Acinetobacter baumannii играет важную роль в нозокомиальных инфекциях, особенно у пациентов отделения анестезиологии, реанимации и интенсивной терапии (ОАРИТ).

Цель исследования — оценить антимикробную резистентность штаммов A. baumannii отделения ОАРИТ за 5 лет.

С 2013 по 2017 г. в проспективное микробиологическое исследование было включено 1578 штаммов, выделенных от пациентов отделения ОАРИТ. Штаммы были выделены из нижнего респираторного тракта (мокрота и промывные воды бронхов), трахеостомы, мочевого тракта, раны, ЦВК, плевральной жидкости и с поверхностей кожи. Идентификацию изолятов и определение их чувствительности к антибиотикам проводили с помощью анализатора VITEK 2 («BioMerieux»).

Всего было получено 294 штамма A. baumannii (18,6% от всех выделенных изолятов), чаще других штаммы были выделены с трахеобронхиального дерева (n=113, 38,4%), респираторного тракта (n=54, 18,3%), мочевого тракта (n=52, 17,6%), из раны (n=35, 11,9%), из дренажа (n=14, 4,7%), из ЦВК (n=9, 3,0%). Исследование антибиотикограмм показало высокий уровень резистентности: ампициллин/сульбактам и пиперциллин/тазобактам (100%), цефепим (97,1%), цефтазидим (96,9%), ципрофлоксацин (96,2%), левофлоксацин (95%), имипенем (93,9%), меропенем (93,6%). Наименьшая резистентность отмечается к аминогликозидам: амикацин (74,4%), нетилмицин (57,3%), гентамицин (46,3%) и тобрамицин (39,4%).

Высокий уровень резистентности к цефалоспоринам, карбапенемам, фторхинолонам и появление полирезистентных штаммов A. baumannii в ОАРИТ настораживает и побуждает к более строгому соблюдению инфекционного контроля, так как в сложившейся ситуации при наличии всего пары эффективных антибактериальных препаратов лечение будет затруднено.

* * *

Pseudomonas aeruginosa — важная причина серьезных инфекций у новорожденных и детей раннего возраста, которые сопровождаются высокой смертностью.

Цель исследования — определить в динамике частоту обнаружения и уровень резистентности штаммов P. aeruginosa, выделенных от пациентов детского отделения анестезиологии, реанимации и интенсивной терапии (ОАРИТ).

С января 2013 г. по декабрь 2017 г. проведено проспективное микробиологическое исследование 4094 клинических образцов (мазок из раны, кровь, респираторный тракт, интраваскулярный катетер) от пациентов детского ОАРИТ (новорожденные и дети до 3 лет) после проведения кардиохирургических операций (операции на сердце и крупных сосудах). Идентификацию изолятов и определение антибиотикочувствительности проводили на анализаторе VITEK 2 («BioMerieux»).

Всего было получено 350 изолятов Ps. aeruginosa (n=4250, 8,2% от общего количества выделенных штаммов) чаще с респираторного тракта — 58,2% (n=204), из трахеобронхиального дерева — 37,1% (n=130) и раневого отделяемого — 2,2% (n=8). Частота обнаружения штаммов Ps. аeruginosa в клиническом материале увеличилась с 2,4% в 2013 г. до 12,1% в 2017 г. (р<0,022). Мониторинг антибиотикочувствительности показал тенденцию увеличения резистентности: к меропенему с 10,9% в 2013 г. до 67,8% в 2017 г. (р<0,034), к цефтазидиму с 18,3 до 59,3% (р<0,021), к цефепиму с 25,0 до 55,6% (р<0,044), к гентамицину с 8,3 до 66,0% (р<0,013), к ципрофлоксацину с 0 до 57,9% (р<0,025), к левофлоксацину с 10,0 до 62,0% (р<0,03) соответственно.

Быстро нарастающая резистентность штаммов Ps. aeruginosa вызывает необходимость создания хорошо разработанной стратегии инфекционного контроля, включающей правильную гигиену медицинского персонала, микробиологический мониторинг и внутрибольничный контроль, что позволит снизить риск возникновения неизлечимых инфекций.

* * *

Микробиологическая лаборатория — неотъемлемая часть системы контроля ИСМП в любой медицинской организации (МО). Микробиологическая диагностика используется для выполнения плановых и оперативных санитарно-бактериологических исследований при анализе санитарно-эпидемиологической ситуации в стационаре, проведении эпидемиологического расследования, исследования биоматериалов от контактных лиц. Данные локального микробиологического мониторинга позволяют оценить эффективность внедрения новых противоэпидемических программ, тренингов сотрудников, закупки новых лекарственных средств и дезинфектантов и создания новых протоколов антибактериальной терапии.

Основной проблемой микробиологической диагностики не только педиатрических, но и взрослых МО является возросшая резистентность патогенов ИСМП. Антибиотикорезистентность патогенов ИСМП перестала быть уникальной для конкретного стационара. Распространенность большинства экстремально-резистентных штаммов носит пандемический характер. Так, карбапенем-устойчивые штаммы Klebsiella pneumoniae, изолированные при ИСМП есть в ЛПО от Калининграда (СЗФО — 5—13%; ЦФО — 12—29,5%; ПФО — 12,5—25%) до Владивостока (ДФО — 7,3—10,7%) (данные AMRmap/www antibiotic.ru).

Определение антибиотикорезистентности в лабораториях РФ осуществляется на основании разных документов, что приводит к не сравниваемым результатам. К примеру, штамм Klebsiella pneumoniae c МПК меропенема 4 мг/л на основании МУК 2004 г. является чувствительным, а при использовании критериев CLSI 2010—2015 г. считается устойчивым.

Осуществление микробиологического мониторинга затруднено отсутствием единых требований к лабораторным информационным системам, в которых обязательно должна быть возможность не только статистической обработки результата, но и эпидемиологической оценки, основанной на критерии «один пациент — один штамм».

В актуализации нуждается спектр патогенов, подлежащих мониторингу в педиатрических М.О. Одной из особенностей ИСМП педиатрических стационаров является этиологическая значимость коагулаза-негативных стафилококков. В спектре положительных гемокультур ОРИТ новорожденных (ОРИТН) доля Staphylococcus spp. — 81% (для сравнения в многопрофильном стационаре для взрослых — в спектре гемокультур около 37% коагулаза-негативных стафилококков). При обследовании объектов внешней среды в ОРИТН доля Staphylococcus spp. составила более 66%. Однако коагулаза-негативные стафилококки, как и Enterococcus faecium, Acinetobacter baumanii, Burkholderia cepacia, некоторые виды Candida spp., явно имеющие значительную этиологическую роль в ИСМП, формально не являются санитарно-показательными. Не является обязательным контроль их антибиотикорезистентности.

Мониторинг патогенов ИСМП по-прежнему ограничен факультативно-анаэробными и аэробными бактериями. При этом все чаще в литературе публикуются данные исследований, подтверждающих значимую роль анаэробов, вирусов, грибов и простейших в эпидемиологии ИСМП. Особое значение это имеет для многопрофильных детских стационаров, оказывающих ургентную помощь. Необходима методическая поддержка для обоснования затрат и разработки протоколов обследования контактных лиц и объектов внешней среды при инфекциях такой этиологии.

Необходимо формирование единых подходов к определению и интерпретации чувствительности патогенов ИСМП. Требуется актуализация документов с учетом пандемического распространения экстремально резистентных штаммов. Актуальный спектр патогенов должен формироваться с учетом профиля М.О. Необходимо создание единых требований к функциональным возможностям медицинских и лабораторных информационных систем.

* * *

Установлено, что тело человека может выделять до 3,7·10⁷ бактериальных и 7,3·10⁶ грибных копий генома в 1 ч и даже в хорошо вентилируемых помещениях микробиом содержит меньше микроорганизмов из окружающей среды и больше представителей микрофлоры человека.

В течение 1 ч микробиом нового пациента устанавливается в палате. Значительно больший риск получения устойчивого штамма у пациента, поступившего в палату, откуда выбыл носитель устойчивого штамма, несмотря на все усилия по дезинфекции. Поскольку инфицированные пациенты сами по себе являются источником внутрибольничных штаммов, то поверхности в зоне их досягаемости высоко контаминированы. Риск возникновения внутрибольничной инфекции существенно возрастает, когда общее число микробных клеток на поверхности превышает 500 КОЕ/100 см, но в то же время менее 15 клеток S. aureus необходимо для развития экспериментальной инфекции. Подавляющее большинство возбудителей внутрибольничной инфекции передается от пациента к пациенту напрямую, хотя, естественно, и персонал, и оборудование и поверхности могут служить источником заражения. Руки медицинского персонала переносят 20—40% внутрибольничных инфекций. Источником инфекции могут быть не только инвазивные процедуры, но и неинвазивное оборудование (электрическое и пр.). Больничное белье также является источником внутрибольничных штаммов. Биоаэрозоль может распространиться при простом выравнивании белья или его смене. Такие бактерии, как Staphylococcus aureus, различные виды Enterococcus, Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella pneumonia, различные виды Enterobacter, Acinetobacter baumannii и Klebsiella oxytoca, несмотря на адекватную дезинфекцию, часто обнаруживаются на стетоскопах, электронных термометрах и другом привычном инструментарии больниц. От 14—20% от всех госпитальных инфекций составляют хирургические инфекции. Большинство хирургических инфекций вызваны представителями флоры пациента (являются эндогенными). Иногда источником хирургической инфекции может стать персонал и окружающее пространство. К факторам, влияющим на возникновение хирургических инфекций, относят ассоциированные с самим пациентом (e.g., возраст, ожирение, сахарный диабет и другие заболевания); особенности самой операции и периоперационной подготовки и окружение в отделение реанимации.

Биопленки обнаруживаются на 93% исследованных поверхностей стационара. Многовидовые биопленки могут противостоять общепринятым протоколам дезинфекции и уборки и сохранятся в течение 1 года, создавая постоянный источник инфекции в стационаре.

Отделения реанимаций являются резервуаром накопления и сохранения внутрибольничной условно-патогенной флоры.

Серьезной проблемой во всем мире в настоящее время является антибиотикоустойчивость внутрибольничных патогенов.

Основными микроорганизмами, выделяемыми при инфекциях в реанимационных отделениях ГКБ № 67 им. Л.А. Ворохобова, являются Klebsiella pneumoniae, A. baumannii, P. aeruginosa, Escherichia coli и S. aureus. Доля мультирезистентных штаммов в отделении реанимации политравмы достигает 100%.

Мы провели ретроспективный анализ микрофлоры аспирата трахеи, бронхоальвеолярного лаважа и мочи пациентов, длительно (от 34 до 112 дней) находившихся в отделении реанимации для пациентов с сочетанной травмой. Пробы для посева брали 2 раза в неделю, оценивали микробный пейзаж и антибиотикорезистентность выделенных штаммов. Полученные данные соотносили с уровнем С-реактивного белка крови и данными рентгенограммы легких. Пациенты быстро колонизировались штаммами, характерными для данного отделения. Оказалось, что на протяжении всего пребывания в отделении изменения в состоянии пациента не связаны ни с качественными, ни с количественными изменениями в составе микрофлоры. Многовидовой состав не давал возможности оценить вероятность причинного возбудителя в случае развития сепсиса или пневмонии, а множественная устойчивость выделенных штаммов не облегчала выбор антибиотического препарата.

Данные литературы свидетельствуют, что обнаружение микроорганизмов в эндотрахеальном аспирате не всегда свидетельствует об инфекции. При этом необходимо принимать во внимание ограниченность классических культуральных методов микробиологии и новые данные об отличиях микрофлоры реанимационных пациентов, полученные с помощью полногеномного секвенирования.

Очевидно, необходимо провести проспективное исследование для выявления корреляции микробного пейзажа, изменений в показателях воспаления и рентгенологических данных, а также для оценки целесообразности и предиктивной ценности проведения микробиологического мониторинга в реанимационных отделениях.

* * *

Работа современной микробиологической лаборатории невозможна без молекулярно-генетических методов. В последние годы доступными для использования в рутинной практике становятся методы, основанные на секвенировании ДНК микроорганизмов. Такие методы существенно расширяют диагностические возможности микробиологической лаборатории. Секвенирование — это определение нуклеотидной последовательности ДНК. Основные задачи, которые помогают решить современные методы секвенирования, — это точная видовая идентификация микроорганизмов по последовательностям генов рибосомальных РНК, типирование клинических изолятов с целью оценки их уровня патогенности, решение эпидемиологических задач, а также поиск и анализ нуклеотидной последовательности отдельных генов. Помимо возможности проведения секвенирования выделенных культур микроорганизмов, данный метод активно используется и для видовой идентификации микроорганизмов в биоматериале без предварительного культивирования.

В настоящее время видовая идентификация по последовательностям генов рибосомальных РНК является «золотым стандартом» молекулярно-генетической диагностики. В отличие от метода полимеразной цепной реакции, при использовании которой с целью типирования микроорганизмов необходимо иметь видоспецифические праймеры, набор которых определяется возможностями лаборатории и наличием зарегистрированных тест-систем, секвенирование генов рибосомальных РНК позволяет определить практически любой микроорганизм, не требуя никакой предварительной информации. Особое внимание отечественные и зарубежные специалисты уделяют перспективному методу высокопроизводительного секвенирования (NGS), в рамках которого все более доступным становится проведение полногеномных исследований. Полногеномные исследования позволяют в рамках одного анализа полностью охарактеризовать изолят: провести точную видовую идентификацию, получить информацию о его серотипе и сиквенс-типе, генетическом профиле антибиотикорезистентности и факторах вирулентности изолята. Предполагается, что в будущем, с развитием и удешевлением полногеномных технологий, они будут активно использоваться в рутинной практике микробиологической лаборатории.

* * *

В конце ХХ века наряду с традиционной культуральной диагностикой в арсенале микробиологических лабораторий появился новый метод протеомного типирования возбудителей инфекций, основанный на использовании матрично-активированной лазерной дезорбционной/ионизационной времяпролетной масс-спектрометрии — MALDI-ToF MS. Метод MALDI-ToF MS произвел революцию в видовой идентификации микроорганизмов во всем мире, благодаря простоте выполнения, высокой чувствительности и специфичности, а также низкой себестоимости.

На основе MALDI-ToF MS видовая идентификация микроорганизмов может быть выполнена за минуты с очень низкой стоимостью, в то время как идентификация по общепринятым методикам с применением автоматизированных бактериологических анализаторов занимает от нескольких часов до 2 сут и более со значительными затратами на тест-системы и дополнительные реактивы и расходные материалы. Высокой ценностью метода явилась возможность проведения прямой индикации бактерий и грибов в клиническом материале, без предварительного культивирования, что значительно сокращает сроки выполнения анализа и открывает новые ресурсы для использования в различных схемах микробиологической диагностики. Особую актуальность приобретают разрабатываемые протоколы по прямому выявлению маркеров резистентности (метициллинрезистентность стафилококков, карбапенемаз энтеробактерий и синегнойной палочки т.д.) методом MALDI-ToF MS и их внедрение в рутинную практику микробиологических лабораторий.

Масс-спектрометрия может стать основным методом видовой идентификации микроорганизмов в будущем, так как это направление продолжает развиваться, а существующие базы данных микроорганизмов стремительно пополняются. Учитывая скорость развития генетической изменчивости микроорганизмов и в особенности устойчивости к антимикробным препаратам, лаборатория микробиологии должна развиваться с еще большей скоростью, а внедрение новых инструментов повышенной точности, скорости и чувствительности при идентификации микробов не должно ограничиваться научно-исследовательскими лабораториями или референс-центрами. В России метод MALDI-ToF MS-анализа пока мало используется, хотя потенциал его широкого внедрения в рутинную работу лабораторий микробиологии и интеграция в уже существующие автоматизированные лабораторные системы и протоколы ведения микробиологического анализа являются неизбежными. Применение метода радикально изменит качество и скорость микробиологического исследования, что приведет к улучшению диагностики инфекционной патологии, сокращению сроков госпитализации больных, благоприятному прогнозу исхода лечения и снижению финансовых затрат как для пациента, так и для медицинской организации в целом.

* * *

Современная медицина стремительно совершенствуется и занимает самые передовые позиции в мировой науке. В условиях развития и широкого внедрения в клиническую практику многих проектов здравоохранения, которые, безусловно, относятся к категории инновационных технологий, повышаются требования к современным методам лабораторной диагностики. С развитием инновационных и инвазивных технологий (трансплантация органов, пересадка стволовых клеток, шунтирование сосудов сердца и др.) повышается риск развития инфекционных осложнений, поэтому профилактике инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи, уделяется особое значение.

Москва — самый крупный мегаполис в стране и один из числа самых больших мегаполисов мира. В Москве вот уже несколько лет проводится работа по построению современной функциональной модели лабораторной службы. В рамках реализации «дорожной карты» реорганизации и оптимизации лабораторной службы города в ближайшее время планируется разработка и внедрение модели микробиологической службы. При реализации данной модели необходимо применение ряда инструментов по оптимизации службы:

— стандартизация и автоматизация микробиологических исследований;

— внедрение технологий молекулярно-генетического типирования и масс-спектрометрического анализа;

— снижение затрат за счет внедрения унифицированных технологий преаналитического и аналитического этапа анализа;

— расширение перечня выполняемых исследований (в частности, редко назначаемых и высокотехнологичных исследований);

— увеличение финансирования за счет повышения рентабельности.

Основные пути развития микробиологической службы предполагают:

— централизацию скрининговых, плановых и редко назначаемых микробиологических исследований на базе функционирующих централизованных микробиологических лабораторий (ЦКДЛ II уровня);

— консолидацию и реорганизацию микробиологических (бактериологических) лабораторий стационаров в общую структуру лабораторной службы медицинской организации;

— внедрение тестов по месту лечения (point-of-care) в клинических отделениях медицинских организаций как стационарного, так и амбулаторно-поликлинического звена.

Внедрение клинически и экономически обоснованных комбинаций подходов позволят существенно сократить затраты на содержание микробиологической службы Москвы, стандартизировать работу микробиологических лабораторий и сократить сроки получения результатов исследований.

Реалии исторического развития российской системы микробиологической службы таковы, что внедрение молекулярных методов диагностики инфекций происходило вне бактериологических лабораторий, а традиционная клиническая микробиология в настоящее время рассматривается лишь как культуральная диагностика. Это в значительной степени тормозит развитие службы на современном этапе и не может рассматриваться как прогрессивное направление. Интеграция микробиологических (бактериологические) лабораторий в единый лабораторный комплекс даст возможность микробиологической службе мегаполиса быстрее и шире внедрить иммунологические и молекулярно-генетические методы в комплексную систему диагностики инфекций.

Важным аспектом для удачной реализации предложенной модели является решение ряда проблем, среди которых своевременная и качественная транспортировка образцов, коммуникация между лечащим врачом, клиническим фармакологом и госпитальным эпидемиологом по результатам исследования как определенного пациента, так и для получения отчетности по микробиологическому мониторингу медицинской организации с данными «микробного пейзажа» и ее антибиотикорезистентности.

Одним из перспективных направлений для решения проблем коммуникации между специалистами различных профилей для правильного и своевременного принятия решений являются интегрированные информационные системы передачи клинической информации в районе, округе и городе в целом. Создание таких передовых общих информационных сетевых систем для передачи результатов микробиологических тестов может чрезвычайно способствовать более ранней и точной диагностике, контролю и профилактике различных инфекционных заболеваний. С целью такой интеграции в Москве создан и в настоящее время находится на этапе практической реализации Централизованный лабораторный сервис Единой медицинской информационно-аналитической системы (ЦЛС ЕМИАС). Внедрение ЦЛС ЕМИАС во всех государственных медицинских организациях города и его интеграция с лабораторными информационными системами позволит реализовать единую информационную платформу лабораторной службы мегаполиса.

Экономика микробиологической службы складывается из ряда компонентов, среди которых не только прямые затраты на материально-техническое и ресурсное обеспечение службы, но и на финансовую и медицинскую составляющую от сокращения стоимости и сроков антибиотикотерапии и лечения в целом. Результат неадекватной терапии оборачивается для пациента неполным восстановлением здоровья, длительным лечением, а для здравоохранения — увеличением расходов на медицинское обслуживание, удлинением сроков госпитального лечения, ростом смертности, повышением затрат на разработку новых антибиотиков и т. д. Таким образом, первостепенной целью предлагаемой модели микробиологической службы Москвы является внедрение обоснованной клинико-экономической модели для достижения качественной диагностики, профилактики и лечения пациентов с инфекционными заболеваниями и гнойно-септическими осложнениями.

* * *

В последнее время проблема оппортунистических инфекций и нарастающая угроза антибиотикорезистентности нозокомиальных штаммов бактерий широко дискутируется не только в среде врачей микробиологов, эпидемиологов и инфекционистов, но и на конгрессах и конференциях врачей других специальностей, в средствах массовой информации и даже на заседаниях правительства.

Всего за 100 лет произошли знаковые события, и XX век можно признать эрой антибиотиков, когда после открытия пенициллина казалось, что проблема инфекций решена навсегда. Более 50 лет велись активные разработки по созданию новых антибиотиков, и за открытия в области инфекции и иммунитета были присуждены 23 нобелевские премии, что подчеркивает значимость проблемы и все больший интерес к этой области медицины. Но в начале XXI века снизился интерес фармакологических компаний к разработке новых препаратов, и это произошло вследствие того, что бактерии научились приспосабливаться и приобретать резистентность к новым антибиотикам раньше, чем производители окупали вложенные средства в разработку. При этом стоит отметить, что урбанизация и миграция населения, увеличение продолжительности жизни привели к увеличению процента людей в популяции со сниженным иммунитетом и генетическими полиморфизмами. А почти полная ликвидация инфекций, вызванных абсолютными патогенами, привела к замещению их инфекциями, вызванными условно-патогенными микроорганизмами (УПМ).

Особенностью современных инфекций является то, что они вызваны УПМ, в норме заселяющими различные биотопы организма человека. Возбудители таких инфекций обладают низким патогенным потенциалом и низкой иммуногенностью, но способны быстро приспосабливаться к меняющимся условиям среды (образовывать биопленки, приобретать механизмы устойчивости к антибиотикам и др.). Поэтому эмпирическая терапия не всегда эффективна и знание основ клинической микробиологии необходимо врачу любой специальности.

Самые серьезные жизнеугрожающие инфекции вызываются группой резистентных микроорганизмов, которых американское Общество по инфекционным болезням (IDSA) обозначило как ESKAPE-патогены (от анг. escape — ускользать, избегать, спасаться), поскольку они эффектив-но «избегают» воздействия антибактериальных препаратов. К ним относятся: Enterococcus spp., Staphylococcus aureus, Klebsiella pneumonia, Acinetobacter baumannii, Pseudomonas aeruginosa, Escherichia coli.

По результатам микробиологического мониторинга, в стационарах Департамента здравоохранения Москвы в 2016 г. доля ESKAPE-патогенов составляла 51,1% среди всех выделенных микроорганизмов, из которых Escherichia coli составила 12,9%, Enterococcus spp. — 11,6%, Klebsiella pneumoniae — 10,2%, Staphylococcus aureus — 9,1%, Acinetobacter baumanii — 3,7%, Pseudomonas aeruginosa — 3,6%. По результатам тестирования чувствительности к антибиотикам выявлено наличие штаммов продуцентов бета-лактамаз расширенного спектра (БЛРС) среди изолятов K. pneumoniae — 53,7%, E. coli — 22,6%, а продуцентов карбапенемаз: A. baumanii — 59,3%, P. aeruginosa — 35,9%, K. pneumoniae — 27,0%. Метициллинрезистентными штаммами S. aureus (MRSA) оказались 20,8% штаммов, а ванкомицинрезистентные энтерококки (VRE) — 5,4%.

Антибиотикорезистентность бактерий может обусловливаться большим количеством различных механизмов, за каждым из которых стоят сотни генов, и все это приводит к тому, что применяемые нами антибактериальные препараты для лечения инфекций становятся неэффективными. Стоит признать, что проблема антибиотикорезистентности и контроль за ней — сложная задача, требующая комплексного подхода.

В связи с этим актуальной задачей современного медицинского учреждения является осуществление микробиологического мониторинга, который предполагает систематический и целенаправленный поиск микроорганизмов, потенциально способных вызвать и/или вызывающих у пациентов инфекционный (гнойно-воспалительный) процесс, а также позволяет организовать слежение за формированием штаммов патогенных или условно-патогенных микроорганизмов и уровнем их резистентности к антимикробным препаратам. Анализ данных микробиологического мониторинга позволяет избежать необоснованных материальных и временны́х затрат при назначении эмпирической терапии в отделениях стационара, а также реализовать закупку антибактериальных препаратов на основе реальных данных антибиотикорезистентности нозокомиальных патогенов.

В настоящее время новые технологии и инновационные методы дают огромный толчок развитию микробиологической службы. Но самые прогрессивные и современные технологии не заставят микробы расти быстрее, поэтому культуральная диагностика («золотой стандарт» микробиологии) всегда будет иметь один минус — это время на культивирование микроорганизмов, которое в среднем составляет 18—24 ч. С разработкой и развитием молекулярных методов тестирования появилась реальная возможность решения задач «быстрой микробиологии». Внедрение технологий инновационной диагностики в практику микробиологических лабораторий дает возможность детекции микробов и генетических детерминант резистентности в течение 1—3 ч. Важным аспектом при организации микробиологического мониторинга является интеграция традиционных бактериологических подходов с высокопроизводительными молекулярно-биологическими технологиями.

Таким образом, стоит отметить, что структура нозокомиальных инфекций индивидуальна для каждого стационара (отделения), что обусловлено множеством факторов (техническая оснащенность, квалификация персонала, контингент пациентов, антибиотикополитика и т. д.), но при этом отмечается ведущая роль ESKAPE-патогенов в развитии инфекционных заболеваний и гнойно-септических осложнений в медицинских организациях различного профиля. С целью предупреждения/уменьшения распространения полирезистентных штаммов микроорганизмов необходимо проведение постоянного микробиологического мониторинга с анализом результатов и разработкой алгоритмов рациональной антимикробной терапии. А при формировании регламента микробиологического обследования пациентов в отделениях высокого риска развития нозокомиальных инфекций в некоторых случаях необходимо проводить экспресс-диагностику так называемых «проблемных» микроорганизмов (продуценты карбапенемаз и БЛРС, MRSA, VRE) с применением технологий «быстрой» диагностики.