ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроектыО насРекламаДоставка/ОплатаКонтакты
+7 (495) 482-43-29
  • Главная
  • / Журналы
  • / Вернуться в журнал
  • / Содержание номера
  • / Статья
Методы изучения гамма-дельта-T-лимфоцитов в дерматологии

Методы изучения гамма-дельта-T-лимфоцитов в дерматологии

Авторы:
Екатерина Вячеславовна Сорокина,
Евгений Олегович Калиниченко,
Элина Альтафовна Ахматова,
Наталья Вадимовна Мишина

Журнал: Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(3):383-389.

DOI: 10.17116/klinderma202625031383

Прочитано: 286 раз

Резюме

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ

Систематизировать современные методы выделения и анализа γδ-T-лимфоцитов из кожи человека, оценить их преимущества, ограничения и применимость в исследованиях дерматологических заболеваний.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

Проведен анализ научных публикаций, посвященных протоколам выделения γδ-T-клеток из кожи, включая механическую и ферментативную диссоциацию, магнитную и флуоресцентную сортировку, методы эксплантатов и спонтанной миграции. Рассмотрены особенности работы с кожей человека.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Выделение кожных γδ-T-лимфоцитов сопряжено с рядом методических сложностей, включая низкую представленность клеток, необходимость сохранения их жизнеспособности и функциональной активности, а также риск повреждения поверхностных маркеров при ферментативной обработке. Оптимальные протоколы варьируют в зависимости от целей исследования: для иммунофенотипирования предпочтительны щадящие ферменты (коллагеназа D, либеразы), тогда как для функциональных тестов и культивирования эффективны методы эксплантатов и кратковременного восстановления клеток после диссоциации.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Выбор метода выделения γδ-T-лимфоцитов должен учитывать специфику исследования. Перспективными направлениями являются стандартизация протоколов, минимизация повреждения клеток и разработка новых подходов, таких как 3D-культуры. Дальнейшие исследования в этой области могут способствовать углубленному пониманию роли γδ-T-клеток в патогенезе кожных заболеваний и разработке методов таргетной терапии.

Ключевые слова

  • γδ-T-лимфоциты
  • кожа
  • методы выделения клеток
  • кожные заболевания
  • ферментативная диссоциация
  • клеточная культура

Дата поступления: 30.07.2025

Дата принятия в печать: 24.03.2026

Дата публикации: 03.07.2026

Литература / References
  1. Hu Y, Hu Q, Li Y, Lu L, Xiang Z, Yin Z, Kabelitz D, Wu Y. γδ T cells: origin and fate, subsets, diseases and immunotherapy. Signal Transduct Target Ther. 2023 Nov 22;8(1):434. https://doi.org/10.1038/s41392-023-01653-8
  2. Ribot JC, Lopes N, Silva-Santos B. γδ T cells in tissue physiology and surveillance. Nat Rev Immunol. 2021 Apr;21(4):221-232. https://doi.org/10.1038/s41577-020-00452-4
  3. Qu G, Wang S, Zhou Z, Jiang D, Liao A, Luo J. Comparing Mouse and Human Tissue-Resident γδ T Cells. Front Immunol. 2022 Jun 8;13:891687. https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.891687
  4. Nestle FO, Di Meglio P, Qin JZ, Nickoloff BJ. Skin immune sentinels in health and disease. Nat Rev Immunol. 2009 Oct;9(10):679-91. https://doi.org/10.1038/nri2622
  5. Zhang W, Pajulas A, Kaplan MH. γδ T Cells in Skin Inflammation. Crit Rev Immunol. 2022;42(5):43-56. https://doi.org/10.1615/CritRevImmunol.2022047288
  6. Cruz MS, Diamond A, Russell A, Jameson JM. Human αβ and γδ T Cells in Skin Immunity and Disease. Front Immunol. 2018 Jun 6;9:1304. https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.01304
  7. Girardi M. Immunosurveillance and immunoregulation by gammadelta T cells. J Invest Dermatol. 2006 Jan;126(1):25-31. https://doi.org/10.1038/sj.jid.5700003
  8. Hu W, Shang R, Yang J, Chen C, Liu Z, Liang G, He W, Luo G. Skin γδ T Cells and Their Function in Wound Healing. Front Immunol. 2022 Apr 11;13:875076. PMID: 35479079; PMCID: PMC9035842. https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.875076
  9. Sumaria N, Roediger B, Ng LG, Qin J, Pinto R, Cavanagh LL, Shklovskaya E, Fazekas de St Groth B, Triccas JA, Weninger W. Cutaneous immunosurveillance by self-renewing dermal gammadelta T cells. J Exp Med. 2011 Mar 14;208(3):505-518. https://doi.org/10.1084/jem.20101824
  10. Castillo-González R, Cibrian D, Sánchez-Madrid F. Dissecting the complexity of γδ T-cell subsets in skin homeostasis, inflammation, and malignancy. J Allergy Clin Immunol. 2021 Jun;147(6):2030-2042. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2020.11.023
  11. Munoz LD, Sweeney MJ, Jameson JM. Skin Resident γδ T Cell Function and Regulation in Wound Repair. Int J Mol Sci. 2020 Dec 5;21(23):9286. https://doi.org/10.3390/ijms21239286
  12. Marshall AS, Silva JR, Bannerman CA, Gilron I, Ghasemlou N. Skin-Resident γδ T Cells Exhibit Site-Specific Morphology and Activation States. J Immunol Res. 2019 Jan 6;2019:9020234. https://doi.org/10.1155/2019/9020234
  13. Chojnacka-Purpurowicz J, Owczarczyk-Saczonek A, Nedoszytko B. The Role of Gamma Delta T Lymphocytes in Physiological and Pathological Condition-Focus on Psoriasis, Atopic Dermatitis, Autoimmune Disorders, Cancer and Lymphomas. Int J Mol Sci. 2024 Jul 21;25(14):7960. https://doi.org/10.3390/ijms25147960
  14. Cai Y, Shen X, Ding C, Qi C, Li K, Li X, Jala VR, Zhang HG, Wang T, Zheng J, Yan J. Pivotal role of dermal IL-17-producing γδ T cells in skin inflammation. Immunity. 2011 Oct 28;35(4):596-610. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2011.08.001
  15. Macleod AS, Havran WL. Functions of skin-resident γδ T cells. Cell Mol Life Sci. 2011 Jul;68(14):2399-2408. https://doi.org/10.1007/s00018-011-0702-x
  16. MacLeod AS, Hemmers S, Garijo O, Chabod M, Mowen K, Witherden DA, Havran WL. Dendritic epidermal T cells regulate skin antimicrobial barrier function. J Clin Invest. 2013 Oct;123(10):4364-4374. https://doi.org/10.1172/JCI70064
  17. Сорокина Е.В., Бишева И.В., Мишина Н.В., Столпникова В.Н. Роль γδ T-лимфоцитов в патогенезе аутоиммунных заболеваний с поражением кожи. Успехи современной биологии. 2023;143(1):16-21. https://doi.org/10.31857/S0042132423010088
  18. Laggner U, Di Meglio P, Perera GK, Hundhausen C, Lacy KE, Ali N, Smith CH, Hayday AC, Nickoloff BJ, Nestle FO. Identification of a novel proinflammatory human skin-homing Vγ9Vδ2 T cell subset with a potential role in psoriasis. J Immunol. 2011 Sep 1;187(5):2783-2793. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1100804
  19. He X, de Oliveira VL, Keijsers R, Joosten I, Koenen HJ. Lymphocyte Isolation from Human Skin for Phenotypic Analysis and Ex Vivo Cell Culture. J Vis Exp. 2016 Apr 8;(110):e52564. https://doi.org/10.3791/52564
  20. Hailer AA, Wu D, El Kurdi A, Yuan M, Cho RJ, Cheng JB. Isolation of human cutaneous immune cells for single-cell RNA sequencing. STAR Protoc. 2023 Apr 28;4(2):102239. https://doi.org/10.1016/j.xpro.2023.102239
  21. Saluzzo S, Gail LM, Neuwirth T, Pandey RV, Farlik M, Stary G. Processing human skin samples for single-cell assays. STAR Protoc. 2022 Jun 17;3(3):101470. https://doi.org/10.1016/j.xpro.2022.101470
  22. Song J, Deng T. The Adipocyte and Adaptive Immunity. Front Immunol. 2020 Nov 27;11:593058. doi: 10.3389/fimmu.2020.593058. Erratum in: Front Immunol. 2021 Oct 08;12:784125. https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.784125
  23. https://www.miltenyibiotec.com/US-en/products/whole-skin-dissociation-kit-human.html
  24. Robinson JP. Flow cytometry: past and future. Biotechniques. 2022 Apr;72(4): 159-169. https://doi.org/10.2144/btn-2022-0005
  25. Cossarizza A, Chang HD, Radbruch A, et al. Guidelines for the use of flow cytometry and cell sorting in immunological studies (second edition). Eur J Immunol. 2019;49(10):1457-1973. https://doi.org/10.1002/eji.201970107
  26. Willasch A, Eing S, Weber G, Kuçi S, Schneider G, Soerensen J, Jarisch A, Rettinger E, Koehl U, Klingebiel T, Kreyenberg H, Bader P. Enrichment of cell subpopulations applying automated MACS technique: purity, recovery and applicability for PCR-based chimerism analysis. Bone Marrow Transplant. 2010 Jan;45(1):181-189. https://doi.org/10.1038/bmt.2009.89
  27. Polakova A, Hudemann C, Wiemers F, Kadys A, Gremke N, Lang M, Zwiorek L, Pfützner W, Hertl M, Möbs C, Zimmer CL. Isolation of Lymphocytes from Human Skin and Murine Tissues: A Rapid and Epitope-Preserving Approach. JID Innov. 2022 Sep 7;3(1):100155. https://doi.org/10.1016/j.xjidi.2022.100155
  28. Du W, Lenz D, Köhler R, Zhang E, Cendon C, Li J, Massoud M, Wachtlin J, Bodo J, Hauser AE, Radbruch A, Dong J. Rapid Isolation of Functional ex vivo Human Skin Tissue-Resident Memory T Lymphocytes. Front Immunol. 2021 Mar 22;12:624013. https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.624013
  29. Salimi M, Subramaniam S, Selvakumar T, Wang X, Zemenides S, Johnson D, Ogg G. Enhanced isolation of lymphoid cells from human skin. Clin Exp Dermatol. 2016 Jul;41(5):552-556. https://doi.org/10.1111/ced.12802
  30. Maitre E, Le-Page AL, Comoz F, Truquet F, Damaj G, Cornet E, Verneuil L, Salaün V, Troussard X. Usefulness of Flow Cytometry for the Detection of Cutaneous Localization in Malignant Hematologic Disorders. Cytometry B Clin Cytom. 2019 Jul;96(4):283-293. https://doi.org/10.1002/cyto.b.21784
  31. Watanabe R, Gehad A, Yang C, Scott LL, Teague JE, Schlapbach C, Elco CP, Huang V, Matos TR, Kupper TS, Clark RA. Human skin is protected by four functionally and phenotypically discrete populations of resident and recirculating memory T cells. Sci Transl Med. 2015 Mar 18;7(279): 279ra39. https://doi.org/10.1126/scitranslmed.3010302
  32. Reitermaier R, Ayub T, Staller J, Kienzl P, Fortelny N, Vieyra-Garcia PA, Worda C, Fiala C, Staud C, Eppel W, Scharrer A, Krausgruber T, Elbe-Bürger A. The molecular and phenotypic makeup of fetal human skin T lymphocytes. Development. 2022 Apr 15;149(8):dev199781. https://doi.org/10.1242/dev.199781
  33. Schaerli P, Ebert L, Willimann K, Blaser A, Roos RS, Loetscher P, Moser B. A skin-selective homing mechanism for human immune surveillance T cells. J Exp Med. 2004 May 3;199(9):1265-1275. https://doi.org/10.1084/jem.20032177
  34. Hailer AA, Wu D, El Kurdi A, Yuan M, Cho RJ, Cheng JB. Isolation of human cutaneous immune cells for single-cell RNA sequencing. STAR Protoc. 2023 Apr 28;4(2):102239. https://doi.org/10.1016/j.xpro.2023.102239
  35. Sato T, Ogawa Y, Ishikawa A, Nagasaka Y, Kinoshita M, Shiokawa I, Shimada S, Momosawa A, Kawamura T. Revisiting the Experimental Methods for Human Skin T-Cell Analysis. JID Innov. 2022 Mar 23;2(4):100125. https://doi.org/10.1016/j.xjidi.2022.100125
  36. Botting RA, Bertram KM, Baharlou H, Sandgren KJ, Fletcher J, Rhodes JW, Rana H, Plasto TM, Wang XM, Lim JJK, Barnouti L, Kohout MP, Papadopoulos T, Merten S, Olbourne N, Cunningham AL, Haniffa M, Harman AN. Phenotypic and functional consequences of different isolation protocols on skin mononuclear phagocytes. J Leukoc Biol. 2017 Jun;101(6):1393-1403. https://doi.org/10.1189/jlb.4A1116-496R
  37. McCully ML, Ladell K, Andrews R, Jones RE, Miners KL, Roger L, Baird DM, Cameron MJ, Jessop ZM, Whitaker IS, Davies EL, Price DA, Moser B. CCR8 Expression Defines Tissue-Resident Memory T Cells in Human Skin. J Immunol. 2018 Mar 1;200(5):1639-1650. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1701377
  38. Clark RA, Chong BF, Mirchandani N, Yamanaka K, Murphy GF, Dowgiert RK, Kupper TS. A novel method for the isolation of skin resident T cells from normal and diseased human skin. J Invest Dermatol. 2006 May; 126(5):1059-1070. https://doi.org/10.1038/sj.jid.5700199
  39. Gargas S, Bshara-Corson S, Cruz M, Jameson J. Isolation and Analysis of Mouse and Human Skin γδ T Cells. Curr Protoc Immunol. 2019 Dec; 127(1):e92. https://doi.org/10.1002/cpim.92
  40. Ferry GM, Agbuduwe C, Forrester M, Dunlop S, Chester K, Fisher J, Anderson J, Barisa M. A Simple and Robust Single-Step Method for CAR-Vδ1 γδT Cell Expansion and Transduction for Cancer Immunotherapy. Front Immunol. 2022 May 31;13:863155. https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.863155
slide-cover
slide-cover
slide-cover

Рекомендуем статьи по данной теме:

Лекарственно-индуцированная саркоидоподобная реакция на фоне терапии ингибиторами BRAF/MEK метастатической меланомы.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):632-640

Экспрессия LYVE-1 в коже при некротической форме липоидного некробиоза.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):547-553

Оценка влияния перорального применения коллагена гидролизата на изменение морфологических характеристик и биологическое разнообразие микробиоты кожи.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(2):218-224

Реакция тканевых клеток миелоидного ряда и изменение внеклеточного матрикса кожи в условиях моделирования физической нагрузки.Клиническая дерматология и венерология. 2025;24(6):784-788

Профилактика и лечение кожной токсичности у детей, получающих противоопухолевую лучевую терапию.Клиническая дерматология и венерология. 2025;24(4):470-480

Возможности применения кожно-жирового лоскута передней брюшной стенки при острой травме верхних конечностей.Пластическая хирургия и эстетическая медицина. 2024;(4):51-59

Издательство «Медиа Сфера»
РекламаДоставка/ОплатаО насКонтактыОбучение для редакцийПолитика конфиденциальностиПолитика обработки персональных данныхПубличная оферта на реализацию издательской продукции
ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроекты
  • RuStore

© 1998-2026

  • Телефоны издательства:

  • +7 (495) 482-41-18
  • +7 (495) 428-43-29
  • Прямой телефон отдела подписки
    (только по вопросам заказов и доставки журналов)

  • +7 (800) 250-18-12
  • пн-пт с 10:00 до 18:00

  • Telegram
  • VK
info@mediasphera.ru
  • Почтовый адрес:

  • Издательство «Медиа Сфера»,
    а/я 54, Москва, Россия, 127238

  • RuStore

© 1998-2026