Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Мариям Утежановна Сергалиева

ФГБОУ ВО «Астраханский государственный медицинский университет» Минздрава России, Астрахань, Россия

Александра Александровна Цибизова

ФГБОУ ВО «Астраханский государственный медицинский университет» Минздрава России, Астрахань, Россия

Анна Леонидовна Ясенявская

ФГБОУ ВО «Астраханский государственный медицинский университет» Минздрава России, Астрахань, Россия

Марина Александровна Самотруева

ФГБОУ ВО «Астраханский государственный медицинский университет» Минздрава России, Астрахань, Россия

Людмила Александровна Андреева

ФГБУ «Национальный исследовательский центр «Курчатовский институт», Москва, Россия

Николай Федорович Мясоедов

ФГБУ «Национальный исследовательский центр «Курчатовский институт», Москва, Россия

Изучение влияния нейропептидов AKTГ(4-7)-Pro-Gly-Pro и АКТГ(6-9)-Pro-Gly-Pro на поведение лабораторных животных и уровень BDNF в условиях гипофункции щитовидной железы

Авторы:

Сергалиева М.У., Цибизова А.А., Ясенявская А.Л., Самотруева М.А., Андреева Л.А., Мясоедов Н.Ф.

Подробнее об авторах

Журнал: Российский журнал боли. 2026;24(2): 5‑11

Прочитано: 183 раза


Как цитировать:

Сергалиева М.У., Цибизова А.А., Ясенявская А.Л., Самотруева М.А., Андреева Л.А., Мясоедов Н.Ф. Изучение влияния нейропептидов AKTГ(4-7)-Pro-Gly-Pro и АКТГ(6-9)-Pro-Gly-Pro на поведение лабораторных животных и уровень BDNF в условиях гипофункции щитовидной железы. Российский журнал боли. 2026;24(2):5‑11.
Sergalieva MU, Tsibizova AA, Yasenyavskaya AL, Samotrueva MA, Andreeva LA, Myasoedov NF. Effect of neuropeptides ACTH(4-7)-Pro-Gly-Pro and ACTH(6-9)-Pro-Gly-Pro on behavior of laboratory animals and serum BDNF under hypothyroidism. Russian Journal of Pain. 2026;24(2):5‑11. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/pain2026240215

Рекомендуем статьи по данной теме:

Введение

Исследования последних лет показывают, что на сегодняшний день наблюдается тенденция к росту количества заболеваний щитовидной железы (ЩЖ), опосредованных нарушением регулирующих механизмов со стороны центральных структур гипоталамо-гипофизарно-тиреоидного комплекса. Многочисленными научными исследованиями выявлено, что возникающий тиреоидный гормональный дисбаланс при заболеваниях ЩЖ обусловливает развитие метаболического синдрома, нарушений сердечно-сосудистой системы, а также нейропсихических изменений, которые часто являются первыми клиническими проявлениями тиреоидной патологии [1, 2].

Отмечено, что патология ЩЖ сопровождается поведенческими и когнитивными нарушениями, степень выраженности которых зависит от уровня тиреоидных гормонов (ТГ). Установлено, что тиреопатии часто протекают на фоне замедления процессов высшей нервной деятельности, мышления и речи, снижения памяти, нарастания дискинезии, депрессивного расстройства, в ряде тяжелых случаев — деменции и т.д. [3, 4]. Доказано, что патофизиологические изменения в мозговой ткани, связанные с ТГ, разнообразны и включают изменения в нейротрансмиссии и экспрессии глиальных клеток, дисфункцию гематоэнцефалического барьера, что формирует повышенный риск развития цереброваскулярных заболеваний, а также нейровоспалительных процессов в контексте аутоиммунной патологии ЩЖ. Неоспоримым является тот факт, что дефицит тиреоидных гормонов, являющихся регуляторами метаболизма нейроцитов, нарушает нормальное развитие центральной нервной системы и ее функции, однако существует достаточно информации, свидетельствующей и о пагубном влиянии гипертиреоидного состояния на структурные компоненты нервной ткани [5]. Результаты исследования показали, что, например, неонатальный гипертиреоз способствует развитию признаков дефицита миелина и снижению количества олигодендроглиальных клеток. Установлено, что длительный гипертиреоз может активировать апоптотические механизмы в миелинобразующих и олигодендроглиальных клетках, что и приводит к развитию различной неврологической патологии [6]. Доказано, что повышенный уровень трийодтиронина активирует фагоцитарную активность микроглии, в результате чего наблюдается снижение плотности синапсов, что приводит к ухудшению межнейронных контактов, замедляется рост аксонов, нейроны прекращают воспринимать афферентные импульсы, в связи с чем снижается ответная реакция на внешние раздражители, а также на нервные и гормональные стимулы [7].

Тяжесть клинических неврологических и психокогнитивных проявлений связана с уровнем нейротрофического фактора головного мозга (brain-derived neurotrophic factor — BDNF), экспрессирующегося в нервной системе. BDNF является членом семейства нейротрофинов, который играет важную роль в нейронной дифференцировке, росте нейритов и синаптической пластичности [8]. Доказано, что BDNF-содержащие секреторные везикулы присутствуют в окончаниях аксонов и дендритах нейронов. BDNF играет важную роль в развитии центральной нервной системы, нейрогенезе, выживании нейронов, миграции, росте аксонов и дендритов и формировании синапсов, а также в процессах, связанных с памятью [9]. Было показано, что BDNF регулирует развитие, пластичность и выживание дофаминергических, холинергических и серотонинергических нейронов. Кроме того, он регулирует высвобождение глутаматергических нейротрансмиттеров и способствует развитию ГАМКергических нейронов. BDNF широко экспрессируется во всем мозге человека, включая кору головного мозга, гиппокамп, базальный передний мозг, полосатое тело, гипоталамус, ствол мозга, лимбические структуры и мозжечок [10]. Это делает BDNF ключевым фактором в обучении и памяти, когнитивных функциях и формировании нейронных связей [11]. Ряд исследований свидетельствуют о том, что BDNF играет важную роль в патогенезе депрессии, нейротрофической регуляции комплекса физиологических и биохимических процессов, обеспечивающих нейропластичность, выступая в качестве биомаркера для диагностических и прогностических целей [12, 13].

Принимая во внимание имеющиеся литературные данные, посвященные изучению нейропсихических расстройств при заболеваниях ЩЖ, необходимым становится поиск и изучение средств коррекции возможных нейроэндокринных нарушений. В настоящий момент с целью коррекции нарушенных функций нейроэндокринной системы могут быть рассмотрены пептидные соединения, которые на сегодняшний день используются в качестве основы для разработки лекарственных средств, обладающих широким фармакологическим спектром [14, 15].

В последнее время российскими и зарубежными учеными активно изучаются биологические и фармакологические свойства регуляторных пептидов семейства меланокортинов, широкий спектр активности которых позволяет считать их перспективными фармакоагентами в патогенетической терапии различных состояний [16, 17]. Установлено, что представитель данной группы семакс оказывает влияние на когнитивные функции мозга, модулируя экспрессию и активацию системы BDNF/trkB в гиппокампе крыс [18]. Доказано, что семакс снижает проявления ишемического повреждения нервной ткани, ингибируя проявления сосудистого стаза и оказывая трофическое действие [19].

Несмотря на наличие исследований фармакологической активности пептидных соединений при различных патологических состояниях, данных об их нейротропном влиянии в условиях эндокринных нарушений, в частности со стороны щитовидной железы, представлены в литературе в недостаточном объеме.

Цель исследования — изучение влияния нейропептидов AKTГ(4-7)-Pro-Gly-Pro и АКТГ(6-9)-Pro-Gly-Pro на поведение лабораторных животных и сывороточный уровень BDNF в условиях экспериментального гипотиреоза.

Материал и методы

Все исследования выполнялись на крысах-самцах массой 250—270 г. Животные, полученные из экспериментально-биологической клиники (вивария) Научно-исследовательского центра ФГБОУ ВО «Астраханский государственный медицинский университет» Минздрава России, содержались в соответствии с правилами, регламентированными нормативными документами по работе и содержанию лабораторных животных и этическим комитетом ФГБОУ ВО «Астраханский государственный медицинский университет» Минздрава России (протокол №8 от 22.12.2023). Крысы были разделены на четыре группы по 10 особей: 1-я группа — интактные животные (контроль); 2-я группа — особи с индуцированным гипотиреозом; 3-я и 4-я группы — животные, получавшие на фоне гипотиреоза AKTГ(4-7)-Pro-Gly-Pro (семакс) и АКТГ(6-9)-Pro-Gly-Pro соответственно. Гипофункцию ЩЖ у лабораторных животных формировали путем введения мерказолила (ОАО «Акрихин», Россия) в дозе 5 мг/кг в желудок через зонд в течение 42 дней. Для коррекции гипотиреоза применяли пептиды AKTГ(4-7)-Pro-Gly-Pro (далее AKTГ(4-7)-PGP) и АКТГ(6-9)-Pro-Gly-Pro (далее АКТГ(6-9)-PGP), синтезированные в НИЦ «Курчатовский институт» под руководством академика РАН Н.Ф. Мясоедова. Субстанции, растворенные в воде для инъекций, вводили крысам внутрибрюшинно в дозе 100 мкг/кг/сут в течение 3 нед, начиная с 22-го дня введения мерказолила.

Для подтверждения развития гипофункции ЩЖ у лабораторных животных в сыворотке крови определяли содержание гормонов: трийодтиронина (Т3), тироксина (Т4), тиреотропного гормона (ТТГ), а также проводили оценку поведенческих показателей, измерение массы крыс, ректальной температуры и частоты сердечных сокращений.

Оценку психоэмоционального статуса грызунов осуществляли с использованием теста «Приподнятый крестообразный лабиринт» (ПКЛ), установка для проведения которого представляет собой приподнятую над полом конструкцию, состоящую из перекрещенных закрытых и открытых пар рукавов и имеющую на их пересечении центральную зону. Подопытное животное помещали в центр лабиринта и на протяжении 3 мин фиксировали параметры: время, проведенное в центре, в открытых и закрытых рукавах, число их посещений, число «выглядываний» из закрытых рукавов, количество выходов в центр и его пересечений, стоек, груминговых реакций и продолжительность фризинга [20].

Влияние изучаемых регуляторных пептидов на уровень BDNF в сыворотке крови крыс оценивали методом иммуноферментного анализа с использованием иммунологического анализатора Multiscan FC и с применением высокочувствительных наборов ELISA Kit for Brain Derived Neurotrophic Factor (BDNF) (Cloud-Clone Corp., Китай).

Статистическую обработку полученных результатов проводили при помощи программы StatTech с учетом U-критерия Манна—Уитни. Полученные данные оценивали методом Шапиро—Уилка на нормальность распределения признаков, которые представлены в виде M±m, где М — среднее арифметическое, m — ошибка среднего. Различия между группами признавались статистически значимыми при уровне p≤0,05.

Результаты

Экспериментальное моделирование гипотиреоза привело к снижению уровня гормонов щитовидной железы: Т3 — на 56%, Т4 — на 61% (p≤0,01), а также к повышению концентрации ТТГ в 9 раз (p≤0,01) в сравнении с показателями в контрольной группе. Кроме того, у крыс отмечались видимые изменения шерстяного покрова, увеличение массы тела на 24% (p≤0,05), снижение частоты сердечных сокращений на 37% (p≤0,05) и ректальной температуры до 35,7±0,2°С.

При изучении поведенческих реакций в тесте ПКЛ на фоне введения мерказолила было зафиксировано снижение числа заходов в открытые рукава на 36% (p≤0,05), выходов в центральную зону лабиринта на 53% (p≤0,01) и стоек на 33% (p≤0,05), а также повышение количества заходов в закрытые рукава на 61% (p≤0,01) относительно контрольной группы (рис. 1). Кроме того, в условиях гипофункции ЩЖ отмечалось сокращение времени, проведенного на открытых рукавах и в центре теста ПКЛ, соответственно на 38% и 24% (p≤0,05) по отношению к значениям в контрольной группе (рис. 2).

Рис. 1. Влияние AKTГ(4-7)-Pro-Gly-Pro и АКТГ(6-9)-Pro-Gly-Pro на двигательную активность животных в тесте «Приподнятый крестообразный лабиринт» в условиях экспериментального гипотиреоза.

* — p≤0,05, ** — p≤0,01 — относительно контрольной группы; # — p≤0,05, ## — p≤0,01 — относительно группы с гипотиреозом.

Рис. 2. Влияние AKTГ(4-7)-Pro-Gly-Pro и АКТГ(6-9)-Pro-Gly-Pro на ориентировочно-исследовательскую активность животных в тесте «Приподнятый крестообразный лабиринт» в условиях экспериментального гипотиреоза.

* — p≤0,05 — относительно контрольной группы; # — p≤0,05, ## — p≤0,01 — относительно группы с гипотиреозом.

Введение AKTГ(4-7)-PGP и АКТГ(6-9)-PGP на фоне экспериментальной модели гипотиреоза способствовало коррекции показателей двигательной активности по сравнению со 2-й группой (гипотиреоидными крысами): отмечалось увеличение количества посещений открытых рукавов на 25% и 40% (p≤0,05), выходов в центр на 38% (p≤0,05) и 76% (p≤0,01), стоек на 40% (p≤0,05) и 60% (p≤0,01); а также снижение числа посещений закрытых рукавов на 48% (p≤0,01) и 31% (p≤0,05) соответственно (см. рис. 1).

Кроме того, применение AKTГ(4-7)-PGP и АКТГ(6-9)-PGP на фоне гипофункции ЩЖ привело к повышению времени пребывания грызунов в открытых рукавах лабиринта на 53% и 82% (p≤0,01) и времени в центральной зоне теста на 22% и 36% соответственно по сравнению с крысами 2-й группы (p≤0,05) (см. рис. 2).

При изучении показателей тревожности в условиях развития гипотиреоидного состояния у крыс в сравнительном аспекте с особями контрольной группы отмечено повышение числа «выглядываний» из закрытых рукавов в 1,5 раза (p≤0,01), актов груминга на 83% (p≤0,01), а также установлено статистически значимое увеличение продолжительности фризинга (рис. 3).

Рис. 3. Влияние AKTГ(4-7)-Pro-Gly-Pro и АКТГ(6-9)-Pro-Gly-Pro на уровень тревожности животных в тесте «Приподнятый крестообразный лабиринт» в условиях экспериментального гипотиреоза.

** — p≤0,01 — относительно контрольной группы; # — p≤0,05, ## — p≤0,01 — относительно группы с гипотиреозом.

У крыс в группах с индуцированным гипотиреозом, получавших AKTГ(4-7)-PGP и АКТГ(6-9)-PGP соответственно, наблюдалось снижение количества «выглядываний» из закрытых рукавов на 25% и 32%; груминговых реакций на 22% и 36% (p≤0,05) по отношению к особям с гипофункцией ЩЖ. Введение AKTГ(4-7)-PGP гипотиреоидным животным привело к сокращению времени фризинга на 40% (p≤0,05). У грызунов, получавших АКТГ(6-9)-PGP, фризинг не наблюдался (по сравнению с животными 2-й группы p≤0,01) (см. рис. 3).

При проводимой в нашем эксперименте оценке сывороточного уровня BDNF в условиях гипофункции ЩЖ отмечено снижение значений данного показателя на 26% (p≤0,05) в сравнении с животными контрольной группы (рис. 4).

Рис. 4. Влияние AKTГ(4-7)-Pro-Gly-Pro и АКТГ(6-9)-Pro-Gly-Pro на сывороточный уровень BDNF в условиях экспериментального гипотиреоза.

* — p≤0,05 — относительно контрольной группы; # — p≤0,05 — относительно группы с гипотиреозом.

Введение AKTГ(4-7)-PGP и АКТГ(6-9)-PGP животным с экспериментальным гипотиреозом привело к увеличению уровня BDNF соответственно на 24% и 44% (p≤0,05) относительно животных 2-й группы (см. рис. 4).

Обсуждение

Патология функции ЩЖ сопровождается психоэмоциональными нарушениями различной степени выраженности, которые имеют свои закономерности развития в зависимости от различных факторов. В ряде исследований показано, что заболевания ЩЖ часто сопровождаются развитием депрессивных состояний, а также формированием эмоциональной лабильности и психомоторной заторможенности. Установлено, что одним из патогенетических механизмов развития этих нарушений является изменение секреции тиреоидных гормонов, оказывающих патологическое влияние на гипоталамус и кору головного мозга. При гипертиреозе поражение нервной системы связано с токсическим действием гормонов щитовидной железы, ускорением метаболизма и повышением чувствительности к катехоламинам. Кроме того, отмечено участие гормонов щитовидной железы в синтезе белков нервной системы, синаптогенезе и нейрональной дифференцировке [21, 22]. Развитие депрессивных состояний при дисфункциях ЩЖ связано со снижением уровня серотонина в головном мозге, что является стимулирующим фактором для секреции гипоталамусом тиреотропин-рилизинг-гормона, тиреотропина гипофизом и последующей выработки Т4 и Т3 щитовидной железой. При рассмотрении взаимосвязи между заболеваниями щитовидной железы и депрессивным расстройством важно учитывать метаболизм гормонов ЩЖ в головном мозге. Установлено, что часть Т3 образуется в коре головного мозга, а большая часть — в результате преобразования Т4 за счет дейодирования в глиальных клетках. Тяжесть психокогнитивных и психоэмоциональных изменений на фоне повышенного уровня тироксина связана с экспрессией белка BDNF в гиппокампе. Установлено, что неврологические и поведенческие нарушения сопровождаются снижением экспрессии BDNF [23, 24]. Кроме того, результаты научных исследований говорят о значительном снижении уровня BDNF при депрессивном расстройстве [25]. Представленные данные свидетельствуют о двунаправленной причинно-следственной связи между депрессией и ЩЖ.

Результаты нашего эксперимента нашли отражение в вышесказанном. Полученные результаты показали, что в условиях экспериментального гипотиреоза в тесте ПКЛ у крыс наблюдается снижение двигательной и ориентировочно-исследовательской активности (уменьшение числа заходов в открытые рукава, выходов в центральную зону, времени пребывания в открытых рукавах и в центре лабиринта, стоек, увеличение количества заходов в закрытые рукава) на фоне повышения параметров тревожности (актов кратковременного груминга, количества «выглядываний» из закрытых рукавов и времени фризинга). Кроме того, на фоне гипофункции щитовидной железы было выявлено снижение уровня BDNF в сыворотке крови крыс.

Нормализация тиреоидного статуса, по данным многочисленных исследований, не всегда позволяет полностью устранить психоэмоциональные нарушения, в связи с чем определяется необходимость в дополнительной психофармакологической терапии [21]. Оценка параметров поведения грызунов в тесте ПКЛ в условиях введения AKTГ(4-7)-PGP и АКТГ(6-9)-PGP на фоне экспериментального гипотиреоза показала, что данные пептидные соединения способствуют коррекции вышеперечисленных поведенческих показателей, устраняя тревожные нарушения у лабораторных животных, а также восстанавливают уровень BDNF в сыворотке крови.

Заключение

Таким образом, при изучении влияния регуляторных пептидов AKTГ(4-7)-Pro-Gly-Pro и АКТГ(6-9)-Pro-Gly-Pro на психоэмоциональный статус крыс в тесте «Приподнятый крестообразный лабиринт» на фоне экспериментального гипотиреоза было выявлено, что исследуемые соединения оказывают психомодулирующее, противотревожное и нейротрофическое действие, корректируя поведенческие реакции и восстанавливая уровень нейротрофического фактора головного мозга (BDNF) в сыворотке крови лабораторных животных.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Аскаръянц В., Исомадинова Г., Эргашов К. Щитовидная железа и ее стадии развития в аспекте физиологии. in Library. 2022;22(3):26-33. 
  2. Мельниченко Г.А., Трошина Е.А., Платонова Н.М., Панфилова Е.А., Рыбакова А.А., Абдулхабирова Ф.М., Бостанова Ф.А. Йододефицитные заболевания щитовидной железы в Российской Федерации: современное состояние проблемы. Аналитический обзор публикаций и данных официальной государственной статистики (Росстат). Consilium Medicum. 2019;21(4):14-20.  https://doi.org/10.26442/20751753.2019.4.190337
  3. Дёмин Д.Б. Эффекты тиреоидных гормонов в развитии нервной системы (обзор). Журнал медико-биологических исследований. 2018;6(2):115-127.  https://doi.org/10.17238/issn2542-1298.2018.6.2.115
  4. Hernandez A. Cognitive function in hypothyroidism: what is that deiodinase again? J Clin Invest. 2019 Jan 02;129(1):55-57. Epub 2018 Dec 03. PMID: 30507611; PMCID: PMC6307957. https://doi.org/10.1172/JCI125203
  5. Liu YY, Brent GA. Thyroid hormone and the brain: Mechanisms of action in development and role in protection and promotion of recovery after brain injury. Pharmacology & Therapeutics. 2018 June;186:176-185. Epub 2018 Feb 09. PMID: 29378220; PMCID: PMC5962384. https://doi.org/10.1016/j.pharmthera.2018.01.007
  6. Niiyama T, Kuroiwa M, Yoshioka Y, Kitahara Y, Shuto T, Kakuma T, Ohta K, Nakamura KI, Nishi A, Noda M. Sex Differences in Dendritic Spine Formation in the Hippocampus and Animal Behaviors in a Mouse Model of Hyperthyroidism. Front Cell Neurosci. 2020 Sept 16;14:268. PMID: 33192304; PMCID: PMC7533561. https://doi.org/10.3389/fncel.2020.00268
  7. Гомазков О.А. Астроциты мозга и синаптический диссонанс: нейродегенеративная и психическая патология. Успехи современной биологии. 2020;140(2):130-139.  https://doi.org/10.31857/S0042132420010019
  8. Юсупов Ф.А., Юлдашев А.А. Биомаркеры нейродегенеративных заболеваний. Бюллетень науки и практики. 2021;7(9):341-353.  https://doi.org/10.33619/2414-2948/70/30
  9. Hung P-L, Hsu M-H, Yu H-R, Wu KLH, Wang F-S. Thyroxin Protects White Matter from Hypoxic-Ischemic Insult in the Immature Sprague-Dawley Rat Brain by Regulating Periventricular White Matter and Cortex BDNF and CREB Pathways. International Journal of Molecular Sciences. 2018 Aug 29;19(9):2573. PMID: 30158497; PMCID: PMC6164053. https://doi.org/10.3390/ijms19092573
  10. Швайковская А.А., Жанаева С.Я., Евсюкова А.В., Тихонова М.А., Даниленко К.В., Афтанас Л.И. Нейротрофический фактор мозга (BDNF) и его диагностическая значимость при измерении в крови: аналитический обзор. Якутский медицинский журнал. 2020;3(71):105-110.  https://doi.org/10.25789/YMJ.2020.71.27
  11. Mondal AC, Fatima M. Direct and indirect evidences of BDNF and NGF as key modulators in depression: role of antidepressants treatment. Int J Neurosci. 2019;129(3):283-296.  https://doi.org/10.1080/00207454.2018.1527328
  12. Зыкова Ю.В., Эверт Л.С., Потупчик Т.В. Нейротрофический фактор головного мозга как индикатор заболеваний центральной нервной системы. Врач. 2021;32(4):5-9.  https://doi.org/10.29296/25877305-2021-04-01
  13. Семкина А.А., Алифирова В.М., Титова М.А., Мальцева А.Н., Абаджян М.Б. Мозговой нейротрофический фактор при рассеянном склерозе. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2019;119(2-2):28-35.  https://doi.org/10.17116/jnevro20191192228
  14. Антипова Т.А., Колясникова К.Н., Волкова Ю.С., Антипов П.И., Кузнецова Е.А., Николаев С.В. Нейропротекторные свойства in vitro новых замещенных глипролинов. Фармакокинетика и фармакодинамика. 2018;3:31-36.  https://doi.org/10.24411/2587-7836-2018-10021
  15. Миронова Е.С., Линькова Н.С., Попович И.Г., Козина Л.С., Хавинсон В.Х. Нейропротекторные эффекты пептидов. Успехи геронтологии. 2020;33(2):299-306.  https://doi.org/10.34922/AE.2020.33.2.011
  16. Пожилова Е.В., Новиков В.Е. Фармакодинамика и клиническое применение нейропептида АКТГ4-10. Вестник Смоленской государственной медицинской академии. 2020;19(3):76-86.  https://doi.org/10.37903/vsgma.2020.3.10
  17. Yasenyavskaya AL, Samotrueva MA, Tsibizova AA, Bashkina OA, Myasoedov NF, Andreeva LA. Effects of neuropeptides on behavior of rats in open field test and experimentally induced social stress. Archiv EuroMedica. 2020;10(3):25-28.  https://doi.org/10.35630/2199-885X/2020/10/3.5
  18. Dolotov OV, Karpenko EA, Inozemtseva LS, Seredenina TS, Levitskaya NG, Rozyczka J, Dubynina EV, Novosadova EV, Andreeva LA, Alfeeva LYu, Kamensky AA, Grivennikov IA, Myasoedov NF, Engele J. Semax, an analog of ACTH(4-10) with cognitive effects, regulates BDNF and trkB expression in the rat hippocampus. Brain Research. 2006 Oct 30;1117(1):54-60. Epub 2006 Sept 22. PMID: 16996037. https://doi.org/10.1016/j.brainres.2006.07.108
  19. Stavchansky VV, Yuzhakov VV, Botsina AY, Skvortsova VI, Bondurko LN, Tsyganova MG, Limborska SA, Myasoedov NF, Dergunova LV. The effect of Semax and its C-end peptide PGP on the morphology and proliferative activity of rat brain cells during experimental ischemia: a pilot study. J Mol Neurosci. 2011 Oct 45(2):177-185. Epub 2010 July 09. PMID: 20617398. https://doi.org/10.1007/s12031-010-9421-2
  20. Каде А.Х., Кравченко С.В., Трофименко А.И., Поляков П.П., Липатова А.С., Ананьева Е.И., Чаплыгина К.Ю., Уварова Е.А., Терещенко О.А. Современные методы оценки уровня тревожности грызунов в поведенческих тестах, основанных на моделях без предварительного обусловливания. Кубанский научный медицинский вестник. 2018;25(6):171-176.  https://doi.org/10.25207/1608-6228-2018-25-6-171-176
  21. Синицына Ю.В., Котова С.М., Точилов В.А., Хетагурова Ф.К. Особенности психоэмоционального статуса пациентов с патологией щитовидной железы. Российский семейный врач. 2014;18(3):35-41. 
  22. Fukao A, Takamatsu J, Arishima T, Tanaka M, Kawai T, Okamoto Y, Miyauchi A, Imagawa A. Graves’ disease and mental disorders. Journal of Clinical & Translational Endocrinology. 2019 Oct 11;19:100207. PMID: 31763175; PMCID: PMC6864135. https://doi.org/10.1016/j.jcte.2019.100207
  23. Bruscolini A, Iannitelli A, Segatto M, Rosso P, Fico E, Buonfiglio M, Lambiase A, Tirassa P. Psycho-Cognitive Profile and NGF and BDNF Levels in Tears and Serum: A Pilot Study in Patients with Graves’ Disease. International Journal of Molecular Sciences. 2023 Apr 29;24(9):8074. PMID: 37175781; PMCID: PMC10178719. https://doi.org/10.3390/ijms24098074
  24. Chiera M, Draghetti S, De Ronchi D, Scaramelli AR, Fabbri C, Fanelli G, Serretti A. Hyperthyroidism and depression: a clinical case of atypical thyrotoxicosis manifestation. Int Clin Psychopharmacol. 2023 July 01;38(4):269-272. Epub 2023 Feb 08. PMID: 36853810. https://doi.org/10.1097/YIC.0000000000000438
  25. Miranda M, Morici JF, Zanoni MB, Bekinschtein P. Brain-Derived Neurotrophic Factor: A Key Molecule for Memory in the Healthy and the Pathological Brain. Front Cell Neurosci. 2019 Aug 07;13:363. PMID: 31440144; PMCID: PMC6692714. https://doi.org/10.3389/fncel.2019.00363

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.