Несмотря на бурное развитие медицинских технологий в последние десятилетия, вопрос замещения дефектов зубных рядов большой протяженности и полного отсутствия зубов съемными конструкциями протезов остается актуальным и на сегодняшний день. Выбор конструкционных материалов, используемых для такого вида протезирования, значительно вырос, однако в большинстве своем они акриловой природы. Данное обстоятельство обусловлено относительной дешевизной базисной пластмассы, высокой устойчивостью к агрессивной среде полости рта, простотой технологии, а также возможностью проведения коррекции границ, перебазировки и починки после поломок. Последнее является крайне актуальным при проведении ортопедического лечения после хирургической подготовки пациента (множественное удаление зубов, коррекция альвеолярного отростка верхней челюсти и альвеолярной части нижней челюсти, изготовление иммедиат протезов).

Как известно, при эксплуатации съемных протезов происходит более быстрая атрофия костной ткани верхней и нижней челюсти, что приводит к несоответствию контуров протезного ложа и самого протеза и ведет к прогрессирующему ухудшению фиксации этих ортопедических конструкций. Выходом из данной ситуации может служить изготовление нового протеза или проведение процедуры перебазировки. Изготовление нового протеза сопряжено с финансовыми, временными и психологическими трудностями для пациента и не всегда является оправданным. Процедура перебазировки, напротив, дает хорошие результаты, является технологически несложной и выгодной для пациента в экономическом и психоэмоциональном плане.

Следует отметить, что речь идет о перебазировке, выполняемой прямым методом с использованием специальных конструкционных материалов непосредственно врачом-стоматологом-ортопедом, без участия зубного техника. Полимеризация данных материалов идет только химическим способом, без физических факторов (температура, давление). Данное обстоятельство приводит к тому, что внутренняя часть протеза (на участках перебазировки) становится более пористой по сравнению с материалом базиса и способна влиять на изменение состава микрофлоры полости рта вследствие изменения степени адгезии основных представителей патогенной микрофлоры полости рта к данным материалам (Ибрагимов Т.И., Трефилов А.Г., 2011).

Цель исследования — изучение степени адгезии основных представителей стабилизирующей и патогенной микрофлоры в полости рта к некоторым материалам, применяемым для перебазировки протезов у пациентов, получающих ортопедическое стоматологическое лечение.

Материал и методы. Для экспериментальных исследований были выбраны следующие материалы, из которых для проведения оценки первичной адгезии in vitro готовили образцы в виде гладких отшлифованных дисков диаметром 5 мм:

1) GC Reline (GC);

2) Ufi Hard (VOCO);

3) Ufi gel (VOCO);

4) Rebase (Rebaron);

5) Протакрил (Россия).

В проведенных исследованиях in vitro мы использовали выделенные от пациентов штаммы следующих микроорганизмов, которые по классификации В.Н. Царева (2013) относились к:

I. Пародонтопатогенной микробной флоре:

— пигментообразующие бактероиды — грамотрицательные анаэробные бактерии — Porphyromonas gingivalis;

— веретенообразные палочки — грамотрицательные анаэробные бактерии — Fusobacterium nucleatum/peryodonticum;

— грамположительные анаэробные кокки — Streptococcus intermedius.

II. Резидентной микрофлоре:

Грамположительные микроаэрофильные стрептококки — Streptococcuss anguinis.

III. Дрожжевым грибам — Candida albicans.

Для выяснения потенциальной возможности формирования микробной биопленки мы провели экспериментальные исследования специально изготовленных образцов материалов (форма полусферы, диаметр 0,5 см), которые были отполированы после полимеризации с помощью полировочных дисков и паст. После инкубации образцов в среде АС, содержащей взвесь бактерии определенного штамма в известной концентрации. Экспозицию проводили в анаэробных условиях при температуре 37 °С в течение 40 мин. Затем образцы троекратно промывали стерильным изотоническим раствором и помещали в емкости со стерильной средой АС (по 1 мл). Данные емкости устанавливали в ультразвуковую ванночку и озвучивали (10 мин, мощность 60 кГц). Далее из каждой емкости, содержащей образец исследуемого материала, проводили взятие 40 мкл среды АС с помощью микропипетки и осуществляли количественный высев на 5% кровяной гемин-агар.

Культивирование бактерий проводили в анаэробных условиях при 37 °С в течение 5 сут. Учет результатов проводили путем определения индекса адгезии, который представляет собой отношение десятичного логарифма количества КОЕ (колонии образующих единиц), полученных после озвучивания исследуемых образцов, к десятичному логарифму количества КОЕ исходной микробной взвеси (Царев В.Н., 2013). Исследования адгезии грибов рода Candida к образцам осуществляли аналогично на среде Сабуро, а культивирование проходило в аэробных условиях в течение 2 сут при комнатной температуре.

Статистическую обработку результатов проводили методом вариационной статистики с определением вероятности различий Р.

Результаты. Показатели адгезии бактерий пародонтопатогенной группы были следующими. Разница в степени адгезии Porphyromonas gingivalis к исследуемым материалам оказалась более значительной и составила 0,26 для Ufi gel, 0,53 для Ufi Hard, но была достоверно выше — 0,60 и 0,84 для образцов Rebase и GC Reline, а самой высокой степень адгезии оказалась у материала протакрил и составила 0,90.

Другой пародонтопатогенный вид — Fusobacterium nucleatum/peryodonticum — проявлял крайне высокую адгезию к материалу протакрил (индекс адгезии составил 0,82). Rebase имел показатель несколько ниже — 0,78. Самым низким индекс адгезии в этой группе оказался у материала Ufi Hard и составил 0,43, а у Ufi gel и GC Reline был равен 0,65 и 0,70 соответственно (р<0,05).

Грамположительный представитель пародонтопатогенной флоры — Streptococcus intermedius, напротив, обладал наиболее выраженной адгезией к материалам GC Reline (0,66), Ufi gel (0,74), Ufi Hard (0,70) и протакрилу (0,80), а наиболее низкой — к материалу Rebase (0,44).

Результаты изучения адгезии представителей стабилизирующей микрофлоры были высокими и умеренными. Так, индексы адгезии Streptococcus sanguinis были примерно одинаковыми для материалов GS Reline, Ufi gel, Ufi Hard и колебались от 0,50 до 0,55, а для образцов Rebase и протакрил оказались значительно выше и составляли: 0,70 и 0,80 соответственно (р<0,05).

Данные о высоком уровне адгезии стабилизирующей флоры следует, на наш взгляд, рассматривать как благоприятный фактор, так как при формировании биопленки в естественных условиях ротовой полости, они, вероятнее всего, будут угнетать колонизацию биопленки вирулентными представителями пародонтопатогенных видов микробов.

Установлено, что индекс адгезии грибов Candida albicans к исследуемым материалам оказался крайне высоким у материалов протакрил, GC Reline и составил 0,80 и 0,60 соответственно. Для материалов Ufi Hard, Ufi gel и Rebase он был достоверно ниже — 0,30.

Вывод. Основные представители пародонтопатогенной микрофлоры полости рта, способные формировать биопленку, обладают выраженной способностью адгезии к некоторым конструкционным материалам, используемым для перебазировки. Так, минимальные значения индекса микробной адгезии выявлены у материалов для перебазировки Ufi Hard, Ufi gel и несколько выше у материала Rebase. Представитель резидентной микробной флоры — Streptococcus sanguinis, напротив, отличался высокими значениями индекса адгезии, однако это можно рассматривать как благоприятный фактор, поскольку данный вид проявляет антагонистичное действие в отношении колонизации пародонтопатогенами и грибами. Вместе с тем, в связи с возможностью формирования микробной биопленки с участием пародонтопатогенных видов и грибов, проведение перебазировки обусловливает необходимость дополнительных гигиенических мероприятий для поддержания нормального качественного и количественного состава микробной флоры полости рта на период проводимого ортопедического лечения в виде активного применения ополаскивателей и ирригаторов, содержащих антисептические препараты и препараты, снижающие адгезию микробов к зубным протезам, например, содержащие триклозан, листерин, гексэтидин, мирамистин, тантум верде и другие.