Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Лащенко Е.С.

ГМУ «Орловская областная стоматологическая поликлиника»

Подпорин М.С.

ГБОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова» Минздрава России, Российская Федерация

Царева Е.В.

ГБОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова» Минздрава России, Российская Федерация

Применение безальдегидных дезинфектантов нового поколения для химической дезинфекции стоматологических инструментов

Авторы:

Лащенко Е.С., Подпорин М.С., Царева Е.В.

Подробнее об авторах

Журнал: Российская стоматология. 2015;8(1): 17‑18

Просмотров: 702

Загрузок: 11

Как цитировать:

Лащенко Е.С., Подпорин М.С., Царева Е.В. Применение безальдегидных дезинфектантов нового поколения для химической дезинфекции стоматологических инструментов. Российская стоматология. 2015;8(1):17‑18.
Lashchenko ES, Podporin MS, Tsareva EV. . Russian Journal of Stomatology. 2015;8(1):17‑18. (In Russ.)

Изделия медицинского назначения, применяемые в стоматологии, характеризуются большим разнообразием по своему назначению, составу материалов и конструкции, поэтому выбор средства дезинфекции для их обработки требует дифференцированного подхода. Подобное средство должно не только обеспечить гибель микроорганизмов — потенциальных возбудителей внутрибольничной инфекции, быть малотоксичным и малоопасным для медицинского персонала и пациентов, но и не нарушать функциональные свойства обрабатываемых объектов, в частности, не вызывать коррозии металлических инструментов (Диццоева Ф.Е., 2003).

За последние годы ассортимент дезинфицирующих средств (ДС) для обработки стоматологических инструментов значительно расширился за счет препаратов на основе альдегидов, катионных поверхностно-активных веществ — четвертичных аммониевых соединений (ЧАС), солей аминов и других. Однако средства на основе альдегидов, обладая широким спектром действия, токсичны при ингаляционном воздействии и требуют особых условий при использовании и хранении (Ribeiro D.G. и соавт., 2009).

При выборе ДС существенное значение имеет преобладающая микрофлора, которая является объектом дезинфекции. Так, представители стрептококковой и бесспоровой анаэробной флоры более чувствительны к низким концентрациям дезинфектантов, по сравнению с актиномицетами, микобактериями, порфиромонадами и клостридиями. Более высоких концентраций дезинфектантов требуют также кандида и мицелиальные грибы (Руководство по инфекционному контролю в стационаре ISID, 2003; Jagger R., 2009; Сбойчаков В.Б., 2010; Царев В.Н., Графова Т.И., 2009).

В связи с этим поиск новых эффективных средств химической дезинфекции оттисков, которые, с одной стороны, обеспечивали бы высокую надежность деконтаминации, а с другой, обладали антикоррозионным действием на материалы, из которых изготовлены стоматологические инструменты, является актуальной проблемой практической стоматологии.

Цель исследования — повышение эффективности химической дезинфекции стоматологических оттисков (слепков) путем научно обоснованного применения дезинфицирующих средств группы Zeta, включающих многоатомные спирты, ЧАС и некатионные поверхностно-активные вещества (ПАВ).

Материал и методы. Изучали дезинфицирующую активность безальдегидных ДС Zeta 1 ultra и Zeta 7 (Италия) на основе ЧАС/ПАВ в отношении представителей микрофлоры рта и физические параметры оттисков зубов.

Все микробиологические исследования проводили в соответствии с существующим методическими рекомендациями (Давыдова М.М., Плахтий Л.Я., Царев В.Н., 2013; Gunnar D., 2006).

В качестве тест-штаммов использованы клинические изоляты анаэробных бактерий и грибов кандида из коллекции кафедры микробиологии, вирусологии, иммунологии МГМСУ им. А.И. Евдокимова: Actinomyces naeslundii, Streptococcus sanguis, Streptococcus mutans, Aggregatibacter actinomycetemcomitans, Fusobacterium nucleatum, Peptostreptococcus anaerobius, Prevotella intermedia, Aspergillus niger, Candida albicans, Candida Krusei, Candida glabrata.

Для клинико-лабораторной части работы (контаминация инструментов) дополнительно использовали штаммы санитарно-значимых грамотрицательных (A. baumannii, K. pneumonia, N. sicca, P. aeruginosae, S. marcescens, E. cloacae) и грамположительных, в том числе спорообразующих микроорганизмов — E. faecium, P. anaerobius, S. aureus, Bacillus cereus, Clostridium septicum, Aspergillus niger (Тер-Казарьянц С.Ш., Романовская В.А., 2006).

Для получения сравнительных данных о микробиологических свойствах дезинфектантов мы проводили параллельную постановку эксперимента с другими препаратами, близкого состава — аналогами из группы ЧАС/ПАВ: 1) Катамин АБ (бензалкония хлорид, Россия); 2) ПВК — катамин АБ с перекисью водорода (Россия); 3) Септобик — катамин АБ с перборатом (Израиль); 4) Аламинол — катамин АБ с глиоксалем (Россия).

Для определения оптимальной концентрации ДС использовали кассетный микрометод определения чувствительности микроорганизмов (Давыдова М.М. и соавт., 2013).

Сравнение статистической достоверности разницы проводили с использованием критерия Стьюдента. При сравнении расчетного значения критерия Стьюдента с табличным для вероятности делали вывод о достоверности полученной разницы в размерных изменениях образцов оттискных материалов при воздействии на них дезинфицирующего раствора, (разница в размерных изменениях статистически достоверна). Расчеты проводили по программе Statgraphics.

Результаты. Анализ сравнительных результатов активности изучаемых дезинфектантов по отношению к тест-штаммам — представителям разных групп микробной флоры полости рта показал высокую чувствительность последних. МБК в находилась в диапазоне от 10 до 100 мг/л, т.е. 0,0001 до 0,1%. Однако оказалось, что МБК разных дезинфицирующих средств из группы Zeta существенно различались для двух разных дезинфектантов — Zeta1 ultra и Zeta7 и для разных видов, представленных используемыми тест-штаммами. Наиболее высокая чувствительность этих тест-штаммов (особенно для Actinomyces naeslundii и Streptococcus mutans, а также у Fusobacterium nucleatum и Peptostreptococcus anaerobius — в разведении 1:10 000) выявлена у ДС Zeta1 ultra и Zeta7, которая достоверно не отличалась от данных, полученных для наиболее активного дезинфектанта этой группы септобик. Более устойчивым к действию ДС был вид Streptococcus sanguis: Zeta1 ultra, Zeta7, септабика и катамина АБ были эффективны в разведении 1:1000, а ПВК и окадез — в 10 раз больше — 1:100. Представители основных пародонтопатогенных видов — Aggregatibacter actinomycetemcomitans и Prevotella intermedia также оказались в 10 раз более устойчивыми в отношении препаратов Zeta1 ultra и Zeta7 и в 100 раз — для большинства аналогов.

Противогрибковую активность ДС Zeta1 ultra и Zeta7 изучали в отношении тест-штаммов С. albicans, C. Krusei, C. glabrata и Aspergillus niger. Дезинфектанты Zeta1 ultra и Zeta7 показали высокую активность в отношении штаммов Candida albicans, Candida Krusei, Aspergillus niger, что статистически достоверно не отличалось от активности септобика и катамина АБ. Штамм Candida glabrata показал более высокий уровень устойчивости.

Результаты, полученные при исследовании спектра ДС Zeta1 ultra и Zeta7, позволили перейти к изучению дезинфицирующей активности средства при обработке стоматологических инструментов. Фирмой-производителем (Италия) рекомендовано применение ДС Zeta1 ultra для дезинфекции инструментов, а Zeta7 — оттисков зубов.

Поэтому в настоящем исследовании мы изучали ДС Zeta1 ultra в зависимости от концентрации действующих веществ, экспозиции, наличия органического загрязнения, устойчивости микроорганизмов и особенностей стоматологических инструментов. Учитывая рекомендации, данные ранее по исследованиям ЧАС Диццоевой (2004), мы использовали в качестве основного режима обработку инструментов дезинфектантом в ультразвуковой ванночке, мощность 60 кГц.

В результате было установлено, что при обработке инструментов, обсемененных тест-штаммами грамотрицательных бактерий, в том числе капсулообразующих (дополнительный фактор устойчивости), деконтаминация всех видов инструментов (разной конфигурации сложности) достигалась при экспозиции 60, 20 и 10 мин в концентрации 0,01, 0,1 и 1% соответственно.

При обработке инструментов, обсемененных тест-штаммами грамположительных бактерий, показатели мало отличались (на 10 мин) и достигалась для всех видов инструментов при экспозиции 60, 30 и 20 мин в концентрации 0,01, 0,1 и 1% соответственно.

Однако при использовании для эксперимента спорообразующих бацилл требовалось увеличение времени экспозиции до 60, 40 и 30 мин в концентрации 0,01, 0,1 и 1% соответственно.

При использовании штаммов дрожжевых грибов и аспергилл время экспозиции также было больше, чем для обычных бактериальных культур — 60, 40 и 20 мин в концентрации 0,01, 0,1 и 1% соответственно.

Полученные результаты показали, что после обработки стоматологических инструментов в 0,1 и 1% растворах ДС Zeta1 ultra в течение 40 и 30 мин соответственно в ультразвуковых ванночках достигается не только их обеззараживание, но и эффективная очистка от крови и биологических загрязнений (100%).

Режимы дезинфекции инструментов, имеющих замковые части или сложную конфигурацию, оставались такими же, как при их дезинфекции способом погружения.

Вывод. В ходе выполнения исследования установлен эффект деконтаминации (дезинфекции) всех видов стоматологических инструментов, имеющих различную конфигурацию, при экспозиции в 0,1 и 1% растворах ДС Zeta1 ultra в течение 40 и 30 мин соответственно с применением ультразвуковых ванночек. По дезинфицирующей активности ДС Zeta1 ultra превосходило перекись водорода, которая рекомендована для стерилизации в аналогичных условиях в концентрации 6,0% при времени воздействия 360 и 180 мин (№МУ-287-113 30.12.98 г.), а также дезинфектанты из группы ЧАС, которые использовались нами для сравнения.

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.