
Влияние общей анестезии на системный воспалительный ответ и нейрональное повреждение у детей с краниосиностозом в периоперационном периоде
Журнал: Анестезиология и реаниматология. 2021;(1):39-45.
DOI: 10.17116/anaesthesiology202101139
Прочитано: 2492 раза
Резюме
ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ
Изучить влияние ингаляционной анестезии севофлураном и внутривенной анестезии (седации) пропофолом на механизмы системного воспалительного ответа и нейронального повреждения у детей младшего возраста с краниосиностозом путем определения уровней биохимических маркеров воспаления — провоспалительных (интерлейкин-6, интерлейкин-8, фактор некроза опухоли альфа) и противовоспалительных (интерлейкин-10) цитокинов, а также маркера нейронального повреждения — белка s100B в плазме крови.
МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ
В исследование включены 38 пациентов в возрасте от 1 до 18 мес с диагнозом «несиндромальные формы краниосиностозов», которым выполняли магнитно-резонансное томографическое исследование головного мозга в условиях ингаляционной анестезии севофлураном (n=23) и седации пропофолом (n=15). Забор образцов с последующим определением уровней цитокинов и белка s100B в сыворотке крови выполняли до подачи анестетика (гипнотика) и сразу по окончании его действия.
РЕЗУЛЬТАТЫ
У всех обследованных пациентов при сравнимой средней продолжительности действия севофлурана (27,39±5,61 мин) и пропофола (29±4,93 мин) выявлено повышение уровней интерлейкина-6 в сыворотке крови (p=0,034577 и p=0,045108 соответственно), статистически значимое (p=0,045047) увеличение уровня нейроспецифического белка s100B при использовании севофлурана в концентрации 2,0—2,5 об.% (1 МАК).
ВЫВОДЫ
Кратковременная экспозиция ингаляционного анестетика севофлурана и гипнотика пропофола без хирургического воздействия запускает системную воспалительную реакцию в виде статистически значимого изолированного повышения уровня провоспалительного цитокина интерлейкин-6. Повышение концентрации нейроспецифического белка s100B после кратковременного воздействия ингаляционного анестетика севофлурана 2,0—2,5 об.% (1 МАК) без хирургического стимула свидетельствует, по нашему мнению, об активации механизмов нейронального апоптоза у детей младшего возраста с краниосиностозом.
Ключевые слова
- анестезия
- севофлуран
- пропофол
- педиатрия
- системный воспалительный ответ
- нейроапоптоз
- нейрохирургия
- краниосиностоз
Дата поступления: 23.10.2020
Дата принятия в печать: 18.11.2020
Дата публикации: 08.02.2021
Успешное выполнение нейрохирургических вмешательств на головном мозге во многом определяется вкладом факторов анестезиологического пособия по управлению внутричерепными объемами, обеспечению удовлетворительного интраоперационного состояния мозга, надежного гемостаза и гармоничного пробуждения больного [1—4]. В полной мере это относится и к детской нейрохирургии и нейроанестезиологии [5, 6].
Современные методики ингаляционной и тотальной внутривенной анестезии позволяют в определенной степени нивелировать некоторые интраоперационные многофакторные повреждения мозга, считавшиеся ранее необратимыми [7]. В детской анестезиологии высокую актуальность приобретает изучение проблемы нейротоксичности общих анестетиков, специфичности и контроля системного воспалительного ответа, запуска возможных механизмов нейронального апоптоза под влиянием общих анестетиков и нейрохирургического оперативного вмешательства в условиях развивающегося мозга, особенно у детей младшей возрастной группы [2, 7—12].
При нейрохирургических операциях у детей с краниоцеребральной диспропорцией представляется особенно важным выбор общего анестетика с минимальным нейротоксическим эффектом, запускающим нейрональное повреждение, поскольку, исходя из особенностей заболевания, при краниосиностозе дети первого года жизни сохраняют компенсированный соматический и неврологический статус и фактор церебрального повреждения может способствовать формированию отсроченного неврологического когнитивного дефицита, задержки психомоторного развития ребенка [10, 13, 14].
Таким образом, оптимизация анестезиологического пособия детям с краниосиностозом в периоперационном периоде, включая выполнение неинвазивной диагностической процедуры нейровизуализации — МРТ с контрастной перфузией, на основе повышения профиля безопасности общей анестезии является актуальной проблемой анестезиологии и нейрохирургии у детей.
Цель исследования — изучить влияние ингаляционной анестезии севофлураном и внутривенной анестезии (седации) пропофолом на механизмы системного воспалительного ответа и нейронального повреждения у детей младшей возрастной группы с краниосиностозом путем определения уровней биохимических маркеров воспаления — провоспалительных (интерлейкин (ИЛ)-6, ИЛ-8, фактор некроза опухоли альфа (ФНО-α)) и противовоспалительных (ИЛ-10) цитокинов, а также маркера нейронального повреждения — белка s100B в плазме крови.
Материал и методы
Проведено проспективное когортное клиническое исследование, в которое с февраля 2016 г. по май 2020 г. включены 38 пациентов в возрасте от 1 до 18 мес с диагнозом «несиндромальные формы краниосиностозов» (табл. 1). Критериями включения явились: срок гестации при рождении 37 нед и более; отсутствие внутриутробной инфекции и инфекционных заболеваний, неврологического дефицита; оценка при рождении по шкале Апгар 7—9 баллов; отсутствие приема каких-либо лекарственных препаратов, хирургических вмешательств ранее; клинический и биохимический анализы крови, соответствующие возрастным нормам по лабораторным данным. Критериями исключения из исследования явились: рождение в сроке до 37 нед гестации (недоношенные и глубоконедоношенные дети), с хроническими заболеваниями, принимающие препараты на постоянной основе, которые могут искажать картину маркеров системного воспалительного ответа (СВО); дети с грубым неврологическим дефицитом, декомпенсированными формами краниостенозов; пациенты, перенесшие вирусную или бактериальную инфекцию менее чем за 4 нед до даты нейровизуализационного исследования. Всем детям, включенным в исследование, выполняли МРТ головного мозга с перфузией в условиях моноанестезии севофлураном (n=23) и анестезии (седации) пропофолом (n=15) до выполнения реконструктивного нейрохирургического вмешательства. По классификации оценки физического статуса Американского общества анестезиологов (ASA) все пациенты отнесены к I или II классу.
Таблица 1. Характеристика пациентов, вошедших в исследование
Распределение пациентов с использованием севофлурана (n=23) | Распределение пациентов с использованием пропофола (n=15) | ||
Вес, кг1 | 8,53±2,39 | Вес, кг1 | 8,87±2,83 |
Возраст, месяцы1 | 7,84±4,21 | Возраст, месяцы1 | 8,13±3,62 |
Время анестезии, мин1 | 27,39±5,61 | Время анестезии, мин1 | 29±4,93 |
Мальчики (абс. число/%)2 | 15/65% | Мальчики (абс. число/%)2 | 9/60% |
Девочки (абс. число/%)2 | 8/35% | Девочки (абс. число/%)2 | 6/40% |
Примечание. Данные предоставлены в виде: 1 — среднего значения и стандартного отклонения (M±SD); 2 — абсолютных (n) и относительных (%) величин.
Этическим комитетом ФГБУ «НМИЦ им. В.А. Алмазова» Минздрава России вынесено положительное решение о проведении данного исследования (выписка №07112019 из протокола заседания этического комитета №11-19 от 11 ноября 2019 г.). После получения от законного представителя информированного согласия на проведение анестезии детям выполнялось МРТ-исследование. Постановку периферического венозного катетера осуществляли до начала исследования, соответственно, до подачи анестетика, с забором первого образца крови. Далее проводили индукцию и поддержание анестезии.
1. В случае ингаляционной методики анестезиологическое пособие осуществляли с помощью МРТ-совместимого наркозно-дыхательного аппарата Dräger Fabius MRI (Drägerwerk AG, Германия), выполняли индукцию севофлураном (севоран, Abbott Laboratories, Великобритания) 8 об.% с потоком воздушно-кислородной смеси 8 л/мин (FiO2=0,8) в течение 2 мин через неплотную лицевую маску, фиксированную силиконовыми держателями к голове пациента, поддержание анестезии 2,0—2,5 об.% севофлурана с потоком воздушно-кислородной смеси 1,5—2,5 л/мин (FiO2=0,45), что соответствует 1 МАК (E.T. Eger II, 2001).
2. В случае внутривенной методики использовали пропофол (пропофол-липуро, B. Braun Melsungen, Германия), выполнялась индукция в дозе 2—3 мг на 1 кг массы тела с переходом на поддерживающую дозу 2,5 мг на 1 кг массы тела в час внутривенно микроструйно в течение всего периода выполнения МРТ. В процессе нейровизуализационного исследования осуществлялся мониторинг витальных функций (частота сердечных сокращений, частота дыхания, неинвазивное артериальное давление, SpO2, etCO2) с помощью МРТ-совместимого монитора Invivo Expression (Philips, Нидерланды).
По окончании исследования прекращали подачу анестетика и выполняли второй забор образца крови. Дети просыпались в течение 2—3 мин. Длительность анестезии при обоих методах составляла от 20 до 35 мин.
Ни у одного ребенка, вошедшего в исследование, не зафиксированы осложнения при проведении анестезии. Постнаркозный период протекал гладко, без проявления респираторных и гемодинамических нарушений. В случае применения севофлурана практически у всех детей после пробуждения отмечались непродолжительный плач и беспокойство, при использовании пропофола дети после пробуждения были более спокойны.
Образцы крови немедленно транспортировали в лабораторию, где при комнатной температуре производилось центрифугирование пробирок с целью получения сыворотки. Для последующего анализа маркеров СВО и белка s100B образцы сыворотки замораживали и хранили при температуре 36°C. Концентрацию ИЛ-6, ИЛ-8, ИЛ-10 и ФНО-α в крови определяли на иммунохемилюминесцентном анализаторе Immulite 1000 (Diagnostics Products Corporation Cirrus Inc., США) с помощью наборов производителя Siemens Healthcare Diagnostics Products Ltd., Великобритания. Согласно прилагаемым инструкциям, чувствительность метода для ИЛ-6 составляет 2 пг/мл, ИЛ-8 —5 пг/мл, ИЛ-10 — 1 пг/мл, ФНО-α — 1,7 пг/мл. Концентрацию нейроспецифического белка s100B в крови определяли иммуноферментным методом на анализаторе планшетного типа Personal Lab (Adaltis, Италия) с помощью набора CanAg S100 EIA (Fujirebio Diagnostics, Швеция) согласно инструкции, прилагаемой производителем. Нижний порог чувствительности составляет 50 нг/л. Референсные значения в крови, указанные производителем, составляют менее 90 нг/л.
Статистическая обработка данных проведена с помощью программ Statistica 10, Excel 2010. При сравнительно небольшой величине изменений показателя использовали непараметрический критерий Уилкоксона — аналог парного критерия Стьюдента (t-критерий для зависимых выборок) для парных сравнений. Критический уровень значимости принят за p<0,05. Результаты, полученные после обработки данных, занесены в таблицу и представлены в виде графических изображений.
Результаты
Данные статистического анализа содержания маркеров СВО и нейроспецифического белка s100B до и после использования севофлурана и пропофола с целью проведения МРТ-исследования головного мозга у детей младшей возрастной группы представлены соответственно в табл. 2, 3.
Таблица 2. Концентрация циркулирующих маркеров системного воспалительного ответа и нейроспецифического белка s100B до и после использования севофлурана
Циркулирующий ИЛ в сыворотке крови | До севофлурана | После севофлурана | Статистическая значимость |
ИЛ-6 (пг/мл) | 1,93±2,21 | 3,20±5,50 | 0,034 |
ИЛ-8 (пг/мл) | 11,14±5,64 | 11,67±8,09 | 0,67 |
ИЛ-10 (пг/мл) | 1,85±5,81 | 1,60±6,05 | 0,38 |
ФНО-α (пг/мл) | 13,3±11,68 | 18,04±24,05 | 0,29 |
s100B (нг/л) | 193,40±165,67 | 256,73±293,98 | 0,045 |
Примечание. Данные предоставлены в виде среднего значения и стандартного отклонения (M±SD); ИЛ — интерлейкин; ФНО-α — фактор некроза опухоли альфа.
Таблица 3. Концентрация циркулирующих маркеров системного воспалительного ответа и нейроспецифического белка s100B до и после использования пропофола
Циркулирующий ИЛ в сыворотке крови | До пропофола | После пропофола | Статистическая значимость |
ИЛ-6 (пг/мл) | 3,312±1,23 | 4,45±2,64 | 0,045 |
ИЛ-8 (пг/мл) | 9,26±4,76 | 9,69±4,75 | 0,63 |
ИЛ-10 (пг/мл) | 2,10±3,10 | 1,91±2,81 | 0,75 |
ФНО-α (пг/мл) | 9,52±1,40 | 9,67±1,54 | 0,76 |
s100B (нг/л) | 279,67±90,51 | 282,84±136,88 | 0,77 |
Примечание. Данные предоставлены в виде среднего значения и стандартного отклонения (M±SD); ИЛ — интерлейкин; ФНО-α — фактор некроза опухоли альфа.
При сравнимой средней продолжительности воздействия севофлурана (27,39±5,61 мин) и пропофола (29±4,93 мин) у всех обследованных пациентов выявлен статистически значимый подъем уровня цитокина ИЛ-6 в сыворотке крови (p=0,034577 и p=0,045108 соответственно) (см. табл. 2, 3, рис. 1).

Рис. 1. Уровень интерлейкина-6 в сыворотке крови до и после применения севофлурана и пропофола.
В отношении уровня провоспалительного цитокина ИЛ-8 и противовоспалительного ИЛ-10 не получено статистически значимых различий в уровнях маркеров СВО (p>0,05) как при ингаляционной анестезии севофлураном, так и при внутривенной седации пропофолом (см. табл. 2, 3, рис. 2, 3).

Рис. 2. Уровень интерлейкина-8 в сыворотке крови до и после применения севофлурана и пропофола.

Рис. 3. Уровень в сыворотке крови интерлейкина-10 до и после применения севофлурана и пропофола.
После экспозиции севофлурана 2,0—2,5 об.% (1 МАК) уровень ФНО-α сохранялся неизменным (p>0,05), однако по данным среднего значения его концентрация увеличивалась после окончания воздействия севофлурана, характеризовалась низкой вариабельностью показателей и высокой дисперсией (Std. Dv. Diff.=24,71408; df=21) (см. табл. 2, рис. 4). По нашим данным, пропофол в дозе 2,5 мг на 1 кг массы тела в час не оказал существенного влияния на изменение концентрации ФНО-α (p>0,05) (см. табл. 3, рис. 4).

Рис. 4. Уровень фактора некроза опухоли альфа в сыворотке крови до и после применения севофлурана и пропофола.
При исследовании уровня нейроспецифического белка s100B в сыворотке крови определялось статистически значимое (p=0,045047) увеличение его при использовании севофлурана в концентрации 2,0—2,5 об.% (1 МАК) (см. табл. 2, рис. 5). При внутривенной анестезии (седации) пропофолом 2,5 мг на 1 кг массы тела в час отмечалось статистически незначимое увеличение концентрации нейроспецифического белка s100B (p>0,05) (табл. 3, рис. 5).

Рис. 5. Уровень белка s100B в сыворотке крови до и после применения севофлурана и пропофола.
Обсуждение
В доступной литературе представлены единичные публикации по изучению медиаторов воспаления и маркеров нейронального повреждения у детей первого года жизни, а также данные, касающиеся референсных значений цитокинов с учетом возраста пациента (табл. 4) [15—17].
Таблица 4. Значения цитокинов у детей в зависимости от возраста
0—5 лет | 6—17 лет | ≥17 лет | |
ИЛ-6 (пг/мл) | 1,6—9,2 | 9,19—5,18 | До 3,3 |
ИЛ-8 (пг/мл) | 23,7—32 | 28,2—39 | До 10 |
ИЛ-10 (пг/мл) | 3,3—5,5 | 8,9—13,7 = | До 9,1 |
ФНО-α (пг/мл) | 2,2—3,5 | 34,4—7,2 | До 8,1 |
s100B (нг/л) | Ниже 90 нг/л |
Примечание. Референсные значения в сыворотке крови указаны производителем реактивов, использованных в нашем исследовании.
Изменение уровней цитокинов до и после непродолжительной экспозиции севофлурана и сравнимой по времени седации пропофолом в процессе проведения МРТ-исследования головного мозга у детей первого года жизни без хирургического стимула (до реконструктивного нейрохирургического вмешательства) демонстрирует возможные механизмы формирования иммунного ответа на действие общего анестетика [18]. Статистически значимое повышение уровня провоспалительного цитокина ИЛ-6 свидетельствует об активации провоспалительного звена СВО после воздействия севофлурана и пропофола [18—20]. По данным ряда авторов, полученным в исследованиях на животных, в большинстве случаев отмечается повышение концентрации ИЛ-6 после воздействия севофлураном и значительно реже после применения пропофола [3, 21]. Можно предположить, что увеличение концентрации ИЛ-6 после внутривенной анестезии (седации) пропофолом связано с особенностью и незрелостью механизмов иммунной регуляции у детей первого года жизни, у которых триггером для запуска универсальной саногенетической реакции организма в виде асептического СВО может быть любой анестетический агент.
Отсутствие статистически значимых различий в концентрации ИЛ-8 и ИЛ-10 до и после воздействия севофлурана и пропофола [20, 22—24], с нашей точки зрения, также можно объяснить избирательными механизмами иммунологической реактивности, связанными с младшим возрастом (до 1 года жизни) обследуемых детей.
Статистически незначимое увеличение концентрации ФНО-α мы наблюдали в случае применения севофлурана. Однако даже статистически незначимый результат, на наш взгляд, позволяет рассуждать о влиянии общей анестезии севофлураном на развивающийся мозг. В недавних исследованиях отмечено, что при использовании севофлурана у детей с развитием послеоперационной когнитивной дисфункции уровень ФНО-α статистически значимо повышался [21, 25, 26]. В настоящее время существует достаточное количество исследований, посвященных нейропротекции с применением севофлурана, но они касаются взрослых и детей старшего возраста [22, 27, 28]. В отношении пропофола мы получили данные о неизменном уровне ФНО-α до и после его применения. Такие результаты совпадают с данными зарубежных коллег в контексте изучения антиоксидантных свойств пропофола [4, 29—31]. По данным литературы, пропофол не вызывает увеличения синтеза ФНО-α и усиления провоспалительного пула цитокинов [8, 9, 11, 23]. В нашем исследовании при воздействии пропофола исходные показатели ФНО-α в 3 раза превышали верхнюю границу референсных значений и практически не изменились после индукции и поддержания общей анестезии пропофолом в дозе 2,5 мг на 1 кг массы тела в час. Вероятно, пропофол вызывает более мягкий и сбалансированный асептический СВО у детей младшей возрастной группы — от 1 мес до 1 года.
В процессе развития мозга при наличии сложной нейрохирургической патологии в виде краниосиностоза, при котором в полости черепа есть пространственные ограничения для быстро увеличивающегося в объеме головного мозга, риски формирования неврологического дефицита, включая нейрокогнитивную дисфункцию, очень велики. Важно не вмешиваться в сложную иерархию взаимодействия иммунной и нейроэндокринной систем, формирование путей передачи нейротрансмиссии, созревание и миелинизацию нервных трактов и т.д. С этих позиций в случае проведения оперативного вмешательства перед анестезиологом возникает задача выбора общей анестезии с минимальным «нейротоксичным» влиянием на процессы синаптогенеза, нейронального апоптоза, что, в свою очередь, может положительно сказываться на дальнейшем развитии мозга [20, 29, 30, 32]. В выполненных ранее исследованиях, преимущественно на взрослой популяции и у детей подросткового возраста, показано, что активация системного воспалительного ответа и связанного с ним нейровоспаления в отдаленном периоде приводила к запуску нейродегенеративных процессов и ухудшению нейрокогнитивных функций [25, 26, 30, 33]. Следует напомнить, что члены суперсемейства рецепторов активированного ФНО-α — CD40 и CD95 играют важную роль в запуске и регуляции апоптоза: система CD40—CD40L стимулирует выживание, а система CD95—CD95L вызывает гибель клеток [34].
В обоих случаях — севофлурановой анестезии и седации пропофолом — после воздействия анестетика выявлено изменение концентрации наиболее изученного маркера повреждения головного мозга — нейроспецифического белка s100B, который представлен преимущественно в глиальных клетках головного мозга и в субпопуляциях нейронов. При анестезии севофлураном повышение было статистически значимым (p<0,05). Как внутриклеточный регулятор s100B влияет на фосфорилирование протеинов, энергетический метаболизм, кальциевый гомеостаз, клеточную пролиферацию, дифференциацию и миграцию [35]. Как внеклеточный сигнал в низких физиологических концентрациях s100B защищает нейроны от апоптоза, стимулирует рост нервов и пролиферацию астроцитов, подавляет реакцию астроцитов и микроглии на нейротоксические воздействия [35, 36]. Однако высокие дозы s100B вызывают гибель нейронов, поэтому значительное повышение его уровня рассматривается как ассоциированное с поражением нейрональных клеток [36]. В доступной нам литературе мы не нашли информации о конкретных значениях s100B, которые свидетельствовали бы о высоких или низких концентрациях данного белка. Наиболее изучено влияние высоких доз белка s100B на отдаленные последствия у взрослых [24, 36]; в детской практике, особенно у детей первого года жизни, данные весьма скудны и противоречивы. Таким образом, представляется целесообразным дальнейшее изучение уровней белка s100B с обозначением референсных значений у детей различных возрастных групп, по которым можно будет прогнозировать нейротоксический эффект фармакологического воздействия на развивающийся мозг.
Интерпретация результатов в нашем исследовании строится на предположении, что фактор, влияющий на динамику исследуемых показателей (в нашем случае это анестетик, длительность его воздействия, группа детей) — маркеров СВО и нейронального повреждения (белок s100B), является недостаточно сильным, следовательно, необходимо изменить условия для дальнейшего исследования: увеличить число выборки исследуемых пациентов или включить в исследование случаи более длительного воздействия анестетика.
Выводы
1. Кратковременная экспозиция ингаляционного анестетика севофлурана и гипнотика пропофола без хирургического воздействия запускает системную воспалительную реакцию в виде статистически значимого изолированного повышения уровня провоспалительного цитокина интерлейкина-6.
2. Повышение концентрации нейроспецифического белка s100B после кратковременного воздействия ингаляционного анестетика севофлурана 2,0—2,5 об.% (1 МАК) без хирургического стимула свидетельствует, по нашему мнению, об активации механизмов нейронального апоптоза у детей младшего возраста с краниосиностозом.
Участие авторов: концепция и дизайн исследования — Саввина И.А., Гурская В.И.; сбор и обработка материала — Гурская В.И., Иванов В.П., Дрягина Н.В., Саввина И.А.; статистический анализ данных — Гурская В.И., Иванов В.П., Дрягина Н.В., Саввина И.А.; написание текста — Гурская В.И., Саввина И.А.; редактирование — Саввина И.А., Дрягина Н.В., Александрович Ю.С., Хачатрян В.А.
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
- Гурская В.И., Саввина И.А. Применение ингаляционного анестетика севофлурана в педиатрической анестезиологии (обзор литературы). Тольяттинский медицинский консилиум. 2018;S1:61-65.
- Михельсон В.А. Анестезиология и интенсивная терапия в педиатрии. М.: Медицина; 2009.
- Hirotsu A, Iwata Y, Tatsumi K, Miyai Y, Matsuyama T, Tanaka T. Maternal exposure to volitile anesthetics induces IL-6 in fetal braines and affects neuronal development. European Journal of Pharmacology. 2019;863:172682. https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2019.172682
- Chidambaran V, Costandi A, D’Mello A. Propofol: A Review of its Role in Pediatric Anesthesia and Sedation. CNS Drugs. 2015;29(7):543-563. https://doi.org/10.1007/s40263-015-0259-6
- Pasternak JJ. Neuroanesthesiology Update. Journal of Neurosurgical Anesthesiology. 2020;32(2):97-119. https://doi.org/10.1097/ana.0000000000000676
- Lamsal R, Rath GP. Pediatric neuroanesthesia. Current Opinion in Anaesthesiology. 2018;31(5):539-543. https://doi.org/10.1097/aco.0000000000000630
- Саввина И.А. Роль общих анестетиков в модуляции системного воспалительного ответа в периоперационном периоде. Трансляционная медицина. 2017;4(5):28-37.
- Cruz FF, Rocco PR, Pelosi P. Anti-inflammatory properties of anesthetic agents. Critical Care. 2017;21(1):67. https://doi.org/10.1186/s13054-017-1645-x
- Kurosawa S, Kato M. Anesthetics, immune cells and immune responses. Journal of Anesthesia. 2008;22(3):263-77. https://doi.org/10.1007/s00540-008-0626-2
- Wagner M, Ryu YK, Smith SC, Mintz CD. Review: effects of anesthetics on brain circuit formation. Journal of Neurosurgical Anesthesiology. 2014; 26(4):358-362. https://doi.org/10.1097/ana.0000000000000118
- Jackson WM, Gray CD, Jiang D, Schaefer ML, Connor C, Mintz CD. Molecular mechanisms of anesthetic neurotoxicity: a review of the current literature. Journal of Neurosurgical Anesthesiology. 2016;28(4):361-372. https://doi.org/10.1097/ana.0000000000000348
- Stollings LM, Jia LJ, Tang P, Dou H, Lu B, Xu Y. Immune modulation by volatile anesthetics. Anesthesiology. 2016;125:399-411. https://doi.org/10.1097/aln.0000000000001195
- Riedel B, Browne K, Silbert B. Cerebral protection: inflammation, endothelial dysfunction, and postoperative cognitive dysfunction. Current Opinion in Anaesthesiology. 2014;27:89-97. https://doi.org/10.1097/aco.0000000000000032
- Mosher KI, Andres RH, Fukuhara T, Bieri G, Hasegawa-Moriyama M, He Y, Guzman R, Wyss-Coray T. Neural progenitor cells regulate microglia functions and activity. Nature Neuroscience. 2012;15(11):1485-1487. https://doi.org/10.1038/nn.3233
- Decker ML, Grobusch MP, Ritz N. Influence of Age and Other Factors on Cytokine Expression Profiles in Healthy Children-A Systematic Review. Frontiers in Pediatrics. 2017;5:255. https://doi.org/10.3389/fped.2017.00255
- Berdat PA, Wehrle TJ, Küng A, Achermann F, Sutter M, Carrel TP, Nydegger UE. Age-specific analysis of normal cytokine levels in healthy infants. Clinical Chemistry and Laboratory Medicine. 2003;41(10):1335-1339. https://doi.org/10.1515/CCLM.2003
- Kleiner G, Marcuzzi A, Zanin V, Monasta L, Zauli G. Cytokine levels in the serum of healthy subjects. Mediators of Inflammation. 2013;2013:434010. https://doi.org/10.1155/2013/434010
- Schneemilch C, Schilling T, Bank U. Effect s of general anesthesia on inflammation. Best Practice and Research. Clinical Anaesthesiology. 2004; 18(3):493-507. https://doi.org/10.1016/j.bpa.2004.01.002
- Banks WA, Kastin AJ, Broadwell RD. Passage of cytokines across the blood-brain barrier. Neuroimmunomodulation. 1995;2:241-248. https://doi.org/10.1159/000097202
- Purdon PL, Pavone KJ, Akeju O, Smith AC, Sampson AL, Lee J, Brown EN. The Ageing Brain: Age-dependent changes in the electroencephalogram during propofol and sevoflurane general anaesthesia. British Journal of Anaesthesia. 2015;115(1):i46-i57. https://doi.org/10.1093/bja/aev213
- Eizaga Rebollar R, García Palacios MV, Morales Guerrero J, Torres Morera LM. Neurotoxicity versus Neuroprotection of Anesthetics: Young Children on the Ropes? Paediatric Drugs. 2017;19(4):271-275. https://doi.org/10.1007/s40272-017-0230-8
- Payne RS, Akca O, Roewer N, Schurr A, Kehl F. Sevoflurane-induced preconditioning protect against cerebral ischemic neuronal damage in rats. Brain Research. 2005;1034(1-2):147-152. https://doi.org/10.1016/j.brainres.2004.12.006
- Reuter S, Gupta SC, Chaturvedi MM, Aggarwal BB. Oxidative stress, inflammation, and cancer: how are they linked? Free Radical Biology and Medicine. 2010;49(11):1603-1616. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2010.09.006
- Arrais AC, Melo LHMF, Norrara B, Almeida MAB, Freire KF, Melo AMMF, Oliveira LC, Lima FOV, Engelberth RCGJ, Cavalcante JS, Araújo DP, Guzen FP, Freire MAM, Cavalcanti JRLP. S100B protein: general characteristics and pathophysiological implications in the Central Nervous System. The International Journal of Neuroscience. 2020;19:1-9. https://doi.org/10.1155/2019/1919538
- Meyer RR. Isoflurane is associated with a similar incidence if emergence agitation/delirium as sevoflurane in young children — a randomized controlled study. Paediatric Anaesthesia. 2007;17(1):56-60. https://doi.org/10.1111/j.1460-9592.2006.01998.x
- Fan CH, Peng B, Zhang FC. The postoperative effect of sevoflurane inhalational anesthesia on cognitive function and inflammatory response of pediatric patients. European Review for Medical and Pharmacological Sciences. 2018;22(12):3971-3975. https://doi.org/10.26355/eurrev_201806_15281
- Codaccioni JL, Velly LJ, Moubarik C, Bruder NJ, Pisano PS, Guillet BA. Sevoflurane preconditioning against focal cerebral ischemia. Anesthesiology. 2009;110(6):1271-1278. https://doi.org/10.1097/aln.0b013e3181a1fe68
- Ramos Ramos V, Mesa Suárez P, Santotoribio JD, González García MÁ, Muñoz Hoyos A. Efecto neuroprotector del sevoflurano en anestesia general. Medicina Clínica. 2017;148(4):158-160. https://doi.org/10.1016/j.medcli.2016.10.039
- Kotani Y, Shimazawa M, Yoshimura S, Iwama T, Hara H. The experimental and clinical pharmacology of propofol, an anesthetic agent with neuroprotective properties. CNS Neuroscience and Therapeutics. 2008;14(2):95-106. https://doi.org/10.1111/j.1527-3458.2008.00043.x
- Qiu M, Scheinost D, Ramani R, Constable RT. Multi-modal analysis of functional connectivity and cerebral blood flow reveals shared and unique effects of propofol in large-scale brain networks. Neuroimage. 2017;148: 130-140. https://doi.org/10.1016/j.neuroimage.2016.12.080
- Kim S, Hahn S, Jang M, Choi Y, Hong H, Lee J-H, Kim H-S. Evaluation of the safety of using propofol for paediatric procedural sedation: A systematic review and meta-analysis. Scientific Reports. 2019;9(1):12245. https://doi.org/10.1038/s41598-019-48724-x
- Vutskits L, Culley DJ. GAS, PANDA, MASK: No evidence of clinical anesthetic neurotoxicity! Anesthesiology. 2019;131(4):762-764. https://doi.org/10.1097/aln.0000000000002863
- Marsh DF. Isoflurane vs sevoflurane in emergence delirium: a misleading conclusion. Paediatric Anaesthesia. 2008;18(1):81-82. https://doi.org/10.1111/j.1460-9592.2007.02350.x
- Liggett WH Jr, Sidransky D. Role of the p16 tumor suppressor gene in cancer. Journal of Clinical Oncology. 1998;16(3):1197-1206. https://doi.org/10.1200/JCO.1998.16.3.1197
- Schäfer BW, Heizmann CW. The S100 family of EF-hand calzium-binding proteins: function and pathology. Trends in Biochemical Sciences. 1996; 21(4):134-140. https://doi.org/10.1016/s0968-0004(96)80167-8
- Steiner J, Bernstein HG, Bielau H, Berndt A, Brisch R, Mawrin C, Keilhoff G, Bogerts B. Evidence for a wide extra-astrocytic distribution of S100B in human brain. BMC Neuroscience. 2007;8:2. https://doi.org/10.1186/1471-2202-8-2
Рекомендуем статьи по данной теме:
Злокачественная гипертермия, ассоциированная с вариантом неопределенной клинической значимости с.12146А>C (р.Glu4049Ala) в гене RYR1: клиническое наблюдение.Анестезиология и реаниматология. 2026;(4):120-124
Методологическое качество российских клинических рекомендаций: метаэпидемиологическое исследование.Медицинские технологии. Оценка и выбор. 2026;48(2):58-67
Хирургия краниосиностозов у детей с использованием технологии дополненной реальности.Вопросы нейрохирургии имени Н.Н. Бурденко. 2026;90(3):28-36
Диагностика и хирургическое лечение сосудистых аномалий у детей: описание клинического случая.Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2026;(5):110-114
Персонализированный ИИ-ассистент для медицинского сопровождения матери и ребенка с использованием интеллектуальных диалоговых систем (обзор литературы).Проблемы репродукции. 2026;32(2):6-16
Гемодинамический ответ на начальный этап общей анестезии при коронарном шунтировании: проспективное клиническое исследование.Анестезиология и реаниматология. 2026;(2):32-38
Первое клиническое применение аутологичного фибринового клея Vivostat в нейрохирургии Казахстана и Центральной Азии.Вопросы нейрохирургии имени Н.Н. Бурденко. 2026;90(2):70-76
Новый способ устранения скафоцефалии расходящимися продольными костными теменными лоскутами по типу иголок дикобраза.Пластическая хирургия и эстетическая медицина. 2026;(1):56-63
Нейрокогнитивные расстройства после операций на щитовидной железе: рандомизированное контролируемое исследование.Анестезиология и реаниматология. 2025;(5):28-36
Влияние севофлурана и пропофола на уровни ядерной ДНК и митохондриальной ДНК в плазме крови у детей с краниосиностозом.Анестезиология и реаниматология. 2024;(6):55-62


