Кузнецова В.С.

ФГБНУ «Медико-генетический научный центр им. акад. Н.П. Бочкова»;
ФГБУ НМИЦ «Центральный научно-исследовательский институт стоматологии и челюстно-лицевой хирургии» Минздрава России

Васильев А.В.

ФГБУ НМИЦ «Центральный научно-исследовательский институт стоматологии и челюстно-лицевой хирургии» Минздрава России, Москва, Россия;

Лаборатория генетики стволовых клеток ФГБУ «Медико-генетический научный центр» РАМН, Москва, Россия;

ФГАОУ ВО «Российский Университет Дружбы Народов», Москва, Россия

Григорьев Т.Е.

НИЦ «Курчатовский институт», Москва, Россия

Загоскин Ю.Д.

НИЦ «Курчатовский институт», Москва, Россия

Чвалун С.Н.

НИЦ «Курчатовский институт», Москва, Россия

Бухарова Т.Б.

ФГБНУ «Медико-генетический научный центр им. акад. Н.П. Бочкова»

Гольдштейн Д.В.

Лаборатория генетики стволовых клеток ФГБУ «Медико-генетический научный центр» РАМН, Москва, Россия

Кулаков А.А.

ФГБУ НМИЦ «Центральный научно-исследовательский институт стоматологии и челюстно-лицевой хирургии» Минздрава России

Перспективы использования гидрогелей в качестве основы для отверждаемых костно-пластических материалов

Авторы:

Кузнецова В.С., Васильев А.В., Григорьев Т.Е., Загоскин Ю.Д., Чвалун С.Н., Бухарова Т.Б., Гольдштейн Д.В., Кулаков А.А.

Подробнее об авторах

Журнал: Стоматология. 2017;96(6): 68‑74

Прочитано: 7881 раз


Как цитировать:

Кузнецова В.С., Васильев А.В., Григорьев Т.Е., и др. Перспективы использования гидрогелей в качестве основы для отверждаемых костно-пластических материалов. Стоматология. 2017;96(6):68‑74.
Kuznetsova VS, Vasilyev AV, Grigoriev TE, et al. The prospects of hydrogels usage as a basis for curable osteoplastic materials. Stomatology. 2017;96(6):68‑74. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/stomat201796668-74

Введение

В хирургической стоматологии при проведении операции дентальной имплантации необходимость в костной пластике возникает более чем в 50% случаев и требуется 27 млн европейцев в год [10].

В качестве заменителей аутогенной костной ткани в последнее столетие наиболее активно используются костные матриксы ксено- и аллогенного происхождения, среди которых самым продаваемым в мире является препарат Bio-Oss («Geistlich», Швейцария) [17, 18]. Он способствует остеокондукции, выступая в качестве каркаса для новообразованной костной ткани. Резорбция материала происходит со скоростью, достаточной для ремоделирования костной ткани и поддержания заданного объема на протяжении длительного времени. Зарекомендовавшие себя на протяжении длительного времени положительные свойства этого материала позволили ему стать эталоном сравнения во множестве экспериментов in vitro, in vivo и клинических испытаниях [27]. Однако, несмотря на большое число достоинств, Bio-Oss существенно уступает аутогенным костным трансплантатам в способности стимулировать неоостеогенез. Это связано с отсутствием остеоиндуктивных свойств Bio-Oss и возможной фиброзной инкапсуляцией гранул материала [54].

В целом как аутогенная костная стружка, так и ее ксеногенные аналоги, такие как Bio-Oss, нуждаются в дополнительных армирующих конструкциях в виде титановых сеток или костных блоков при замещении протяженных дефектов и барьерных мембран для обеспечения направленной костной регенерации [13]. Существует потребность в материалах, обладающих всеми достоинствами используемых на сегодняшний день препаратов и лишенных присущих им недостатков.

В последнее годы наблюдается рост интереса к такой группе материалов, как гидрогели, которые обладают высокой биосовместимостью и способностью имитировать высокогидратированные ткани организма [16]. Существуют технологии, позволяющие гидрогелям отверждаться после внесения в костный дефект, что, с одной стороны, улучшает их манипуляционные свойства, а с другой, позволяет отказаться от использования армирующих конструкций и мембран. В состав гидрогелей возможно включение клеток, остеоиндукторов и вирусов для создания тканеинженерных, белок- и ген-активированных конструкций, что в перспективе может обеспечить этому классу материалов лидирующие позиции на рынке костно-пластических материалов. Таким образом, отверждаемые гидрогели являются перспективными материалами для костно-пластических операций, а информация из разных областей науки: биологии, физики, химии и медицины, — требует систематизации актуальных данных для определения направления дальнейших разработок в этой области.

Виды гидрогелей

По происхождению полимеров, составляющих основу гидрогелей, их можно разделить на природные и синтетические. К природным можно отнести полипептиды и полисахариды. Синтетические полимеры делят на биодеградируемые и небиодеградируемые. При создании биомедицинских материалов в форме гидрогелей наиболее часто используют коллаген, альгинат, хитозан, желатин, гиалуроновую кислоту, целлюлозу и фиброин, а также сополимеры полилактида и полиэтиленгликоля [50].

Преимуществом материалов на основе природных полимеров является их высокая биосовместимость. В большинстве случаев их деградация возможна за счет действия ферментов организма. Недостатками этих материалов являются низкая механическая прочность и возможность возникновения иммунного ответа организма на их присутствие, а также нестабильность качества получаемого продукта. Положительными свойствами синтетических полимеров — высокие показатели механической прочности, по сравнению с природными полимерами, а также возможность более точного регулирования скорости деградации. Недостатками являются высокая стоимость таких материалов и низкая способность к биодеградации [59].

По типу сшивания гидрогели делятся на физические и химические. Так называемые «химические» гидрогели образуются за счет ковалентных и ионных сшивок. «Физические» гидрогели формируются с помощью водородных связей, амфифильных взаимодействий, электростатических комплексов, также за счет агрегации и зацепления молекул полимера [31]. Примерами гидрогелей, образованных за счет агрегации и зацеплений, могут служить материалы на основе желатина, гиалуроновой кислоты или полиэтиленгликоля. Их недостатками являются низкая механическая прочность и высокая текучесть, которые ограничивают их применение для замещения костных дефектов, подвергающихся высоким нагрузкам. Именно поэтому такие гидрогели чаще всего применяются в качестве скаффолдов для доставки остеоиндукторов [19].

В зависимости от механизма гелеобразования гидрогели делятся на отверждаемые без каких-либо внешних воздействий и отверждаемые в ответ на изменения внешних условий, таких как температура, изменение pH, ультразвуковое или электромагнитное воздействие, ультрафиолетовое излучение [59].

Полимеры, используемые для изготовления гидрогелей

Коллаген и желатин

Выделяют около 28 типов коллагена, среди которых коллаген I типа является наиболее распространенным [46]. Он формирует внеклеточный матрикс сухожилий и костной ткани. Желатин является продуктом денатурации коллагена и также, как и коллаген, обладает следующими положительными свойствами: способствует клеточной адгезии, обладает высокой пористостью, гидрофильностью и способностью к биодеградации под воздействием ферментов без возникновения иммунного ответа и воспаления [36].

Материалы на основе этих полимеров используются в качестве матриц для доставки клеток в составе тканеинженерных конструкций и позволяют включать остеоиндукторы и нуклеотиды с сохранением их активности [40, 45].

К недостаткам коллагена и желатина относятся высокая скорость биодеградации и низкие механические свойства [12].

Формирование коллагеновых и желатиновых гидрогелей происходит за счет физической сшивки при воздействии температуры или ультрафиолета. Химические коллагеновые и желатиновые гидрогели получают за счет ковалентного сшивания с альдегидами, генипином или карбодиимидами, однако в составе таких полимеров могут присутствовать потенциально токсические остатки [28]. С поликатионными молекулами, такими как хитозан, коллаген образует ионные сшивки. Также существуют ферментативные сшивающие агенты, такие как трансглутаминаза, которые положительно влияют на прочность, растяжение и снижают скорость деградации материалов под действием ферментов [39].

Гиалуроновая кислота

Гиалуроновая кислота является сополимером D-глюкуроновой кислоты и N-ацетил-D-глюкозамина и выступает в качестве сигнальной молекулы для миграции и пролиферации различных типов клеток, а продукты ее деградации стимулируют ангиогенез [65]. Также гиалуроновая кислота с высокой молекулярной массой обладает противовоспалительными свойствами [30]. В структуру гидрогелей на ее основе возможно введение клеток, факторов роста, ген-инженерных конструкций и лекарственных веществ [40, 45].

Недостатками гиалуроновой кислоты являются ее низкие механические свойства и высокая скорость биодеградации [47]. Гидрогели гиалуроновой кислоты обладают низким модулем упругости (85—140 Па) за счет высокого содержания воды, что затрудняет их применение для восполнения утраченной кости в местах, подверженных нагрузке.

Гиалуроновая кислота способна образовывать химические гидрогели за счет ковалентных связей при взаимодействии с глутаральдегидом, карбодиимидами и гидразидами в кислотных условиях и с дивинилсульфоновыми производными в щелочной среде [64]. Метакрилированные производные гиалуроновой кислоты образуют эластичные гидрогели под действием светового излучения. Фотоинициированное сшивание за счет радикальной полимеризации позволяет контролировать скорость отверждения и форму полученного материала [23].

Физические гидрогели на основе гиалуроновой кислоты получают за счет синтеза амфифильных производ-ных при взаимодействии с гексадециламином или полимолочной кислотой. Такой тип гидрогелей отличается невысокой механической прочностью, образуемые гидрофобные сшивки разрушаются под действием эластического растяжения [53].

Альгинат

Альгинат — природный полисахарид, состоящий из α-D-маннуроновой кислоты и B-L — гулуроновой кислоты. Положительными свойствами альгината являются: биосовместимость и отсутствие иммуногенности [56]. Альгинаты широко применяются в медицине в качестве средств для раневых повязок и стоматологических оттискных материалов. Альгинаты используют в качестве обволакивающих и антацидных средств при лечении изжоги и кислотного рефлюкса [32]. В тканевой инженерии альгинаты могут выступать в качестве носителей для клеток, факторов роста и нуклеотидов [40, 45].

Недостатком альгината является медленная трудно прогнозируемая скорость резорбции. Это связано с тем, что в организме человека отсутствуют специфические ферменты альгиназы [9]. Однако в присутствии хелатирующих агентов материалы на основе альгината подвергаются деградации [20].

Альгинат образует ионные сшивки за счет взаимодействия с двухвалентными катионами, такими как кальций, магний или железо. Недостатком ионно-сшитых альгинатных гидрогелей является их непродолжительная стабильность в среде организма. Так, они могут быть растворены за счет обменной реакции с окружающей средой, вызывающей высвобождение двухвалентных катионов из альгинатных материалов.

Образование ковалентных сшивок позволяет улучшить механические свойства альгинатных гидрогелей. Так, при сшивании с полиэтиленгликоль-диаминами различной молекулярной массы были получены полимеры с широким диапазоном механических свойств. Увеличение массовой доли полиэтиленгликоля или плотности сшивания приводило к увеличению модуля упругости материала. При повышении прочности сшивания от 2 до 15% модуль упругости увеличился от 32 до 110 кПа, а при увеличении массовой доли полиэтиленгликоля — от 9,7±1,6 до 109,4±9,5 кПа [15].

Гелеобразование под действием температуры возможно за счет введения в основную цепь полимера поли-N-изопропилакриламида или взаимодействия с блок-сополимером полиоксиэтилена и полиоксипропилена — Плюроником F127. Такая модификация позволяет улучшить физические и механические свойства термочувствительных гидрогелей.

Под воздействием ультрафиолета происходит реакция свободнорадикальной полимеризации с отверждением метакрилированных производных альгинатных гидрогелей, в состав которых добавлен фотоинициатор, такой как Irgacure 2959 (Irgacure 819, Ciba Specialty Chemicals, США), который обладает высокой биосовместимостью и минимальной степенью цитотоксичности [49].

Хитозан

Хитозан — производное хитина, линейный полисахарид, макромолекулы которого состоят из случайно связанных β-(1−4)-D-глюкозаминовых звеньев и N-ацетил-D-глюкозамина. Данный полимер обычно получают путем химического или ферментативного деацетилирования хитина [25]. Хитозан обладает биосовместимостью и способностью к биорезорбции с образованием безвредных метаболизируемых продуктов.

Хитозан способен подавлять рост бактерий и грибов за счет ионных взаимодействий заряженных групп полимерной цепи хитозана с компонентами клеточных стенок, что приводит к высвобождению внутриклеточных компонентов и гибели клеток [48, 57].

Также материалы на основе хитозана обладают гемостатическим эффектом за счет абсорбции плазмы, связывания и коагуляции эритроцитов, а также адгезии тромбоцитов и их агрегации [44].

Особого внимания заслуживает способность хитозана оказывать противоопухолевое действие: хитозан увеличивает продукцию интерлейкинов-1 и -2, приводящих к пролиферации Т-лимфоцитов, а также индуцирует апоптоз опухолевых клеток и тормозит их деление [5, 38, 63].

Из-за наличия сильных межмолекулярных водородных связей хитозан может быть растворен только в кислых растворах, что ограничивает его применение в качестве инъекционного гидрогеля. Тем не менее готовые гидрогели хитозана способны обеспечить условия для проникновения, роста и развития клеток, а также могут выступать в качестве носителей для индукторов белковой и нуклеотидной природы [40, 45].

Хитозановые гидрогели образуются за счет ковалентных сшивок с такими веществами, как глутаральдегид, генипин, диизоцианат и акриловая кислота [1]. Сшитые с генипином хитозановые гидрогели характеризуются низкой скоростью деградации, однако при включении в состав материалов лекарственных веществ возможно возникновение их несовместимости [8].

Сшиваемые под действием ультрафиолетового излучения полимеры хитозана получают путем введения в них азидных или лактозных остатков за счет образования ковалентных связей [23]. Ковалентно-сшитые полимеры обладают устойчивостью при изменении окружающей среды, однако они нуждаются в дополнительной очистке для удаления токсичных непрореагировавших сшивающих агентов.

Для создания ионно-сшитых гидрогелей хитозана часто используют анионы. Так, например, ионные сшивки образуются за счет взаимодействия хитозана с триполифосфатом. Такое ионное гелеобразование хитозана применяется в основном для переноса низкомолекулярных веществ, но в последнее время используется и для макромолекул [42]. Также при взаимодействии с отрицательно заряженными полисахаридами, такими как альгинат, пектин, гиалуроновая или полимолочная кислота, хитозан образует полиэлектролитный комплекс за счет ионных сшивок [22]. Ионно-сшитые композиты отличаются более высокой биосовместимостью, однако они имеют более низкую механическую стабильность и могут реагировать на изменение параметров окружающей среды, таких как pH, температура или ионная сила [7].

Фиброин

Фиброин — фибриллярный белок, составляющий основу нитей паутины и коконов насекомых, в частности шелка тутового шелкопряда. Данный белок обладает следующими свойствами: биосовместимость, высокая степень жесткости и прочности, контролируемые темпы деградации и универсальность в обработке для создания биоинженерных конструкций. Биодеградация фиброина происходит под действием протеолитических ферментов без возникновения воспалительной реакции [14]. Фиброиновые гидрогели могут использоваться для доставки факторов роста и стволовых клеток [45].

Недостатком фиброиновых матриц является невысокая скорость биодеградации, которой не всегда достаточно для замещения дефектов новообразованной костной тканью. Однако изменение степени кристаллизации, размера пор и пористости, а также молекулярно-массового распределения позволяет контролировать скорость деградации материалов на основе фиброина [60].

Фиброиновые гидрогели способны к самосборке и гелеобразованию, которые запускаются in vitro при низких значениях pH или высокой температуре [66]. Однако гелеобразование при таких условиях протекает достаточно медленно. Именно поэтому был предложен способ ультразвукового воздействия на материал. Под действием соникации происходит быстрое и контролируемое образование b-складчатого листа фиброина. За счет высокой скорости гелеобразования становится возможным добавление в состав материала факторов роста, таких как BMP-2 и VEGF, без риска снижения их активности, которое происходит в процессе образования поперечных сшивок [67].

Целлюлоза

Целлюлоза состоит из повторяющихся остатков β-(1,4)-D-глюкозы и является наиболее распространенным природным полимером, входящим в состав стенок растительных клеток [58]. К положительным свойствам целлюлозы относится биосовместимость, высокая степень гидрофильности, способность к адгезии клеток [26]. Материалы на основе целлюлозы могут использоваться для доставки клеток и факторов роста [35, 45].

К недостаткам целлюлозы относится низкая скорость биодеградации (более 60 нед) [33]. Также в физиологических условиях невозможно образование связи между целлюлозой и костью [37]. Химическая модификация целлюлозы за счет фосфорилирования позволяет добиться образования фосфата кальция и обеспечить удовлетворительное сцепление на границе кости и материала.

Гидрогели на основе целлюлозы получают за счет физической или химической стабилизации водных растворов целлюлозы. Термочувствительные физические гидрогели получают из водного раствора метилцеллюлозы или гидроксипропил метилцеллюлозы [52]. Однако такие физически сшитые гидрогели обладают термообратимостью и неконтролируемой скоростью биодеградации [51].

В зависимости от используемых производных целлюлозы для образования гидрогелей применяются различные сшивающие агенты и катализаторы, такие как эпи-хлоргидрины, альдегиды, производные мочевины, карбодиимиды и карбоновые кислоты [51].

Под воздействием излучения образуются гидрогели на основе карбоксиметилцеллюлозы, гидроксипропилцеллюлозы и гидроксиэтилцеллюлозы [61]. Такой способ сшивания гидрогелей позволяет отказаться от использования дополнительных химических агентов, является контролируемым и в то же время позволяет произвести стерилизацию полимера [51].

Полиэтиленгликоль

Полиэтиленгликоль — нетоксичный водорастворимый полимер этиленгликоля. Гели на основе полиэтиленгликоля были одобрены FDA в качестве материалов для регенерации костной ткани [21]. К положительным свойствам полиэтиленгликоля относятся биосовместимость, неиммуногенность и устойчивость к адсорбции белков [2]. Скорость биодеградации зависит от сшивающих агентов и может изменяться от 10 часов до 22 дней [24].

К недостаткам гелей на основе полиэтиленгликоля относится их низкая механическая прочность.

Образование гидрогелей на основе полиэтиленгликоля происходит за счет физических или химических взаимодействий. Химические сшивки образуются в результате радикальной полимеризации полимера при наличии сшивающего агента, в качестве которого могут выступать альдегиды, малеиновая и щавелевая кислоты, диметилмочевина или диизоцианаты. Также возможно образование такого вида сшивок при воздействии ультрафиолетового излучения или в присутствии фермента глутаминазы. Химические сшивки формируют стабильную структуру гидрогеля с контролируемыми физико-химическими свойствами, такими как проницаемость, эластичность и скорость деградации [29].

Полиэтиленгликоль образует сополимеры с поли-лактид-ко-гликолидом. Материалы на основе сополимера могут использоваться в качестве матриц для тканеинженерных, протеин-активированных и ген-активированных конструкций [41, 43, 45].

Физически сшитые гидрогели полиэтиленгликоля формируются за счет водородных связей и образования комплексов с полиакриловой и полиметакриловой кислотами [29].

Коммерческие материалы, используемые для восстановления дефектов костной ткани

Среди существующих на рынке костно-пластических материалов на основе гидрогелей широко представлены композиты, содержащие деминерализованный костный матрикс или гидроксиапатиты. Основными лекарственными формами являются пасты и пластилины (putty), которые обеспечивают удобство применения таких материалов. Однако следует отметить, что, несмотря на разнообразие, лишь небольшое число материалов уже прошло клинические испытания и одобрено для применения в клинической практике. Данные по таким материалам представлены в таблице.

Коммерческие материалы для заполнения дефектов костной ткани

Резюме

Использование в качестве основы для костно-пластических материалов отверждаемых гидрогелей является перспективным направлением. В отличие от традиционных материалов в виде гранул костной ткани или аутогенной костной стружки они обладают существенными преимуществами: позволяют заполнять сложные костные дефекты, а также сохранять заданную форму после отверждения без использования армирующих конструкций в виде титановых сеток, костных блоков и винтов. Их сплошная структура избавляет от необходимости использовать барьерные мембраны для достижения направленной костной регенерации. Существующие методики импрегнирования остеоиндукторов белковой и вирусной природы с сохранением их биологических свойств обеспечивают этому классу материалов сопоставимые или превосходящие остеоиндуктивные свойства по сравнению с аутогенной костной стружкой и ее алло- и ксеногенными аналогами. Среди существующих полимеров, используемых для получения биосовместимых гидрогелей, наибольший интерес вызывает хитозан. К его уникальным свойствам относится способность подавлять рост бактерий, грибов и опухолевых клеток, не оказывая негативного воздействия на нормальные эукариотические клетки млекопитающих. Однако среди существующих коммерческих препаратов костно-пластических материалов на основе хитозанового гидрогеля не представлено, как и других композиционных материалов на основе гидрогелей и остеоиндукторов.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Ahmadi F, Oveisi Z, Mohammadi Samani S, Amoozgar Z. Chitosan Based Hydrogels: Characteristics and Pharmaceutical Applications. Research in Pharmaceutical Sciences. 2015;10(1):1-16.
  2. Alcantar NA, Eray SA, Jacob N. Polyethylene Glycol-Coated Biocompatible Surfaces. Journal of Biomedical Materials Research. 2000;51(3):343-351.
  3. Aly Lobna Abdel Aziz, Nelly I Hammouda. Evaluation of Implant Stability Simultaneously Placed with Sinus Lift Augmented with Putty versus Powder Form of Demineralized Bone Matrix in Atrophied Posterior Maxilla. Future Dental Journal. 2017;3(1):28-34. https://doi.org/10.1016/j.fdj.2016.12.001
  4. Arcuri C, Cecchetti F, Germano F, Motta A, Santacroce C. Clinical and Histological Study of a Xenogenic Bone Substitute Used as a Filler in Postextractive Alveolus. Minerva Stomatologica. 2005;54(6):351-362.
  5. Azuma Kazuo, Tomohiro Osaki, Saburo Minami, Yoshiharu Okamoto. Anticancer and Anti-Inflammatory Properties of Chitin and Chitosan Oligosaccharides. Journal of Functional Biomaterials. 2015;6(1):33-49. https://doi.org/10.3390/jfb6010033
  6. Barone A, Cornelini R, Ciaglia R, Covani U. Implant Placement in Fresh Extraction Sockets and Simultaneous Osteotome Sinus Floor Elevation: A Case Series. The International Journal of Periodontics & Restorative Dentistry. 2008;28(3):283-289.
  7. Berger J, Reist M, Mayer JM, Felt O, Peppas NA, Gurny R. Structure and Interactions in Covalently and Ionically Crosslinked Chitosan Hydrogels for Biomedical Applications. European Journal of Pharmaceutics and Biopharmaceutics: Official Journal of Arbeitsgemeinschaft Fur Pharmazeutische Verfahrenstechnik e.V, 2004;57(1):19-34. https://doi.org/10.1016/s0939-6411(03)00161-9
  8. Bhattarai Narayan, Gunn J, Zhang M. Chitosan-Based Hydrogels for Controlled, Localized Drug Delivery. Advanced Drug Delivery Reviews. 2010;62(1):83-99. https://doi.org/10.1016/j.addr.2009.07.019
  9. Boontheekul Tanyarut, Hyun-Joon Kong, Mooney DJ. Controlling Alginate Gel Degradation Utilizing Partial Oxidation and Bimodal Molecular Weight Distribution. Biomaterials. 2005;26(15):2455-2465. https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2004.06.044
  10. Cha Hyun-Suk, Ji-Wan Kim, Jong-Hyun Hwang, Kang-Min Ahn. Frequency of Bone Graft in Implant Surgery. Maxillofacial Plastic and Reconstructive Surgery. 2016;38(1):19. https://doi.org/10.1186/s40902-016-0064-2
  11. Cheung S, Westerheide K, Ziran B. Efficacy of Contained Metaphyseal and Periarticular Defects Treated with Two Different Demineralized Bone Matrix Allografts. International Orthopaedics. 2003;27(1):56-59. https://doi.org/10.1007/s00264-002-0388-7
  12. Chevallay B, Herbage D. Collagen-Based Biomaterials as 3D Scaffold for Cell Cultures: Applications for Tissue Engineering and Gene Therapy. Medical & Biological Engineering & Computing. 2000;38(2):211-218. https://doi.org/10.1007/bf02344779
  13. Deshmukh Jeevanand, Sumeet Deshpande, Richa Khatri, Shubha Deshpande, Sudhendra Deshpande. Vertical and Horizontal Ridge Augmentation in Anterior Maxilla Using Autograft, Xenograft and Titanium Mesh with Simultaneous Placement of Endosseous Implants. Journal of Indian Society of Periodontology. 2014;18(5):661. https://doi.org/10.4103/0972-124X.142469
  14. Diab Tamim, Eleanor M. Pritchard, Brent A. Uhrig, Joel D. Boerckel, David L. Kaplan, and Robert E. Guldberg. A Silk Hydrogel-Based Delivery System of Bone Morphogenic Protein for the Treatment of Large Bone Defects. Journal of the Mechanical Behavior of Biomedical Materials. 2012;11:123-131. https://doi.org/10.1016/j.jmbbm.2011.11.007
  15. Eiselt Petra, Kuen Yong Lee, David J. Mooney. Rigidity of Two-Component Hydrogels Prepared from Alginate and Poly(ethylene glycol) — Diamines. Macromolecules. 1999;32(17):5561-5566. https://doi.org/10.1021/ma990514m
  16. El-Sherbiny, Ibrahim M, Magdi H. Yacoub. Hydrogel Scaffolds for Tissue Engineering: Progress and Challenges. Global Cardiology Science & Practice. 2013;3:316-342. https://doi.org/10.5339/gcsp.2013.38
  17. Europe Markets for Dental Bone Graft Substitutes and Other Biomaterials — 15 Countries (2011—2021). 2017.
  18. Figueiredo Andreia, Patrícia Coimbra, António Cabrita, Fernando Guerra, and Margarida Figueiredo. Comparison of a Xenogeneic and an Alloplastic Material Used in Dental Implants in Terms of Physico-Chemical Characteristics and in Vivo Inflammatory Response. Materials Science and Engineering: 2013;33(6):3506-3513. https://doi.org/10.1016/j.msec.2013.04.047
  19. Gibbs David MR, Cameron RM. Black, Jonathan I. Dawson, Richard OC. Oreffo. A Review of Hydrogel Use in Fracture Healing and Bone Regeneration: Hydrogel Use in Fracture Healing and Bone Regeneration. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 2016;10(3):187-198. https://doi.org/10.1002/term.1968
  20. Gombotz W. Protein Release from Alginate Matrices. Advanced Drug Delivery Reviews. 1998;31(3):267-285. https://doi.org/10.1016/s0169-409x(97)00124-5
  21. Gyawali Dipendra, Parvathi Nair, Yi Zhang, Richard T. Tran, Chi Zhang, Mikhail Samchukov, Marina Makarov, Harry K.W. Kim, and Jian Yang. Citric Acid-Derived in Situ Crosslinkable Biodegradable Polymers for Cell Delivery. Biomaterials. 2010;31(34):9092-9105. https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2010.08.022
  22. Hamman Josias H. Chitosan Based Polyelectrolyte Complexes as Potential Carrier Materials in Drug Delivery Systems. Marine Drugs. 2010;8(4):1305-1322. https://doi.org/10.3390/md8041305
  23. Ifkovits Jamie L, Jason A. Burdick. Review: Photopolymerizable and Degradable Biomaterials for Tissue Engineering Applications. Tissue Engineering. 2007;13(10):2369-2385. https://doi.org/10.1089/ten.2007.0093
  24. Jain Era, Lindsay Hill, Erin Canning, Scott A. Sell, Silviya P. Zustiak. Control of Gelation, Degradation and Physical Properties of Polyethylene Glycol Hydrogels through the Chemical and Physical Identity of the Crosslinker. J Mater Chem B. 2017;5(14):2679-2691. https://doi.org/10.1039/C6TB03050E
  25. Khor Eugene, Lee Yong Lim. Implantable Applications of Chitin and Chitosan. Biomaterials. 2003;24(13):2339-2349. https://doi.org/10.1016/s0142-9612(03)00026-7
  26. Ko H-F, Sfeir C, Kumta PN. Novel Synthesis Strategies for Natural Polymer and Composite Biomaterials as Potential Scaffolds for Tissue Engineering. Philosophical Transactions of the Royal Society A: Mathematical, Physical and Engineering Sciences. 2010;368(1917):1981-1997. https://doi.org/10.1098/rsta.2010.0009
  27. Kubosch Eva Johanna, Anke Bernstein, Laura Wolf, Tobias Fretwurst, Katja Nelson, and Hagen Schmal. Clinical Trial and in-Vitro Study Comparing the Efficacy of Treating Bony Lesions with Allografts versus Synthetic or Highly-Processed Xenogeneic Bone Grafts. BMC Musculoskeletal Disorders. 2016;17. https://doi.org/10.1186/s12891-016-0930-1
  28. Liang Huang-Chien, Wen-Hisung Chang, Hsiang-Fa Liang, Meng-Horng Lee, Hsing-Wen Sung. Crosslinking Structures of Gelatin Hydrogels Crosslinked with Genipin or a Water-Soluble Carbodiimide. Journal of Applied Polymer Science. 2004;91(6):4017-4026. https://doi.org/10.1002/app.13563
  29. Lin Chien-Chi, Kristi S. Anseth. PEG Hydrogels for the Controlled Release of Biomolecules in Regenerative Medicine. Pharmaceutical Research. 2009;26(3):631-643. https://doi.org/10.1007/s11095-008-9801-2
  30. Litwiniuk Malgorzata, Alicja Krejner, Marcus S. Speyrer, Anibal R. Gauto, Tomasz Grzela. Hyaluronic Acid in Inflammation and Tissue Regeneration. Wounds: A Compendium of Clinical Research and Practice. 2016;28(3):78-88.
  31. Maitra Jaya, Vivek Kumar Shukla. Cross-Linking in Hydrogels — A Review. American Journal of Polymer Science. 2014;4(2). https://doi.org/10.5923/j.ajps.20140402.01
  32. Mandel Daggy, Brodie, Jacoby. Review Article: Alginate-Raft Formulations in the Treatment of Heartburn and Acid Reflux. Alimentary Pharmacology and Therapeutics. 2000;14(6):669-690. https://doi.org/10.1046/j.1365-2036.2000.00759.x
  33. Märtson Matis, Jouko Viljanto, Timo Hurme, Pekka Laippala, Pekka Saukko. Is Cellulose Sponge Degradable or Stable as Implantation Material? An in Vivo Subcutaneous Study in the Rat. Biomaterials. 1999;20(21):1989-1995. https://doi.org/10.1016/s0142-9612(99)00094-0
  34. Matos Sérgio M, Fernando A. Guerra, Jack Krauser, Francisco Marques, Jorge M. Ermida, Mariano Sanz. Clinical Evaluation of the Combination of Anorganic Bovine-Derived Hydroxyapatite Matrix/Cell-Binding Peptide (P-15) in Particulate and Hydrogel Form as a Bone Replacement Graft Material in Human Periodontal Osseous Defects: 6-Month Reentry Controlled Clinical Study. Journal of Periodontology. 2007;78(10):1855-1863. https://doi.org/10.1902/jop.2007.060474
  35. Minier K, Touré A, Fusellier M, Fellah B, Bouvy B, Weiss P, Gauthier O. BMP-2 Delivered from a Self-Crosslinkable CaP/Hydrogel Construct Promotes Bone Regeneration in a Critical-Size Segmental Defect Model of Non-Union in Dogs. Veterinary and Comparative Orthopaedics and Traumatology: V.C.O.T, 2014;27(6):411-421. https://doi.org/10.3415/VCOT-14-03-0036
  36. Miyata T, Taira T, Noishiki Y. Collagen Engineering for Biomaterial Use. Clinical Materials. 1992;9(3-4):139-148. https://doi.org/10.1016/0267-6605(92)90093-9
  37. Müller Frank A, Lenka Müller, Ingo Hofmann, Peter Greil, Magdalene M. Wenzel, Rainer Staudenmaier. Cellulose-Based Scaffold Materials for Cartilage Tissue Engineering. Biomaterials. 2006;27(21):3955-3963. https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2006.02.031
  38. Nishimura K, Nishimura S, Nishi N, Saiki I, Tokura S, Azuma I. Immunological Activity of Chitin and Its Derivatives. Vaccine. 1984;2(1):93-99. https://doi.org/10.1007/978-1-4613-2167-5_56
  39. Orban Janine M, Lorri B Wilson, Jessica A Kofroth, Mohammed S El-Kurdi, Timothy M Maul, David A. Vorp. Crosslinking of Collagen Gels by Transglutaminase. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 2004;68(4):756-762. https://doi.org/10.1002/jbm.a.20110
  40. O’Rorke, Suzanne, Michael Keeney, Abhay Pandit. Non-Viral Polyplexes: Scaffold Mediated Delivery for Gene Therapy. Progress in Polymer Science. 2010;35(4):441-458. https://doi.org/10.1016/j.progpolymsci.2010.01.005
  41. Pan Haitao, Qixin Zheng, Shuhua Yang, Xiaodong Guo, Bin Wu, Zhenwei Zou, Zhixia Duan. A Novel Peptide-Modified and Gene-Activated Biomimetic Bone Matrix Accelerating Bone Regeneration. Journal of Biomedical Materials Research. Part A. 2014;102(8):2864-2874. https://doi.org/10.1002/jbm.a.34961
  42. Papadimitriou Sofia A, Dimitris S. Achilias, Dimitrios N. Bikiaris. Chitosan-G-PEG Nanoparticles Ionically Crosslinked with Poly(glutamic Acid) and Tripolyphosphate as Protein Delivery Systems. International Journal of Pharmaceutics. 2012;430(1-2):318-327. https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2012.04.004
  43. Peng Kuo-Ti, Meng-Yow Hsieh, Carl T. Lin, Chin-Fu Chen, Mel S. Lee, Yi-You Huang, Pey-Jium Chang. Treatment of Critically Sized Femoral Defects with Recombinant BMP-2 Delivered by a Modified mPEG-PLGA Biodegradable Thermosensitive Hydrogel. BMC Musculoskeletal Disorders. 2016;17. https://doi.org/10.1186/s12891-016-1131-7
  44. Pogorielov Maksym V. Chitosan as a Hemostatic Agent: Current State. European Journal of Medicine. Series B. 2015;2(1):24-33. https://doi.org/10.13187/ejm.s.b.2015.2.24
  45. Polo-Corrales Liliana, Magda Latorre-Esteves, Jaime E. Ramirez-Vick. Scaffold Design for Bone Regeneration. Journal of Nanoscience and Nanotechnology. 2014;14(1):15-56. https://doi.org/10.1166/jnn.2014.9127.
  46. Ricard-Blum Sylvie. The Collagen Family. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 2011;3(1). https://doi.org/10.1101/cshperspect.a004978
  47. Rice Kevin G. The Chemistry, Biology, and Medical Applications of Hyaluronan and Its Derivatives Edited by T.C. Laurent. Portland Press, London, U.K. 1998. Xvi + 341 Pp. 17 × 25 Cm. Journal of Medicinal Chemistry. 1998;41(26):5336-5336. https://doi.org/10.1021/jm980609z
  48. Roller S, Covill N. The Antifungal Properties of Chitosan in Laboratory Media and Apple Juice. International Journal of Food Microbiolog. 1999;47(1-2):67-77. https://doi.org/10.1016/s0168-1605(99)00006-9
  49. Rouillard Andrew D, Caroline M Berglund, Jae Youn Lee, William J. Polacheck, Yvonne Tsui, Lawrence J. Bonassar, Brian J. Kirby. Methods for Photocrosslinking Alginate Hydrogel Scaffolds with High Cell Viability. Tissue Engineering. Part C, Methods. 2011;17(2):173-179. https://doi.org/10.1089/ten.TEC.2009.0582
  50. Sanabria-DeLong, Naomi, Sarvesh K. Agrawal, Surita R. Bhatia, Gregory N. Tew. Controlling Hydrogel Properties by Crystallization of Hydrophobic Domains. Macromolecules. 2006;39(4):1308-1310. https://doi.org/10.1021/ma052243n
  51. Sannino Alessandro, Christian Demitri, Marta Madaghiele. Biodegradable Cellulose-Based Hydrogels: Design and Applications. Materials. 2009;2(2):353-373. https://doi.org/10.3390/ma2020353
  52. Sarkar Nitis. Thermal Gelation Properties of Methyl and Hydroxypropyl Methylcellulose. Journal of Applied Polymer Science. 1979;24(4):1073-1087. https://doi.org/10.1002/app.1979.070240420
  53. Schanté Carole E, Guy Zuber, Corinne Herlin, Thierry F. Vandamme. Chemical Modifications of Hyaluronic Acid for the Synthesis of Derivatives for a Broad Range of Biomedical Applications. Carbohydrate Polymers. 2011;85(3):469-489. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2011.03.019
  54. Schmitt Christian Martin, Hendrik Doering, Thomas Schmidt, Rainer Lutz, Friedrich Wilhelm Neukam, Karl Andreas Schlegel. Histological Results after Maxillary Sinus Augmentation with Straumann® BoneCeramic, Bio-Oss, Puros, and Autologous Bone. A Randomized Controlled Clinical Trial. Clinical Oral Implants Research. 2013;24(5):576-585. https://doi.org/10.1111/j.1600-0501.2012.02431.x
  55. Schwartz Zvi, Moshe Goldstein, Einav Raviv, Ariel Hirsch, Don M. Ranly, Barbara D. Boyan. Clinical Evaluation of Demineralized Bone Allograft in a Hyaluronic Acid Carrier for Sinus Lift Augmentation in Humans: A Computed Tomography and Histomorphometric Study. Clinical Oral Implants Research. 2007;18(2):204-211. https://doi.org/10.1111/j.1600-0501.2006.01303.x
  56. Shapiro Lilia, Smadar Cohen. Novel Alginate Sponges for Cell Culture and Transplantation. Biomaterials. 1997;18(8):583-590. https://doi.org/10.1016/s0142-9612(96)00181-0
  57. Sudarshan NR, Hoover DG, Knorr D. Antibacterial Action of Chitosan. Food Biotechnology. 1992;6(3):257-272. https://doi.org/10.1080/08905439209549838
  58. Teeri Tuula T, Harry Brumer, Geoff Daniel, Paul Gatenholm. Biomimetic Engineering of Cellulose-Based Materials. Trends in Biotechnology. 2007;25(7):299-2306. https://doi.org/10.1016/j.tibtech.2007.05.002
  59. Varghese Shyni, Jennifer H. Elisseeff. Hydrogels for Musculoskeletal Tissue Engineering. In Polymers for Regenerative Medicine, edited by Carsten Werner. Berlin, Heidelberg: Springer Berlin Heidelberg. 2006;203:95-1144. https://doi.org/10.1007/12_072
  60. Vepari Charu, David L Kaplan. Silk as a Biomaterial. Progress in Polymer Science. 2007;32(8-9):991-1007. https://doi.org/10.1016/j.progpolymsci.2007.05.013
  61. Wach Radoslaw A, Hiroshi Mitomo, Fumio Yoshii, Tamikazu Kume. 13 Radiation Processing of Biodegradable Polymer Hydrogel from Cellulose Derivatives. 2001;88. https://doi.org/10.1002/app.1753
  62. Wang Jeffrey C, Alanay A, Mark Davies, Kanim LEA, Pat A. Campbell, Edgar G. Dawson, and Jay R. Lieberman. A Comparison of Commercially Available Demineralized Bone Matrix for Spinal Fusion. European Spine Journal. 2007;16(8):1233-1240. https://doi.org/10.1007/s00586-006-0282-x
  63. Wimardhani Yuniardini S, Dewi F Suniarti, Hans J Freisleben, Septelia I Wanandi, Nurjati C Siregar, Masa-Aki Ikeda. Chitosan Exerts Anticancer Activity through Induction of Apoptosis and Cell Cycle Arrest in Oral Cancer Cells. Journal of Oral Science. 2014;56(2):119-126. https://doi.org/10.2334/josnusd.56.119
  64. Xu Xian, Amit K. Jha, Daniel A. Harrington, Mary C. Farach-Carson, Xinqiao Jia. Hyaluronic Acid-Based Hydrogels: From a Natural Polysaccharide to Complex Networks. Soft Matter. 2012;8(12):3280-3294. https://doi.org/10.1039/C2SM06463D
  65. Xu Ying, Juan Cui, David Puett. Cancer Bioinformatics. New York, NY: Springer New York; 2014. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-1381-7
  66. Yucel Tuna, Peggy Cebe, David L. Kaplan. Vortex-Induced Injectable Silk Fibroin Hydrogels. Biophysical Journal. 2009;97(7):2044-2050. https://doi.org/10.1016/j.bpj.2009.07.028
  67. Zhang Wenjie, Xiuli Wang, Shaoyi Wang, Jun Zhao, Lianyi Xu, Chao Zhu, Deliang Zeng, et al. The Use of Injectable Sonication-Induced Silk Hydrogel for VEGF165 and BMP-2 Delivery for Elevation of the Maxillary Sinus Floor. Biomaterials. 2011;32(35):9415-9424. https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2011.08.047

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.