ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроектыО насРекламаДоставка/ОплатаКонтакты
+7 (495) 482-43-29
  • Главная
  • / Журналы
  • / Вернуться в журнал
  • / Содержание номера
  • / Статья
Влияние целлекса на функциональные и морфологические изменения при экспериментальной фокальной ишемии префронтальной коры головного мозга

Влияние целлекса на функциональные и морфологические изменения при экспериментальной фокальной ишемии префронтальной коры головного мозга

Авторы:
Романова Г.А.,
Шакова Ф.М.,
Барсков И.В.,
Стельмашук Е.В.,
Петров Т.В.,
Соколов М.А.

Журнал: Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. Спецвыпуски. 2010;110(9-2):52-56.

Прочитано: 1897 раз

Скачать PDF

Резюме

В эксперименте на модели фототромбоза префронтальной коры изучали действие препарата целлекс на функциональную деятельность ЦНС и объем ишемического повреждения коры. Установили, что хроническое (ежедневное в течение 4 послеоперационных дней) и даже одноразовое (через 1 ч после операции) внутрибрюшинное введение препарата (оптимальная доза 3,0 мг/кг) значительно уменьшает очаг ишемического повреждения и достоверно улучшает сохранение и воспроизведение условного рефлекса пассивного избегания.

Ключевые слова

  • фокальная ишемия префронтальной коры головного мозга
  • условный рефлекс пассивного избегания
  • объем очага ишемии
  • целлекс

Дата публикации: 30.04.2020

В последние годы расширился фронт исследований, направленных на изучение патогенеза ишемического поражения головного мозга и поиск фармакологических препаратов, предназначенных для стимуляции регенераторных процессов при данной патологии [1].

Одной из экспериментальных моделей, которая наиболее полно воспроизводит клиническую картину фокального ишемического инфаркта мозга, является фотохимический тромбоз кровеносных сосудов коры [2]. Данный неинвазивный метод позволяет выбрать требуемую локализацию коркового инфаркта, объем которого воспроизводится из опыта в опыт, что позволяет получить статистически значимые количественные данные о степени повреждения мозга, динамике патологических и репаративных процессов в фокальном ишемическом очаге. Использование данной модели дает возможность количественной оценки нейропротективного действия препаратов, используемых для фармакологической коррекции ишемической патологии мозга [3, 4].

Цель настоящего исследования - изучение в эксперименте на модели фототромбоза префронтальной коры действия нового оригинального препарата целлекс на функциональную деятельность ЦНС и объем ишемического повреждения коры головного мозга при его внутрибрюшинном одноразовом или хроническом введении крысам как до, так и после создания ишемического очага в коре.

Материал и методы

Работа выполнена на 90 самцах беспородных крыс массой 200-250 г, выращенных в виварии Института общей патологии и патофизиологии РАМН. Животные содержались в виварии при свободном доступе к пище и воде и 12-часовом световом режиме. При работе с крысами соблюдались требования, сформулированные в Директивах Совета Европейского сообщества 86/609/ЕЕС об использовании животных для экспериментальных исследований.

В ЗАО «Фарм-Синтез» разработан новый оригинальный препарат целлекс, представляющий комплекс органоспецифических сигнальных слабокислых белков массой от 10 до 140 кДа - факторов роста и дифференцировки нервной ткани, полученный из эмбрионального мозга сельскохозяйственных животных (свиней) на определенной стадии гестации. В экспериментальных и первых клинических исследованиях показана эффективность и безопасность препарата при ишемических повреждениях мозга и тяжелых коматозных состояниях.

Препарат использовали для коррекции функциональных и морфологических нарушений при фотохимическом тромбозе сосудов префронтальной коры головного мозга крыс.

Все взятые в эксперимент животные были разделены на следующие группы по10 животных в каждой: ложнооперированные - ЛО; крысы с двусторонним фототромбозом сосудов префронтальной коры головного мозга, которым вводили внутрибрюшинно физиологический раствор в объеме 0,5 мл - Иш + физ. раствор; крысы с таким же повреждением коры и внутрибрюшинным введением по схеме целлекса в объеме 0,5 мл в разных дозах - Иш + целлекс.

Целлекс вводили крысам внутрибрюшинно ежедневно в течение 4 дней после фототромбоза коры в дозах 0,4 мг/кг (10 животных) и 3,0 мг/кг (10 животных), а другой группе крыс (10 животных) одноразово (3,0 мг/кг) через 1ч после фототромбоза префронтальной коры. Отдельно была выделена группа животных (10 особей) с введением целлекса в дозе 3,0 мг/кг в течение 4 дней до ишемического повреждения коры - премедикация. В качестве препарата сравнения после фототромбоза префронтальной коры вводили по той же схеме, как и целлекс, кавинтон - доза 4, 0 мг/кг (10 животных).

Двусторонний фокальный ишемический инфаркт префронтальной коры головного мозга крыс - поля Fr1 и Fr2 согласно стереотаксическому атласу [5] - создавали методом фотоиндуцируемого тромбоза [2].

Животных наркотизировали хлоралгидратом (300 мг/кг внутрибрюшинно). Фотосенсибилизируемый краситель бенгальский розовый (Sigma Chem.Co.) вводили в яремную вену (3% раствор, 40 мг/кг). Голову животного фиксировали в стереотаксисе и после продольного разреза кожи удаляли надкостницу. Световод (диаметр светового пучка на выходе 3 мм) устанавливали на расстоянии 1 мм от поверхности черепа по координатам: 2 мм ростральнее брегмы и 2 мм латеральнее сагиттального шва. Облучение холодным светом - λ=560 нм (источник - лампа мощностью 250 Вт, охлаждаемая вмонтированным в установку вентилятором) проводили в течение 20 мин с каждой стороны. Ложнооперированные животные подвергались тем же процедурам, за исключением введения бенгальского розового.

Оценку функционального состояния ЦНС крыс (обучение и память) проводили по показателям латентного периода (ЛП) условного рефлекса пассивного избегания (УРПИ). Выработку УРПИ осуществляли в челночной камере отечественного производства Биотест РК-5201. В первый день обучения крысу помещали в освещенный отсек (лампа мощностью 100 Вт), обследовав который, она через несколько секунд переходила в темный, после чего дверцу в этот отсек камеры закрывали и оставляли там крысу в течение 300 с. Через 1 ч процедуру повторяли, но крысу сразу после перехода извлекали из темного отсека. На следующий день эту же процедуру повторяли дважды с часовым перерывом. При повторном заходе животного в темный отсек камеры дверцу в него закрывали и через металлические прутья пола пропускали электрический ток (1,3 мА, 50 Гц, 5 с). УРПИ считали выработанным, если ЛП пассивного избегания составлял 300 с и больше, животных с меньшими показателями исключали из эксперимента.

Объем очага повреждения коры фотоиндуцированным тромбозом определяли по формуле: V=Σ(Snd), где d - толщина пары срезов (200 мкм); Sn - измеренная площадь ишемического очага серийного среза в мм2; Σ - сумма объемов ишемического повреждения.

Статистическую обработку данных проводили с использованием компьютерной программы BIOSTAT. Несколько групп сравнивали по одному признаку при помощи непараметрического метода сравнения независимых групп (метод Краскала-Уоллиса). Если этот анализ выявлял уровень значимости 0,05 или меньше, то попарное сравнение между группами проводили, используя метод Манна-Уитни. Различие в пределах каждой группы между дооперационными и послеоперационными показателями оценивали по критерию Вилкоксона.

Результаты и обсуждение

Оценку нейропротективного действия целлекса проводили на 7-е сутки после индукции коркового инфаркта. Схема введения целлекса животным предусматривала возможность его воздействия на процессы, происходящие как в остром периоде, так и на более отдаленных этапах ишемии. Введение препарата прекращали за 3 суток до тестирования, чтобы исключить его кратковременные эффекты, влияющие на память и поведение.

Через 7 суток после фототромбоза были выявлены значительные изменения в поведении животных. Показатели двигательной активности снижались по сравнению с исходным уровнем, однако не было выявлено статистически значимых различий при сравнении всех групп животных после фокального коркового инфаркта. Это указывает на то, что уменьшение двигательной активности, по-видимому, обусловлено реакцией животных на наркоз и манипуляции, связанные с проведением операции, но не с самим повреждением префронтальной области коры.

При проверке сохранения рефлекса на 7-е сутки после очагового ишемического повреждения префронтальной коры значения ЛП УРПИ достоверно снижались по сравнению с исходным уровнем -113 с по сравнению с 300 с; p<0,05 (рис. 1).

Рисунок 1. Изменение ЛП УРПИ (с) на 7-й день после двустороннего фотохимического ишемического повреждения коры головного мозга крыс; фармакологическая коррекция целлексом (внутрибрюшинное введение через 1 ч после операции и ежедневное в течение 4 послеоперационных дней). Темные столбики - ЛП УРПИ до фотохимического ишемического повреждения, светлые - ЛП УРПИ после фототромбоза. Группы животных: 1 - ложнооперированных животных, 2 - фототромбоз +физиологический раствор, 3 - фототромбоз+целлекс (0,4 мг/кг), 4 - фототромбоз+целлекс (3,0 мг/кг), 5 - фототромбоз +кавинтон (4,0 мг/кг). * - отличие группы 2 от группы 1, р<0,005; ^ - отличие группы 2 от группы 3, р<0,05; # - отличие группы 2 от группы 4, р<0,007.
Систематическое введение животным целлекса в разных дозах после создания двустороннего локального ишемического инфаркта значительно облегчало сохранение и воспроизведение УРПИ ( ЛП УРПИ 241с при дозе целлекса 0,4 мг/кг и 265 с при дозе целлекса 3,0 мг/кг, р<0,05). Следует отметить, что значительный эффект на сохранение УРПИ, выработанный до фототромбоза префронтальной коры, оказало внутрибрюшинное введение целлекса как в малой дозе 0,4 мг/кг, так и при дозе 3,0 мг/кг. Однако более высокая доза - 3,0 мг/кг была более эффективна. В группе животных, которым вводили кавинтон (4,0 мг/кг), достоверного улучшения показателей УРПИ не было.

Проявление действия целлекса через 3 суток после его отмены указывает на формирование устойчивых изменений, которые могут быть связаны как с уменьшением степени повреждения корковых структур, так и с изменениями на уровне медиаторных, метаболических или трофических систем.

Морфометрическое исследование очагов ишемического повреждения префронтальной коры крыс показало, что хроническое (табл. 1)

и даже одноразовое (через 1 ч после операции) введение препарата значительно уменьшает объем фокального очага, тогда как введение целлекса в течение 4 суток до фототромбоза (премедикация) было менее эффективно (табл. 2).

Защитный нейропротекторный эффект нагляднее виден, если вычислить коэффициент эффективности защиты (КЭЗ) по формуле:

КЭЗ=(Vо–Vв)/Vо·100%,

где Vо - средний объем очага поражения у животных с введением физраствора, Vв - средний объем очага поражения у животных с введением вещества. Этот параметр позволяет сравнивать эффективность действия различных доз веществ на моделях ишемии. В данном случае КЭЗ при введении целлекса в разных дозах через 1 ч после ишемического повреждения коры и далее ежедневно в течение 4 послеоперационных дней равен:

КЭЗ (0,4 мг/кг)=(8,3–5,9)/8,3·100%=29%.

КЭЗ (3,0 мг/кг)=(8,3–4)/8,3·100%=52%.

Гистологическое исследование показало бóльшую сохранность пенумбры - области мозговой ткани вокруг ишемического очага, где и происходят регенеративные процессы, вследствие которых улучшается сохранение памятного следа при применении целлекса. На рис. 2,

Рисунок 2. Срезы мозга при внутрибрюшинном введении физиологического раствора и целлекса (3,0 мг/кг) после фототромбоза префронтальной коры головного мозга крысы (А) и объемная реконструкция очага ишемического повреждения, полученная с помощью наложения серии последовательных срезов (Б).
А отчетливо видно, что ишемические очаги у леченных целлексом животных значительно менее выражены, чем у контрольных крыс с таким же повреждением коры, но получавших физиологический раствор.

Объемная реконструкция очага ишемического поражения, полученная с помощью наложения серии последовательных срезов мозга, позволяет лучше представить размер повреждения (см. рис. 2, Б).

Результаты изучения специфической фармакологической активности белково-пептидного комплекса целлекс на модели острой очаговой корковой ишемии, вызванной методом фотоиндуцированного тромбоза, показали высокую антиамнестическую активность препарата. Морфологическое исследование мозга ишемизированных животных при сравнительном анализе леченных целлексом и нелеченных животных, получавших в том же объеме физиологический раствор, выявило нейропротективный эффект препарата со значительным снижением объема ишемического повреждения (до 50%).

В основе обнаруженных эффектов нового белково-пептидного комплекса может лежать способность целлекса оказывать прямое нейрорепаративное действие, снижать активацию провоспалительных реакций, вызванных ишемией, стимулировать синтез нейротрофинов и предотвращать гибель нейронов после фокального коркового инфаркта.

Еще в ранних работах отечественных ученых было выявлено наличие органоспецифических сигнальных белков (ОСБ) в эмбриональных тканях [6]. В последние годы было показано, что ОСБ в виде эмбриональных индукторов способны регулировать процесс трансформации стволовых клеток в нейроны, контролируя экспрессию нейрональных генов [7].

Было убедительно доказано, что процессы регенерации аксонов, клеток глии и нейронов в мозге человека активно происходят в ответ на повреждения, в частности, при ишемии, инсульте, травмах [8-10]. Кроме того, установлено, что этот процесс обеспечивается запасом клеток предшественников - нейробластов, которые постоянно образуются в гиппокампе из экзогенных нейрональных стволовых клеток, запас которых в мозге также постоянно пополняется из пула полипотентных стволовых клеток [11].

Установлены молекулярные механизмы, лежащие в основе восстановления тканей головного мозга после инсультов. Было показано, что миграцией нейрональных стволовых клеток и нейробластов, замещающих погибшие нейроны в поврежденных областях, управляют ОСБ - факторы роста и дифференцировки, вырабатываемые клетками вновь формирующихся кровеносных сосудов. Однако при обширных ишемических поражениях мозга и кровоизлияниях формирование новых сосудов либо длительно не происходит, либо крайне ограничено, что является основной причиной высокой смертности при этих состояниях. Поэтому в настоящее время ведутся исследования по разработке методов и лекарственных препаратов в качестве средств заместительной терапии при инсультах, травмах и других повреждениях мозга с целью обеспечения оптимальной регенерации поврежденных участков мозга [12].

Таким образом, функциональная оценка эффектов целлекса по показателям сохранения УРПИ показала, что при его постишемическом хроническом введении сохранение и воспроизведение УРПИ достоверно улучшается. Хроническое (ежедневное в течение 4 послеоперационных дней) и даже одноразовое (через 1 ч после операции) введение препарата значительно уменьшает очаг ишемического повреждения; введение целлекса в течение 4 суток до фототромбоза (премедикация) менее эффективно.

Литература / References
  1. Гусев Е.И., Скворцова В.И. Ишемия головного мозга. М: Медицина 2001; 328.
  2. Watson B.D., Dietrich W.D., Busto R. et al. Induction of reproducible brain infarction by photochemically initiated thrombosis. Ann Neurol 1985; 17: 5: 497-504.
  3. Романова Г.А., Силачев Д.Н., Шакова Ф.М. и др. Нейропротективное и антиамнестическое действие пептида семакса при экспериментальном ишемическом инфаркте коры головного мозга. Бюл экспер биол и мед 2006; 142: 12: 618-621.
  4. Силачев Д.Н., Шрам С.И., Шакова Ф.М. и др. Отдаленные эффекты синтетического аналога АКТГ(4-10) на формирование пространственной памяти у крыс с ишемическим повреждением префронтальной коры головного мозга. Журн высш нервн деят 2008; 45: 4: 458-466.
  5. Paxinos G., Watson S. Atlas of anatomy of rat brain. The rat brain in stereotaxic coordinates. San Diego: Academic Press 1986.
  6. Полежаев Л.В. Утрата и восстановление регенерационной способности органов и тканей у животных. М 1968.
  7. Витвицкий В.Н. Регулирование генетических процессов в природе и в эксперименте. М 2005.
  8. Brewer G. J. еt al. Culter and regeneration of human neurons after brain surgery. J Neurosci Methods 2001; 1: 2: 15-23.
  9. Darsalia V. et al. Stroke induced neurogenesis in aged brain. Stroke 2005; 36: 1790-1795.
  10. Prochiant A. Neurogenesis in the adult brain: hope for brain repair? Bull Acad Natl Med 2000; 6: 1181-1189.
  11. Philippe T. Neural progenitor and stem cells in the adult central nervous system. Ann Acad Med Singapor 2006; 35: 814-820.
  12. Лищук В.А., Мосткова Е.В. Механизмы самовосстановления. Валеология 2002; 1: 4-13.
slide-cover
slide-cover
slide-cover
slide-cover
slide-cover

Рекомендуем статьи по данной теме:

Эффективность медикаментозной поддержки реабилитации больных с постинсультной афазией.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2024;124(11):132-139

Издательство «Медиа Сфера»
РекламаДоставка/ОплатаО насКонтактыОбучение для редакцийПолитика конфиденциальностиПолитика обработки персональных данныхПубличная оферта на реализацию издательской продукции
ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроекты
  • RuStore

© 1998-2026

  • Телефоны издательства:

  • +7 (495) 482-41-18
  • +7 (495) 482-43-29
  • Прямой телефон отдела подписки
    (только по вопросам заказов и доставки журналов)

  • +7 (800) 250-18-12
  • пн-пт с 10:00 до 18:00

  • Telegram
  • VK
info@mediasphera.ru
  • Почтовый адрес:

  • Издательство «Медиа Сфера»,
    а/я 54, Москва, Россия, 127238

  • RuStore

© 1998-2026