Кудрявцева Т.Ю.

ФБУН «Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии» Роспотребнадзора

Водопьянов А.С.

ФКУЗ «Ростовский-на-Дону противочумный институт» Роспотребнадзора

Писанов Р.В.

ФКУЗ «Ростовский-на-Дону противочумный институт» Роспотребнадзора

Сорокин В.М.

ФКУЗ «Ростовский-на-Дону противочумный институт» Роспотребнадзора

Мокриевич А.Н.

ФБУН «Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии» Роспотребнадзора

Филогенетическое типирование штаммов Francisella tularensis subsp. holarctica, выделенных на территории Российской Федерации

Авторы:

Кудрявцева Т.Ю., Водопьянов А.С., Писанов Р.В., Сорокин В.М., Мокриевич А.Н.

Подробнее об авторах

Прочитано: 826 раз


Как цитировать:

Кудрявцева Т.Ю., Водопьянов А.С., Писанов Р.В., Сорокин В.М., Мокриевич А.Н. Филогенетическое типирование штаммов Francisella tularensis subsp. holarctica, выделенных на территории Российской Федерации. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2024;42(2):16‑24.
Kudryavtseva TYu, Vodopyanov AS, Pisanov RV, Sorokin VM, Mokrievich AN. Phylogenetic typing of Francisella tularensis subsp. holarctica strains isolated on the Russian Federation territory. Molecular Genetics, Microbiology and Virology. 2024;42(2):16‑24. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/molgen20244202116

Введение

Туляремия — зоонозная природно-очаговая особо опасная инфекция, возбудителями которой являются бактерии Francisella tularensis. Почти во всех странах Европы, в Японии, а также в России проводится обязательная регистрация случаев заболевания туляремией в связи с его эпидемической опасностью, а также с возможностью использования возбудителя в качестве агента биотерроризма; разрабатываются новые более совершенные методы сравнительного генотипирования штаммов.

На территориях Европы, Северной Америки, Азии и Российской Федерации циркулируют штаммы F. tularensis subsp. holarctica, которые долгое время внутри подвида делили только на биовары: I EryS (эритромицин-чувствительный), II EryR (эритромицин-устойчивый) и japonica. С развитием технологий и ростом количества секвенированных геномов каждый год предлагается новая усовершенствованная схема полногеномной филогении, особенно подвида F. tularensis subsp. holarctica. По текущей современной классификации на основе делеций-вставок (INDEL) и однонуклеотидного полиморфизма (SNP) штаммы внутри подвида разделяют на 4 основные филогенетические группы: B4, B.6, B.12 и B16 и далее на подгруппы, линии, сублинии и генотипы. К настоящему времени насчитывается свыше 300 SNP-типов внутри подвида [1, 2]. Наиболее распространены на территории Европы штаммы групп B.6 и B.12 [3]. Отличить штаммы основной филогенетической группы B.12 внутри подвида F. tularensis subsp. holarctica оказалось возможно с помощью определения устойчивости изолятов к эритромицину, так как этот признак связан с конкретной мутацией в rrl-гене, и фенотипическая дифференциация является также и таксономической. Штаммы основной филогенетической группы B.12, устойчивой к эритромицину, имеют точечную (SNP) мутацию A®C в позиции 2059 во всех трех копиях rrl-гена [4]. Штаммы F. tularensis subsp. holarctica bv. japonica группы B.16 в основном распространены в Японии, но встречаются в Турции и Китае. На территории Российской Федерации штаммы этой группы до настоящего времени не выделялись и находятся только в музейных коллекциях учреждений, занимающихся изучением особо опасных инфекций. Дифференцирование эритромицин-чувствительных штаммов основных филогенетических групп B.4, B.6, B.16, а также штаммов широко распространенной группы B.12, до сих пор является проблемой даже при наличии полногеномной нуклеотидной последовательности штамма.

В противочумном институте Ростова-на-Дону была разработана система дифференцирования штаммов на основе данных полногеномного секвенирования, которая рассчитана на работу также с набором контигов. Референс-последовательность каждого анализируемого гена выявлялась среди всех представленных контигов. Для анализа были использованы все полногеномные последовательности штаммов возбудителя туляремии, имеющиеся в базе данных NCBI, что позволило создать локальную базу из 997 геномов [5].

Цель данной работы — проведение генетического типирования на основе данных полногеномного секвенирования и выявление генетического разнообразия штаммов подвида F. tularensis subsp. holarctica, выделенных в разное время на территории Российской Федерации.

Материал и методы

В работе использовали нуклеотидные последовательности 63 штаммов F. tularensis subsp. holarctica (табл. 1, 2), из которых 36 штаммов были выделены на территории Российской Федерации. В Ростовской области в разные годы было изолировано 22 штамма, 5 штаммов выделены на территории Ханты-Мансийского автономного округа во время эпидемиологической вспышки в 2013 г., 4 штамма выделены в Донецкой Народной Республике в 2022 г. Ряд последовательностей штаммов разных филогенетических групп подвида F. tularensis subsp. Holarctica, выделенных на территории Российской Федерации, получен из базы данных NCBI (см. табл. 1).

Таблица 1. Выделенные в России штаммы F. tularensis subsp. holarctica, нуклеотидные последовательности которых использованы в работе

Номер штамма

Источник

Место выделения

Год

1

7-23

Microtus arvalis

Ростовская обл., Ремонтненский р-н

2023

2

22-23

Microtus arvalis

Ростовская обл., Ремонтненский р-н

2023

3

1-23

Microtus arvalis

Ростовская обл., Ремонтненский р-н

2022

4

90

Microtus socialis

Ростовская обл., Целинский р-н

2022

5

795

Microtus arvalis

Ростовская обл., Целинский р-н

2022

6

794

Mus musculus

Ростовская обл., Целинский р-н

2022

7

792

Mus musculus

Ростовская обл., Целинский р-н

2022

8

75

Microtus socialis

Ростовская обл., Целинский р-н

2022

9

464

Mus musculus

Ростовская обл., Целинский р-н

2022

10

463

Mus musculus

Ростовская обл., Целинский р-н

2022

11

799

Microtus socialis

Ростовская обл., Целинский р-н

2022

12

783

Mus spicilegus

Ростовская обл., Неклиновский р-н

2022

13

257

Microtus arvalis

Ростовская обл., Сальский р-н

2020

14

211

Microtus socialis

Ростовская обл., Ремонтненский р-н

2020

15

210

Microtus socialis

Ростовская обл., Ремонтненский р-н

2020

16

256

Microtus arvalis

Ростовская обл., Сальский р-н

2020

17

251

Microtus arvalis

Ростовская обл., Сальский р-н

2020

18

249

Microtus arvalis

Ростовская обл., Сальский р-н

2020

19

742

Mus musculus

ДНР, Новоазовский р-н

2022

20

740

Mus musculus

ДНР, Новоазовский р-н

2022

21

739-1

Crocidura suaveolens

ДНР, Новоазовский р-н

2022

22

279-286

Apodemus uralensis

ДНР, Новоазовский р-н

2022

23

250

Rattus norvegicus

Ростовская обл., г. Сальск

1988

24

1238

Water

Ростовская обл., Сальский р-н

1997

25

27

Mus musculus

Ростовская обл., Целинский р-н

1996

26

117

Microtus socialis

Ростовская обл.

1989

27

Kh-M 26-2, В-7562

Sorex sp.

Ханты-Мансийск

2013

28

SCPM-O-, B-7555

Homo sapiens

Ханты-Мансийск

2013

29

Kh-M 8к,

B-7556

Homo sapiens

Ханты-Мансийск

2013

30

Kh-M 8m,

B-7557

Homo sapiens

Ханты-Мансийск

2013

31

SCPM-O-

B-7558

Homo sapiens

Ханты-Мансийск

2013

32

38

Mus musculus

Калмыкия

1987

33

15 НИИЭГ

Вакцинный штамм

СССР, лабораторный

1946

34

A-1045

D. reticulatus

Алтайский край

2011

35

B-8367

(И-339)

Homo sapiens

Хабаровск

1975

36

B-8365

(И-223)

Homo sapiens

Хабаровск

1966

Таблица 2. Штаммы F. tularensis subsp. holarctica из базы данных NCBI, нуклеотидные последовательности которых использованы в работе

Штамм

Группа ® canSNP

Источник

Страна

Год

37

OSU18

B.4

Beaver

США

1978

38

NO-15_

B.4

Homo sapiens

Норвегия

2011

39

OR96-0246

B.6, B.7, B.9

Primate

США

1996

40

NO-3 2011

B.6, B.150

Homo sapiens

Норвегия

2011

41

NO-1 2011

B.6, B.94

Homo sapiens

Норвегия

2011

42

NO-14_

B.6, B.136

Homo sapiens

Норвегия

2011

43

FTNF002-00

B.6, B.10

Homo sapiens

Франция

2001

44

FDC304

B.6, B.46

Homo sapiens

Швейцария

2008

45

PHIT-FT049

B.16, B.217

Water

Турция

2012

46

FSC022

B.16, B.224

Homo sapiens

Япония

1950

47

LVS

B.12, B.77

Vaccine strain

США

1956

48

F0889

н.д.

Homo sapiens

Турция

2010

49

F0884

н.д.

Homo sapiens

Турция

2010

50

FSC200

B.12, B.22

Homo sapiens

Швеция

1998

51

FDC200

B.12, B.42, B.68

Water

Турция

2009

52

FDC205

B.12, B.42, B.67

Homo sapiens

Турция

2012

53

Tul-97_KZ

B.12, 23, 65, B.343

Tick

Казахстан,

г. Павлодар

2013

54

Tul-92_KZ

B.12, 23,65, B.343

D. marginatus

Западный Казахстан

1988

55

Tul-78_KZ

B.12,42,66, B.191

Tick

Западный Казахстан

2007

56

Tul-153_KZ

B.12,42,66, B.191

Oenanthe

Западный Казахстан

2011

57

Tul-112_KZ

B.12, 23, 65, B.344

Tick

Казахстан,

г. Павлодар

2016

58

F0923

н.д.

Water

Турция

2013

59

FDC186

н.д.

н.д.

Болгария

1962

60

FDC184

н.д.

н.д.

Болгария

2003

61

FDC179

н.д.

н.д.

Болгария

1998

62

F0856

н.д.

Hare

Финляндия

н.д.

63

F0847

н.д.

Hare

Финлянди

н.д.

В качестве референс-штамма основной филогенетической группы B.4 использовали последовательность штамма OSU18, для группы B.6 подгруппы B.7 использовали последовательность штамма OR96-0246, также обозначаемую как генотип B.40, а для группы B.6, подгруппы B.10/11 — последовательность штамма FTNF002-00, или FTA, также обозначаемую как генотип B.41. В качестве референс-штамма F. tularensis subsp. holarctica bv. japonica, основной филогенетической группы B.16, использовали последовательность штамма FSC022. Для основной филогенетической группы эритромицин-устойчивых штаммов B.12, подгруппы B.26-B.20 (или B.42) референс-штаммом была взята последовательность штамма FSC200 (табл. 2, рис. 1), а для подгруппы B.26-B.23-B.24 — вакцинного штамма 15 NIIEG.

Рис. 1. Анализ филогенетического родства 36 штаммов F. tularensis subsp. holarctica, выделенных на территории Российской Федерации с 1966 по 2023 гг., по данным полногеномного секвенирования.

Дендрограмма построена на основе выявленных в геномах 6626 SNPs с использованием программы MEGA5 и метода максимального правдоподобия (ML).

Для определения биовара исследованных штаммов F. tularensis subsp. holarctica, различающихся по чувствительности к эритромицину (и другим макролидам), использовали диски с эритромицином, содержащие 15 мкг антибиотика. Эта концентрация антибиотика позволяет делить штаммы голарктического подвида туляремийного микроба на два биологических варианта — биовар I EryS (эритромицин-чувствительный) и биовар II EryR (эритромицин-резистентный). Для определения принадлежности к тому или иному биовару в центральную часть чашки помещали диск с эритромицином. При посеве чувствительной к эритромицину культуры вокруг диска с антибиотиком обнаруживади выраженную зону задержки роста диаметром 2—3 см, а при посеве культуры, резистентной к эритромицину, по всей поверхности чашки отмечался равномерный рост.

Геномную ДНК выделяли при помощи набора Thermo Scientific GeneJET Genomic DNA Purification Kit (Life Technologies Inc., США) согласно инструкции производителя.

Полногеномное секвенирование проводили на генетическом анализаторе MiSeq (Illumina, США). Сборку геномов, представленных в виде ридов, проводили с использованием программы Spades [6]. Для определения основных генетических групп в исследуемой последовательности использовали «канонические» делеции-вставки (canINDEL) и однонуклеотидные замены (canSNP), описанные в работах: B.1 [7]; B.2-B13 [8]; B.16, B.21-B.25 [9]; B.26-B.32 [10]; B.33-B.38 [11]. Для анализа применяли авторское программное обеспечение GeneExpert, PrimerM и VirtualPCR, написанное на языке программирования Java. Формирование перечня 6626 SNP для построения дендрограммы выполняли по методике, описанной ранее [12]. Кластерный анализ проводили с использованием метода UPGMA, для построения дендрограммы использовали программу MEGA 5 [13]. Для сравнительного анализа использовали данные, полученные из базы данных NCBI. Для определения «канонических» SNP использовано свободное программное обеспечение CanSNPer2 [14]. Поиск SNP для попарного сравнения штаммов проводили с помощью программы Snippy [15]. Для визуализации дендрограммы использовали программу Cytoscape [16].

Результаты и обсуждение

Предложенная схема SNP-типирования штаммов возбудителя туляремии на основе данных полногеномного секвенирования использует набор из выбранных 6626 SNP-маркеров для анализа, что значительно больше, чем классификация F. tularensis subsp. holarctica на основе «канонических» делеций-вставок (canINDEL) и однонуклеотидных полиморфизмов (canSNP). Проанализированные в работе нуклеотидные последовательности 63 штаммов F. tularensis subsp. holarctica, приведенные в табл. 1 и 2, разделились на 4 группы, принадлежащие всем основным филогенетическим группам и подгруппам подвида: 4 штамма — B.4, 8 штаммов — B.6 (B.7 и B.10), 2 штамма — B.16 и 48 штаммов — B.12 (см. рис. 1).

Эритромицин-чувствительные штаммы, выделенные в России, принадлежащие к группе B.4 — это штамм A-1045, полученный из клеща Dermacentor reticulatus в Алтайском крае в 2011 г. и штамм B-8367 (или И-339), выделенный от больного человека в г. Хабаровске в 1975 г. (см. рис. 1). Два других эритромицин-чувствительных штамма, выделенных на территории Российской Федерации, относятся к группе B.6, в которую входят две крупных подгруппы — B7 и B.10. Подгруппа B.10 широко распространена в Европе. Штаммы №27, выделенный в Ростовской области в 1996 г., и B-8365 (или И-223), выделенный от больного человека в Хабаровске в 1968 г., относятся к подгруппе B.7 (рис. 1). Среди культур возбудителя туляремии, выделенных на территории России, не обнаружены штаммы, принадлежащие к основной филогенетической группе B.16.

Большая часть штаммов, исследованных в данной работе, — 32 штамма — принадлежат к эритромицин-устойчивым штаммам группы B.12. К настоящему времени «текущая» схема типирования штаммов, относящихся к этой основной филогенетической группе, делит их на 5 подгрупп: B.71, B.39, B.27 (или B.43), B.26-B.23 и B.26-B.20 (или B.42), которые затем разделяются на линии и сублинии штаммов (рис. 2) [17].

Рис. 2. Схематическое филогенетическое дерево F. tularensis subsp. holarctica группы B.12, на основе канонических делеций-вставок (canINDEL) и однонуклеотидных замен (canSNP). В скобках указаны референс-штаммы, в некоторых случаях указаны альтернативные маркеры группы и подгрупп [17].

К подгруппе B.71 принадлежат в основном эритромицин-устойчивые штаммы, выделенные в Германии [17]. К подгруппе B.39 относятся эритромицин-устойчивые штаммы, выделенные в Швейцарии, Франции, Дании. Штаммы этих подгрупп пока не обнаружены на территории России.

Исследованные последовательности 32 российских эритромицин-устойчивых штаммов группы B.12 принадлежат к подгруппам B.26 и B.27 (или B.43) (см. рис. 1). Выделенные на территории Ростовской области штаммы в 1988 (№250) и в 2020 гг. (№№249, 251, 256) в Сальском районе, в Целинском (№799), Ремонтненском (№№1-23) и Неклиновском (№783) районах в 2022 г. и в Ремонтненском районе (№№7-23, 22-23) в 2023 г., а также 4 штамма, выделенные на территории Донецкой Народной республики в 2022 г., генетически близки и относятся к подгруппе B.27 (или B.43). В данном случае с 1988 по 2023 г. в Ростовской области и на территории Донецкой Народной Республики циркулировали очень близкие генотипы штамма F. tularensis subsp. holarctica. Остальные 19 штаммов, выделенных на территории Российской Федерации, распределились внутри подгруппы B.26. Штамм №38, выделенный в Калмыкии в 1987 г., оказался генетически близок к штаммам, выделенным в Западно-Казахстанской области и Павлодаре, относящимся к подгруппе B.26-B.23. Данная подгруппа далее разделяется на 2 линии, одна из которых — B.24 — содержит штаммы LVS, 15 NIIEG и штаммы, выделенные в Болгарии.

Для проведения сравнительного анализа между штаммами LVS и 15 NIIEG был проведен поиск единичных однонуклеотидных замен с помощью программы Snippy [15]. В качестве референсного штамма для поиска использован геном штамма F. tularensis subsp. holarctica FSC200 (NCBI Accession Number NC_019551.1). По итогам анализа выявлены различия в 6 генах (табл. 3), причем в 3 случаях (штамм 15 NIIEG и 2 штамма LVS) обнаружены сдвиги рамок считывания.

Таблица 3. Выявленные различия между штаммами LVS и 15 НИИЭГ, найденные с помощью программы Snippy

Позиция

Ген

Белок

Штаммы

15 НИИЭГ

LVS

719666

Нетранслируемая область

G

T

796072

FTS_RS04185

APC family permease

T

G

1042006

FTS_RS05560

BCCT family transporter

A*

AC

1328498

FTS_RS07135

sugar porter family MFS transporter

AT

A*

1347988

FTS_RS07255

poly-gamma-glutamate synthase PgsB

T

C

1445210

FTS_RS07735

IS5 family transposase

C

CAA*

Примечание. * — полиморфизм, приводящий к образованию сдвига рамки считывания.

Выделенный в Ростовской области в 1997 г. штамм №1238, а также выделенные в 2020 г. штаммы (№№210, 211, 257) и в 2022 г. штаммы (№№90, 795, 794, 792, 75, 464 и 463) генетически близки друг к другу и к хорошо изученному штамму FSC200, принадлежащему линии B.26-B.20-B.21 (см. рис. 1). Также из данных дендрограммы следует, что на территории Ростовской области циркулировали несколько разных генотипов штамма возбудителя туляремии этой подгруппы. Последовательности штаммов, выделенных во время эпидемической вспышки в 2013 г. в Ханты-Мансийском автономном округе, использованные в данной работе, исследовались ранее методом мультилокусного анализа количества тандемных повторов (MLVA), показавшего их отличие друг от друга только количеством повторов гипервариабельного локуса FtM-3. Три исследованных штамма (Kh-M 26-2, Kh-M 8m и B-7555) содержали 15 повторов, и один (B-7558) — 10 повторов [18]. На основе анализа данных полногеномного секвенирования этих штаммов установлено, что все 4 штамма принадлежат также подгруппе B.26-B.20 (или B.42), но штамм, содержащий 10 повторов гипервариабельного локуса FtM-3 (B-7558), генетически близок штамму 117, выделенному в Ростовской области в 1989 г., и штамму FDC 205, выделенному на территории Турции, который определяется в линии B.67, а Ханты-Мансийские штаммы, содержащие по 15 повторов гипервариабельного локуса FtM-3 (Kh-M 26-2, Kh-M 8m и B-7555), оказались близки штамму FDC 200, также выделенному на территории Турции, но принадлежащему линии B.68 (см. рис. 1).

Культура, выделенная от одного пациента при эпидемической вспышке в Ханты-Мансийске в 2013 г., при рассеве до изолированных колоний содержала 2 типа морфологически отличных колоний, различающихся по размеру: мелкие (одна из которых обозначена как штамм (X-8M) и крупные (одна из которых обозначена как штамм X-8K) [18]. Сравнение этих штаммов с помощью программы Snippy позволило выявить всего 3 полиморфизма, 2 из которых являлись синонимичными и не приводили к изменению аминокислотного состава (табл. 4). Таким образом появляется возможность изучения связи морфологических отличий штаммов с обнаружением изменений в структуре генов.

Таблица 4. Выявленные различия между штаммами Х-8м (B-7557) и X-8K (B-7556), найденные с помощью программы Snippy

Позиция

Ген

Белок

Штаммы

7556

7557

785241

FTS_RS04140

type 4a pilus biogenesis protein PilO

G*

GATAA

1611584

FTS_RS10590

IS1595 family transposase

C**

T

1611593

FTS_RS10590

IS1595 family transposase

G**

A

Примечание. * — полиморфизм, приводящий к образованию сдвига рамки считывания; ** — синонимичная замена.

Систематизировать все разнообразие найденных микроорганизмов подвида F. tularensis subsp. holarctica необходимо для выявления источника при вспышках инфекции в стране, а также из-за наличия многочисленных трансграничных природных очагов туляремии при протяженных границах России с 16 государствами. В современных текущих схемах полногеномной филогении практически нет штаммов F. tularensis subsp. holarctica, выделенных на территории России, и, соответственно, нет представления о филогеографии циркулирующих в стране штаммов возбудителя туляремии. Сравнение последовательностей штаммов возбудителя туляремии, выделенных на территории Российской Федерации, с помощью различных программ, позволяет показать генетическое разнообразие F. tularensis subsp. holarctica, распространенных на территории страны, сравнить штаммы, обнаружить гены, имеющие отличия, определить родственные связи между штаммами, выявить идентичность генотипов штаммов, выделенных в разные годы и на разных территориях, установить наличие циркуляции нескольких генотипов на одной территории и указать место штаммов, выделенных на территории Российской Федерации, в международной иерархии возбудителя туляремии.

Заключение

Проведенное типирование 36 штаммов F. tularensis subsp. holarctica, выделенных в России в период с 1966 по 2023 г., позволило определить их родственные связи со штаммами, выделенными в разное время на территории страны и в других частях света. На территории Российской Федерации обнаружена циркуляция штаммов подвида F. tularensis subsp. holarctica основных филогенетических групп B.4, B.6 и B.12. Эритромицин-чувствительные российские изоляты F. tularensis subsp. holarctica, принадлежащие к основной филогенетической группе B.4, выделены из клеща Dermacentor reticulatus в Алтайском крае в 2011 г. (штамм A-1045), штамм B-8367 (или И-339), выделен от больного человека в Хабаровске в 1975 г. Эритромицин-чувствительные российские штаммы F. tularensis subsp. holarctica, принадлежащие к основной филогенетической группе B.6, подгруппе B.7, выделены в Ростовской области в 1996 г. (штамм №27), в г. Хабаровске от больного человека в 1968 г. (штамм B-8365 (или И-223). Исследованные последовательности российских эритромицин-устойчивых штаммов группы B.12 принадлежат к подгруппам B.26-B.23, B.26-B.20 и B.27. На территории Ростовской области кроме эритромицин-чувствительных штаммов с 1988 г. циркулируют генотипы эритромицин-устойчивых штаммов возбудителя туляремии основной филогенетической группы B.12, относящиеся к подгруппе B.27, которые также распространены на территории Донецкой Народной Республики, и два генотипа, принадлежащие разным ветвям подгруппы B.26-B.20. Эритромицин-устойчивые штаммы F. tularensis subsp. holarctica, выделенные на территории Ханты-Мансийского автономного округа в 2013 г. и содержащие разное количество тандемных повторов локуса M-3, принадлежат к разным линиям подгруппы B.26-B.20. Штамм, выделенный на территории Калмыкии в 1987 г., и вакцинный штамм 15 NIIEG относятся к разным линиям подгруппы B.26 (B.23).

Финансирование работы. Работа выполнена в рамках отраслевой программы Роспотребнадзора.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Kevin M, Girault G, Caspar Y, Cherfa MA, Mendy C, Tomaso H, et al. Phylogeography and genetic diversity of Francisella tularensis subsp. holarctica in France (1947—2018). Front Microbiol. 2020;11:287.  https://doi.org/10.3389/fmicb.2020.00287
  2. Shevtsov V, Kairzhanova A, Shevtsov A, Shustov A, Kalendar R, Abdrakhmanov S, et al. Genetic diversity of Francisella tularensis subsp. holarctica in Kazakhstan. PLoS Negl Trop Dis. 2021;15(5):e0009419. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0009419
  3. Koene M, Rijks J, Maas M, Ruuls R, Engelsma M, van Tulden P, et al. Phylogeographic distribution of human and hare Francisella tularensis subsp. holarctica strains in the Netherlandsand and its pathology in European brown hares (Lepus europaeus). Front Cell Infect Microbiol. 2019;9:11.  https://doi.org/10.3389/fcimb.2019.00011
  4. Karlsson E, Golovliov I, Larkeryd A, Granberg M, Larsson E, Ohrman C, et al. Clonality of erythromycin resistance in Francisella tularensis. J Antimicrob Chemother. 2016;71:2815-2823. https://doi.org/10.1093/jac/dkw235
  5. Сорокин В.М., Водопьянов А.С., Цимбалистова М.В., Павлович Н.В. Дифференциация подвидов Francisella tularensis методом INDEL-типирования. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2022;99(2):193-202.  https://doi.org/10.36233/0372-9311-189
  6. Bankevich A, Nurk S, Antipov D, Gurevich AA, Dvorkin M, Kulikov AS, et al. SPAdes: a new genome assembly algorithm and its applications to single-cell sequencing. J Comput Biol. 2012;19(5):455-477.  https://doi.org/10.1089/cmb.2012.0021
  7. Birdsell DN, Vogler AJ, Buchhagen J, Clare A, Kaufman E, Naumann A, et al. TaqMan real-time PCR assays for single-nucleotide polymorphisms which identify Francisella tularensis and its subspecies and subpopulations. PLoS ONE. 2014;9(9):e107964. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0107964
  8. Vogler AJ, Birdsell D, Price LB, Bowers JR, Beckstrom-Sternberg SM, Auerbach RK, et al. Phylogeography of Francisella tularensis: global expansion of a highly fit clone. J Bacteriol. 2009;191(8):2474-2484. https://doi.org/10.1128/JB.01786-08
  9. Svensson K, Granberg M, Karlsson L, Neubauerova V, Forsman M, Johansson A. A real-time PCR array for hierarchical identification of Francisella isolates. PLoS ONE. 2009;4(12):e8360. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0008360
  10. Chanturia G, Birdsell DN, Kekelidze M, Zhgenti E, Babuadze G, Tsertsvadze N, et al. Phylogeography of Francisella tularensis subspecies holarctica from the country of Georgia. BMC Microbiology. 2011;11:139.  https://doi.org/10.1186/1471-2180-11-139
  11. Gyuranecz M, Birdsell DN, Splettstoesser W, Seibold E, Beckstrom-Sternberg SM, Makrai L, et al. Phylogeography of Francisella tularensis subsp. holarctica, Europe. Emerg Infect Dis. 2012;18(2):290-293.  https://doi.org/10.3201/eid1802.111305
  12. Водопьянов А.С., Писанов Р.В., Водопьянов С.О., Олейников И.П. Совершенствование методики SNP-типирования штаммов Vibrio cholerae на основе анализа первичных данных полногеномного секвенирования. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2020;97(6):587-593.  https://doi.org/10.36233/0372-9311-2020-97-6-9
  13. Tamura K., Peterson D., Peterson N., Stecher G., Nei M., Kumar S. MEGA5: molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. Mol Biol Evol. 2011;28(10):2731-2739. https://doi.org/10.1093/molbev/msr121
  14. Larkeryd A, Myrtennas K, Karlsson E, Dwibedi CK, Forsman M, Larsson P, et al. CanSNPer: a hierarchical genotype classifier of clonal pathogens. Bioinformatics. 2014;30(12):1762-1764. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btu113
  15. Seemann T. Snippy: fast bacterial variant calling from NGS reads. 2015. Accessed June 06, 2022. https://github.com/tseemann/snippy)
  16. Shannon P, Markiel A, Ozier O, Baliga NS, Wang JT, Ramage D, et al. Cytoscape: a software environment for integrated models of biomolecular interaction networks. Genome Res. 2003;13(11):2498-2504. https://doi.org/10.1101/gr.1239303
  17. Appelt S, Koppen K, Radonić A, Drechsel O, Jacob D, Grunow R, Heuner K. Genetic diversity and spatial segregation of Francisella tularensis subspecies holarctica in Germany. Front Cell Infect Microbiol. 2019;9:376.  https://doi.org/10.3389/fcimb.2019.00376
  18. Павлов В.М., Козлова И.И., Мокриевич А.Н., Шутко О.Д., Тимофеев В.С., Миронова Р.И. и др, Характеристика штаммов туляремийного микроба, выделенных от больных людей и мелких грызунов во время эпидемии туляремии в г. Ханты-Мансийске в 2013 году. Проблемы особо опасных инфекций. 2015;2:58-62.  https://doi.org/10.21055/0370-1069-2015-2-58-62

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.