень этого индекса.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования — С.Г. Раденска-Лоповок

Диагностика и лечение больных — С.Г. Пальшина, Е.Б. Родионова, И.И. Васильев

Сбор материала — Е.Б. Родионова, С.Г. Раденска-Лоповок

Обработка материала — М.С. Каранова, А.С. Занозин, А.В. Трегубова

Написание текста — С.Г. Раденска-Лоповок, М.С. Цветанов

Редактирование — С.Г. Раденска-Лоповок

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References
  1. Fisher BA, Jonsson R, Daniels T, Bombardieri M, Brown RM, Morgan P, Bombardieri S, Ng WF, Tzioufas AG, Vitali C, et al.; on behalf of the Sjögren’s histopathology workshop group (appendix) from ESSENTIAL (EULAR Sjögren’s syndrome study group). Standartisation of labial salivary gland histopathology in clinical trials in primary Sjögren’s syndrome. Ann Rheum Dis. 2016;76(7):1161-1168. https://doi.org/10.1136/annrheumdis-2016-210448
  2. Vitali C, Bombardieri S, Jonsson R, Moutsopoulos HM, Alexander EL, Carsons SE, Daniels TE, Fox PC, Fox RI, Kassan SS, et al.; European Study Group on Classification Criteria for Sjögren’s Syndrome. Classification criteria for Sjögren’s syndrome: a revised version of the European criteria proposed by the American-European Consensus Group. Ann Rheum Dis. 2002;61(6):554-558. https://doi.org/10.1136/ard.61.6.554
  3. Veenbergen S, Kozmar A, van Daele PLA, Schreurs MWJ. Autoantibodies in Sjögren’s syndrome and its classification criteria. J Transl Autoimmun. 2020;5:100138. https://doi.org/10.1016/j.jtauto.2021.100138
  4. Jonsson R, Brokstad KA, Jonsson MV, Delaleu N, Skarstein K. Current concepts on Sjögren’s syndrome — classification criteria and biomarkers. Eur J Oral Sci. 2018;126(Suppl 1):37-48. https://doi.org/10.1111/eos.12536
  5. Risselada AP, Kruize AA, Goldschmeding R, Lafeber FP, Bijlsma JW, van Roon JA. The prognostic value of routinely performed minor salivary gland assessments in primary Sjögren’s syndrome. Ann Rheum Dis. 2014;73(8):1537-1540. https://doi.org/10.1136/annrheumdis-2013-204634
  6. Theander E, Vasaitis L, Baecklund E, Nordmark G, Warfvinge G, Liedholm R, Brokstad K, Jonsson R, Jonsson MV. Lymphoid organisation in labial salivary gland biopsies is a possible predictor for the development of malignant lymphoma in primary Sjögren’s syndrome. Ann Rheum Dis. 2011;70(8):1363-1368. https://doi.org/10.1136/ard.2010.144782
  7. Cornec D, Costa S, Devauchelle-Pensec V, Chiche L, Saraux A, Pers JO. Do high numbers of salivary gland-infiltrating B cells predict better or worse outcomes after rituximab in patients with primary Sjögren’s syndrome? Ann Rheum Dis. 2016;75(6):e33. https://doi.org/10.1136/annrheumdis-2016-209300
  8. Delli K, Haacke EA, Kroese FG, Pollard RP, Ihrler S, van der Vegt B, Vissink A, Bootsma H, Spijkervet FK. Towards personalised treatment in primary Sjögren’s syndrome: baseline parotid histopathology predicts responsiveness to rituximab treatment. Ann Rheum Dis. 2016;75(11):1933-1938. https://doi.org/10.1136/annrheumdis-2015-208304
  9. Bowman SJ, Fox RI. Classification criteria for Sjögren’s syndrome: nothing ever stands still! Ann Rheum Dis. 2014;73(1):1-2. https://doi.org/10.1136/annrheumdis-2013-203953
  10. Fisher BA, Brown RM, Bowman SJ, Barone F. A review of salivary gland histopathology in primary Sjögren’s syndrome with a focus on its potential as a clinical trials biomarker. Ann Rheum Dis. 2015;74(9):1645-1650. https://doi.org/10.1136/annrheumdis-2015-207499
  11. Chisholm DM, Mason DK. Labial salivary gland biopsy in Sjögren’s disease. J Clin Pathol. 1968;21(5):656-660. https://doi.org/10.1136/jcp.21.5.656
  12. Greenspan JS, Daniels TE, Talal N, Sylvester RA. The histopathology of Sjögren’s syndrome in labial salivary gland biopsies. Oral Surg Oral Med OralPathol. 1974;37(2):217-229. https://doi.org/10.1016/0030-4220(74)90417-4
  13. Daniels TE, Cox D, Shiboski CH, Schiødt M, Wu A, Lanfranchi H, Umehara H, Zhao Y, Challacombe S, Lam MY, et al.; Sjögren’s International Collaborative Clinical Alliance Research Groups. Associations between salivary gland histopathologic diagnoses and phenotypic features of Sjogren’s syndrome among 1,726 registry participants. Arthritis Rheum. 2011;63(7):2021-2030. https://doi.org/10.1002/art.30381
  14. Fox RI. Standardisation of labial salivary gland biopsies in Sjogren’s syndrome: importance for the practicing rheumatologist. Ann Rheum Dis. 2017;76(7):1159-1160. https://doi.org/10.1136/annrheumdis-2016-210851
  15. Costa S, Quintin-Roue I, Lesourd A, Jousse-Joulin S, Berthelot JM, Hachulla E, Hatron PY, Goeb V, Vittecoq O, Pers JO, et al. Reliability of histopathological salivary gland biopsy assessment in Sjögren’s syndrome: a multicentre cohort study. Rheumatology (Oxford). 2015;54(6):1056-1064. https://doi.org/10.1093/rheumatology/keu453
  16. Leroy JP, Pennec YL, Letoux G, Youinou P. Lymphocytic infiltration of salivary ducts: a histopathologic lesion specific for primary Sjögren’s syndrome? Arthritis Rheum. 1992;35(4):481-482. https://doi.org/10.1002/art.1780350420
  17. Delli K, Haacke EA, Ihrler S, van der Vegt B, Vissink A, Bootsma H, Spijkervet FKL, Kroese FGM. Need for consensus guidelines to standardise the assessment of germinal centres and other histopathological parameters in salivary gland tissue of patients with primary Sjogren’s syndrome. Ann Rheum Dis. 2016;75(6):e32. https://doi.org/10.1136/annrheumdis-2016-209480
  18. Leroy JP, Pennec YL, Letoux G, Youinou P. Lymphocytic infiltration of salivary ducts: a histopathologic lesion specific for primary Sjogren’s syndrome? Arthritis Rheum. 1992;35(4):481-482. https://doi.org/10.1002/art.1780350420
  19. Сафонова Т.Н., Васильев В.И., Лихванцева В.Г. Синдром Шегрена. Руководство для врачей. М.: Издательство Московского государственного университета им. М.В. Ломоносова; 2013;600.
  20. Joachims ML, Leehan KM, Dozmorov MJ, Georgescu C, Pan Z, Lawrence C, Marlin MC, Macwana S, Rasmussen A, Radfar L, et al. Sjögren’s syndrome minor salivary gland CD4+ memory T cells associate with glandular disease features and have a germinal center T follicular helper transcriptional profile. J Clin Med. 2020;9(7):2164. https://doi.org/10.3390/jcm9072164
  21. Mossel E, van Ginkel MS, Haacke EA, Arends S, Liefers SC, Delli K, van Nimwegen JF, Stel AJ, Spijkervet FKL, Vissink A, et al. Histopathology, salivary flow and ultrasonography of the parotid gland: three complementary measurements in primary Sjögren’s syndrome. Rheumatology (Oxford). 2022;61(6):2472-2482. https://doi.org/10.1093/rheumatology/keab781
  22. Sebastian A, Woytala P, Madej M, Proc K, Czesak-Woytala K, Sebastian M, Zub K, Wiland P. Is it possible to not perform salivary gland biopsy in targeted patients according to unstimulated salivary flow results in patients with suspected Sjögren’s syndrome? Rheumatol Int. 2021;41(6):1125-1131. https://doi.org/10.1007/s00296-021-04840-4
  23. Kakugawa T, Sakamoto N, Ishimoto H, Shimizu T, Nakamura H, Nawata A, Ito C, Sato S, Hanaka T, Oda K, et al. Lymphocytic focus score is positively related to airway and interstitial lung diseases in primary Sjögren’s syndrome. Respir Med.2018;137:95-102. https://doi.org/10.1016/j.rmed.2018.02.023
  24. Alessandri C, Ciccia F, Priori R, Astorri E, Guggino G, Alessandro R, Rizzo A, Conti F, Minniti A, Barbati C, et al. CD4 T lymphocyte autophagy is upregulated in the salivary glands of primary Sjögren’s syndrome patients and correlates with focus score and disease activity. Arthritis Res Ther. 2017;19(1):178. https://doi.org/10.1186/s13075-017-1385-y
slide-cover
slide-cover
slide-cover

Рекомендуем статьи по данной теме:

Дерматоскопические и патогистологические особенности дерматофибром.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):685-694

Высокая безопасность филлеров на основе агарозы. Собственное наблюдение.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):676-684

Коррекция признаков старения кожи лица с помощью экзосом.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):668-674

Антибактериальная резистентность в дерматологии: современный взгляд на проблему и место амоксициллина и клавулановой кислоты в лечении бактериальных инфекций кожи.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):660-667

Дерматозы как ятрогенное осложнение инвазивных аппаратных процедур.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):652-658

Эволюция эмолентов и активных компонентов в дерматологии.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):641-650

Лекарственно-индуцированная саркоидоподобная реакция на фоне терапии ингибиторами BRAF/MEK метастатической меланомы.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):632-640

Мазь такролимуса: селективный T-клеточный иммуносупрессант в дерматологии.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):619-630

Клинический случай лечения препаратом нетакимаб пациента с псориазом среднетяжелой степени тяжести, ассоциированным с метаболическим синдромом.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):613-618

Современные подходы к терапии NCMT-инфекций, передаваемых половым путем (N. gonorrhoeae, C. trachomatis, M. genitalium, T. vaginalis). Часть II. M. genitalium.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):603-612

Издательство «Медиа Сфера»
РекламаДоставка/ОплатаО насКонтактыОбучение для редакцийПолитика конфиденциальностиПолитика обработки персональных данныхПубличная оферта на реализацию издательской продукции
ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроекты
  • RuStore

© 1998-2026

  • Телефоны издательства:

  • +7 (495) 482-41-18
  • +7 (495) 482-43-29
  • Прямой телефон отдела подписки
    (только по вопросам заказов и доставки журналов)

  • +7 (800) 250-18-12
  • пн-пт с 10:00 до 18:00

  • Telegram
  • VK
info@mediasphera.ru
  • Почтовый адрес:

  • Издательство «Медиа Сфера»,
    а/я 54, Москва, Россия, 127238

  • RuStore

© 1998-2026