Иванова А.Ю.

ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова» Минобрнауки России

Рысенкова Е.Ю.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр кардиологии» Минздрава России

Смирнова М.Д.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр кардиологии» Минздрава России

Фофанова Т.В.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр кардиологии» Минздрава России

Медведев О.С.

ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова» Минобрнауки России;
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр кардиологии» Минздрава России

Антиоксидантный компонент влияния кишечной микробиоты на сердечно-сосудистую систему

Авторы:

Иванова А.Ю., Рысенкова Е.Ю., Смирнова М.Д., Фофанова Т.В., Медведев О.С.

Подробнее об авторах

Журнал: Кардиологический вестник. 2021;16(2): 15‑21

Прочитано: 6012 раз


Как цитировать:

Иванова А.Ю., Рысенкова Е.Ю., Смирнова М.Д., Фофанова Т.В., Медведев О.С. Антиоксидантный компонент влияния кишечной микробиоты на сердечно-сосудистую систему. Кардиологический вестник. 2021;16(2):15‑21.
Ivanova AYu, Rysenkova EYu, Smirnova MD, Fofanova TV, Medvedev OS. Antioxidant effect of gut microbiota on cardiovascular system. Russian Cardiology Bulletin. 2021;16(2):15‑21. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/Cardiobulletin20211602115

Рекомендуем статьи по данной теме:
Из­вес­тные и но­вые пред­став­ле­ния о ме­ха­низ­ме действия и спек­тре эф­фек­тов Мек­си­до­ла. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(5):22-33
Вли­яние мо­че­вой кис­ло­ты на прог­рес­си­ро­ва­ние бо­лез­ни Пар­кин­со­на: миф или ре­аль­ность?. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(7):7-14
Ки­шеч­ник—мозг: вза­имос­вя­зи в нор­ме и при па­то­ло­гии. Про­фи­лак­ти­чес­кая ме­ди­ци­на. 2025;(11):106-112

Введение

Сердечно-сосудистые заболевания занимают лидирующие позиции в числе причин смертности населения по всему миру [1]. Вопреки усилиям, предпринимающимся для предотвращения их развития, разработке новых терапевтических стратегий лечения смертность остается на высоком уровне или даже увеличивается [2]. В последние годы в связи с развитием высокопроизводительного секвенирования все больше внимания уделяется изучению роли микробиоты кишечника в патогенезе большого спектра заболеваний: метаболических нарушений (ожирения, инсулинорезистентности, метаболического синдрома) [3], сердечно-сосудистых (атеросклероза, ишемической болезни сердца) [4, 5], онкологических [6] и др.

Микробиота кишечника и сердечно-сосудистые заболевания

Состав кишечной микробиоты, ее функциональная активность, роль в развитии и тяжести течения сердечно-сосудистых заболеваний изучается во всем мире.

Артериальная гипертензия и микробиота кишечника

Связь артериальной гипертензии (АГ) с состоянием кишечной микробиоты прослежена в целом ряде как экспериментальных, так и клинических исследований. Общей чертой экспериментальных моделей АГ (спонтанно-гипертензивные крысы с эссенциальной формой АГ, Dahl-чувствительные крысы и др.) является значительное снижение разнообразия микробиоты с повышением доли лактат-продуцирующих бактерий [7]. T. Yang и соавт. выявили повышение соотношения Firmicutes/Bacteroides, увеличение числа лактат-продуцирующих бактерий и снижение количества бактерий, продуцирующих короткоцепочечные жирные кислоты (КЦЖК), у спонтанно-гипертензивных крыс по сравнению с нормотензивными [8].

Аналогичные результаты получены и в клинических исследованиях. J. Li и соавт. в 2017 г. обнаружили, что не только больные АГ, но и лица с «предгипертензией» отличаются от нормотензивных участников исследования обеднением видового состава микробиоты, снижением Bacteroidetes, Bifidobacterium, Roseburia и преобладанием бактерий Prevotella [9]. Причем микробиота кишечника больных с АГ и «предгипертензией» существенно не различалась. С АГ ассоциируется увеличение числа грамотрицательных бактерий: Klebsiella, Parabacteroides, Desulfovibrio и Prevotella [10].

Легочная артериальная гипертензия и микробиота кишечника

Интересное исследование представлено в журнале Hypertension в 2020 г. Оно посвящено профилю микробиома у больных таким редким заболеванием, как легочная артериальная гипертензия (ЛАГ) [11]. Наиболее весомым результатом этого исследования стало определение уникального профиля микробных сообществ кишечника у пациентов с ЛАГ, позволяющего с 83% точностью предсказать это заболевание. В когорте ЛАГ отмечалось снижение полезных, продуцирующих короткоцепочечные жирные кислоты бактерий, таких как Coprococcus spp., Butyrivibrio, Lachnospiraceae, Eubacterium и Clostridia. Увеличилась доля бактерий, участвующих в синтезе аргинина, пролина, орнитина, а также триметиламин-N-оксида (ТМАО) по сравнению с микробиотой контрольной когорты.

Хроническая сердечная недостаточность и микробиота кишечника

Ряд исследований последних лет выявил связь между кишечным микробиомом и хронической сердечной недостаточностью (ХСН). E. Pasini и соавт. (2016 г.) выявили повышение количества патогенных микроорганизмов: Campylobacter, Salmonella, Yersinia enterocolitica у больных ХСН с нормальным индексом массы тела и без сахарного диабета (СД) по сравнению со здоровыми людьми. Кроме того, у больных ХСН выявлены признаки повышенной проницаемости кишечной стенки, оцениваемой при помощи теста с дисахаридом целлобиозой [12]. В исследовании, выполненном китайскими учеными, число Ruminococcus, Acinetobacter и Veillonella было больше у больных с ХСН, в то время как Alistipes, Faecalibacterium и Oscillibacter — меньше [13]. В дальнейшем исследователи выявили у пациентов группы ХСН увеличение штаммов микроорганизмов, участвующих в синтезе липополисахаридов, триптофана и триметиламин-N-оксида (ТМАО).

Атеросклероз и микробиота кишечника

Атеросклероз — многофакторное заболевание, характеризующееся формированием бляшек в стенках сосудов в результате сочетанных метаболических нарушений, воспаления, уменьшения содержания эластичных волокон и истончения стенок артерий. Показано, что атеросклеротические бляшки имеют собственное микробное микроокружение, такое как Streptococcus, Pseudomonas, Klebsiella, Veillonella spp. и Chlamydia pneumoniae [14]. Однако в большинстве исследований не смогли найти взаимосвязь между отдельными группами бактерий, степенью поражений сосудов и осложнениями течения атеросклероза. В то же время высказано предположение, что кишечная микробиота может определять склонность сосудистых стенок к формированию атеросклеротических бляшек [15]. Клинические исследования выявили преобладание Collinsella genus, Enterobacteriaceae, Streptococcaceae, Klebsiella spp. и снижение количества бактерий, продуцирующих короткоцепочечные летучие жирные кислоты (КЛЖК) (Eubacterium, Roseburia, Ruminococcaceae spp.) у больных с установленным атеросклерозом по сравнению со здоровыми людьми [16].

Биомаркеры микробиоты кишечника

Отдельная и наиболее значительная роль отведена метаболитам, которые образуются в результате ферментативной активности микробиоты кишечника и проявляют системные эффекты. К основным маркерам метаболической активности микробиоты, оказывающим влияние на сердечно-сосудистую систему, относятся триметиламин (ТМА), КЦЖК.

Нарушение кишечного гомеостаза (дисбиоз) может происходить под воздействием внешних факторов (стрессы, инфекции, прием лекарственных препаратов, пищевые привычки и др.). Экспериментальные и клинические исследования показали, что увеличение L-карнитина, холина в рационе питания вызывает повышение образования ТМА в кишечнике бактериями рода Prevotella [17]. ТМА затем подвергается окислению в печени с образованием ТМАО, который в свою очередь способствует накоплению холестерина в макрофагах, образованию пенистых клеток и формированию атеросклеротических бляшек [18]. ТМАО повышает образование провоспалительных цитокинов (TNF-α, ИЛ-1β) и уменьшает уровень противовоспалительных цитокинов (ИЛ-10) [19].

Изменения в составе кишечной микробиоты могут приводить к нарушению целостности кишечного эпителия («leaky gut»). Целостность кишечного барьера препятствует проникновению бактериальных компонентов и токсинов в кровь, предупреждая развитие «системного воспаления». Наиболее известными эндотоксинами являются липополисахариды (ЛПС), локализованные на внешней мембране грамотрицательных бактерий, включая Klebsiella, Parabacteroides, Desulfovibrio и Prevotella [20]. Проникновение ЛПС в циркуляторное русло приводит к усиленной выработке провоспалительных цитокинов (TNF-α, ИЛ-1, ИЛ-6) и метаболическим нарушениям. Введение ЛПС в дозе 300 мкг на 1 кг массы тела в день в течение четырех недель у мышей приводило к ожирению, повышению в 2—3 раза уровней глюкозы и инсулина в крови по отношению к показателям у животных контрольной группы. Следующее экспериментальное исследование показало, что применение ЛПС у крыс в дозе 10 мг на 1 кг массы тела увеличивает частоту сердечных сокращений, ослабляет чувствительность барорецепторного рефлекса, усиливает экспрессию белков Toll-подобных рецепторов и TNF-α в паравентрикулярном ядре гипоталамуса, играющих ключевую роль в регуляции уровня артериального давления (АД) [21].

Одним из возможных механизмов изменения проницаемости кишечной стенки является снижение экспрессии основных трансмембранных белков ZO-1, окклюдина, клаудина-1 в зоне плотных контактов, регулирующих параклеточный транспорт. M. Santisteban и соавт. показали, что у гипертензивных крыс снижен уровень экспрессии межклеточных белков плотных контактов, уровень которых восстанавливался после трансплантации фекальной микробиоты от контрольных животных [22].

Перспективным является направление модуляции микробиоты кишечника в сторону образования «полезных» метаболитов, поддерживающих целостность кишечного эпителиального барьера, нейтрализующих выработку эндотоксинов. К этой группе относятся КЛЖК. КЛЖК с длиной цепи до 6 атомов углерода, которые представляют собой конечные продукты ферментации пищевых волокон, резистентных крахмалов, не подвергающихся перевариванию в верхних отделах желудочно-кишечного тракта. В основном в просвете толстого кишечника (95%) образуются уксусная, пропионовая и масляная кислоты в соотношении 60:23:17 [23] (рис. 1). Пропионат и ацетат в основном всасываются в кишечнике и попадают в циркуляторное русло, в то время как бутират служит энергетическим субстратом для энтероцитов и поддерживает целостность кишечного барьера. КЦЖК являются сигнальными молекулами, выступая в качестве лигандов для нескольких рецепторов, связанных с G-белком (G-protein coupled receptors), включая GPR41 (также известный как FFAR3), GPR43 (также известный как FFAR2), оказывая сосудорасширяющее действие и снижая уровень АД [24, 25].

Рис. 1. Биомаркеры микробиоты кишечника при сердечно-сосудистых заболеваниях [25].

Молекулярный водород как биомаркер антиоксидантной активности микробиоты

В последние годы стало понятно, что при ферментации пищевых волокон образуются не только КЦЖК, но и выделяются большие количества молекулярного водорода (см. рис. 1), оказывающего антиоксидантное действие. Результаты первого исследования, продемонстрировавшего терапевтические возможности молекулярного водорода, опубликованы под руководством S. Ohta в 2007 г. [26]. Ингаляционное применение водорода в концентрации 2% статистически значимо обеспечивало нейропротекторный эффект на экспериментальной модели ишемии-реперфузии. Последующие фундаментальные исследования показали защитное действие вводимого экзогенного водорода в виде насыщенной водородом воды или ингаляции в модельных опытах на животных, клеточных культурах в условиях окислительного стресса. Показано антиатеросклеротическое действие молекулярного водорода в опытах на мышах [27, 28], замедление развития хронической сердечной недостаточности у крыс [29]. Отмечены кардиопротективное действие на модели ишемии/реперфузии миокарда у крыс [30] и антистрессорный эффект высоких концентраций водорода в опытах на мышах [31]. Клинические испытания антиоксидантных свойств молекулярного водорода в основном подтвердили результаты ранее выполненных фундаментальных исследований на животных [32, 33].

Молекула водорода, имея малый размер 2 Да, способна легко диффундировать через мембраны клеток, достигая внутриклеточных структур (митохондрии, ядро). Особенностью антиоксидантного действия молекулы водорода является способность селективно нейтрализовать наиболее сильные окислители — ионы OH и OONO [26], а также активировать эндогенную антиоксидантную систему за счет усиления Nrf2-зависимых сигнальных путей. Молекулярный водород способен проявлять противовоспалительные свойства, подавляя экспрессию генов провоспалительных цитокинов (ИЛ-1β, ИЛ-6, TNF-α и др.) [34].

Основной источник образования молекулярного водорода — анаэробная бактериальная ферментация пищевых волокон (поли-, олиго- и моносахаридов) в толстом кишечнике (рис. 2). В процессе ферментации восстановленные НАДФ и ферредоксин повторно окисляются при помощи тримерных гидрогеназ для поддержания окислительно-восстановительного баланса с образованием H2 (путь 1); образованный пируват окисляется до ацетил-КоА при помощи пируват:ферредоксин-оксидоредуктазы до восстановленного ферредоксина и снова окисляется гидрогеназами с образованием H2 (путь 2); образованный формиат метаболизируется до H2 и CO2, захватывающиеся сульфат-редуцирующимися и метаногенными бактериями с образованием H2S и CH4, соответственно (путь 3) [35, 36].

Рис. 2. Основные метаболические пути образования газов (водорода, метана, сероводорода) в кишечнике [36].

В работах in vitro показано, что к водород-генерирующим бактериям относятся бактерии родов Roseburia [37], Ruminococcus [38], видов Blautia coccoides, Clostridium leptum, Escherihia coli, Bacteroides fragilis [39]. In vivo подтверждена водород-образующая способность у бактерий из семейств Lachnospiraceae, Ruminococcaceae; Eubacteriaceae класса Clostridia [40, 41]; класса Bacteroidia [38]; семейства Enterobacteriaceae класса γ-proteobacteria [42].

Образование и утилизация водорода — сложный процесс, регулирующийся в основном тремя механизмами. Первый — возрастание парциального давления водорода в кишке термодинамически тормозит скорость ферментации. Второй — баланс содержания водорода зависит как от скорости всасывания в кровь с последующим выделением через легкие, так и с объемом газа, выделяемым через анус. Третий — три основных группы гидрогенотрофных (утилизирующих водород) микроорганизмов потребляют водород как субстрат при синтезе уксусной кислоты, метана (метаногенные Археи) и сероводорода (сульфат-редуцирующие бактерии) [43].

Работы конца прошлого столетия заложили основу наших знаний об основных параметрах генерации водорода микробиотой толстого кишечника и возможности оценки этого процесса на основании динамики содержания его в выдыхаемом воздухе [44—46]. Несмотря на то, что количество водорода в выдыхаемом воздухе значительно ниже образованного в просвете кишечника, ряд исследователей подтвердили тесную корреляцию между образуемым водородом в кишечнике и измеренным в выдыхаемом воздухе [47, 48]. Измерение концентрации водорода в выдыхаемом воздухе (дыхательный тест) широко используется для оценки ферментативной активности микробиоты.

Диетологические и фармакологические факторы, ведущие к увеличению генерации водорода микробиотой кишечника

Пищевые волокна. Пищевые волокна представляют собой высокомолекулярные полисахариды, не перевариваемые и не всасывающиеся в тонком кишечнике. К этой группе веществ относятся устойчивые крахмалы, полисахариды некрахмального строения, (целлюлоза, гемицеллюлоза, пектины), неперевариваемые олигосахариды (фрукто- и галактоолигосахариды). Полезные эффекты пищевых волокон связывают с их способностью стимулировать рост бутират-продуцирующих бактерий: Roseburia, Eubacterium rectale, Faecalibacterium prausnitzii, а также увеличению продукции водорода [48]. Рационы с низким содержанием неперевариваемых углеводов связаны с дисбиотическим фенотипом [49].

Жировые продукты. Установлено, что присутствие в рационе питания ненасыщенных жирных кислот (олеиновой, линолевой, линоленовой) препятствует развитию окислительного стресса и снижает смертность от сердечно-сосудистых заболеваний [50]. Возможно, антиоксидантный эффект отчасти обусловлен повышенной продукцией эндогенного водорода. В нашем исследовании присутствие в рационе у крыс растительных ненасыщенных жиров в течение 18 нед способствовало увеличению продукции водорода относительно контрольной группы в 2,25 раза [51].

Ингибиторы альфа-глюкозидазы. Препараты группы ингибиторов альфа-глюкозидазы предположительно способны эффективно повышать выработку эндогенного молекулярного водорода. Прием препарата акарбоза в дозе 300 мг/день увеличивал уровень водорода в выдыхаемом воздухе у здоровых добровольцев [52].

Метаанализ данных пациентов с сахарным диабетом 2-го типа, длительно принимавших акарбозу (не менее 52 нед), показал защитный эффект против сердечно-сосудистых заболеваний, что может свидетельствовать о наличии у этой группы лекарственных средств дополнительного положительного фармакотерапевтического эффекта [53].

Статины. Methanobrevibacter Smithii, относящиеся к семейству Euryarchaeota домена Archaea, представляют собой наиболее многочисленный вид метаногенов в кишечнике человека. Количество их в стуле может достигать 109 КОЕ/г [54, 55].

Согласно представлениям A. Strocchi и M. Levitt, образование водорода является термодинамически равновесным процессом, который определяется скоростью образования водорода гидрогенами и скоростью утилизации водорода другими типами микроорганизмов (гидрогенотрофами) [45]. Образование метана метаногенами происходит с участием других газов, в том числе и водорода: CO2+4H2→CH4+2H2O.

Показано, что симвастатин, ловастатин, имеющие в структуре лактоновое кольцо, блокируют образование главного структурного компонента клеточной стенки метанпродуцирующих архей [56]. Предположительно подавление образования метаногенных архей при приеме этой группы гиполипидемических препаратов может способствовать увеличению образования водорода в просвете кишечника, подавлять реакции окислительного стресса в организме, тем самым обеспечивая дополнительные фармакотерапевтические эффекты.

Заключение

Результаты недавних исследований свидетельствуют о важной роли микробиоты кишечника в регуляции сердечно-сосудистой системы в норме и при развитии патологии. Наибольшее значение имеет образование микробиотой таких биомаркеров, как триметиламин, триметиламин-N-оксид. Эти вещества могут оказывать провоспалительное действие и участвовать в нарушении функции эндотелия, вызывать развитие легочной и артериальной гипертензии, сердечной недостаточности. Короткоцепочечные жирные кислоты, молекулярный водород, усиливая иммунитет, сохраняя барьерную функцию кишечника и обладая антиооксидантным действием, могут быть кардиопротекторами, предупреждая развитие сердечно-сосудистых заболеваний. Персонифицированный подход к использованию экзогенного и эндогенного микробиотического водорода может служить дополнительным инструментом для профилактики и лечения сердечно-сосудистых заболеваний.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. World Health Organization. Global Action Plan for the Prevention and Control of NCDs 2013—2030. Geneva: World Health Organization, 2013. Accessed May 31, 2021. https://www.who.int/nmh/publications/ncd-action-plan/en/
  2. World Health Organization. Cardiovascular Diseases (CVDs) Fact Sheet. Accessed May 31, 2021. https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/cardiovascular-diseases-(cvds)
  3. DiBaise JK, Zhang H, Crowell M D, Krajmalnik-Brown R, Decker GA, Rittmann BE. Gut microbiota and its possible relationship with obesity. Mayo Clinic Proceedings. 2008;83(4):460-469.  https://doi.org/10.4065/83.4.460
  4. Tang WHW, Kitai T, Hazen SL. Gut microbiota in cardiovascular health and disease. Circulation Research. 2017;120(7):1183-1196. https://doi.org/10.1161/circresaha.117.309715
  5. Komaroff AL. The Microbiome and Risk for Atherosclerosis. JAMA. 2018;319(23):2381. https://doi.org/10.1001/jama.2018.5240
  6. Gopalakrishnan V, Helmink BA, Spencer C N, Reuben A, Wargo JA. The Influence of the Gut Microbiome on Cancer, Immunity, and Cancer Immunotherapy. Cancer Cell. 2018;33(4):570-580.  https://doi.org/10.1016/j.ccell.2018.03.015
  7. Marques FZ, Nelson E, Chu P-Y, Horlock D, Fiedler A, Ziemann M, Jian K Tan, Kuruppu S, Rajapakse NW, El-Osta A, Mackay CR, Kaye DM. High-Fiber Diet and Acetate Supplementation Change the Gut Microbiota and Prevent the Development of Hypertension and Heart Failure in Hypertensive Mice. Clinical Perspective. Circulation. 2016;135(10):964-977.  https://doi.org/10.1161/circulationaha.116.024545
  8. Yang T, Santisteban MM, Rodriguez V, Li E, Ahmari N, Carvajal JM, Zadeh M, Gong M, Qi Y, Zubcevic J, Sahay B, Pepine CJ, Raizada MK, Mohamadzadeh M. Gut Dysbiosis Is Linked to Hypertension Novelty and Significance. Hypertension. 2015;65(6):1331-1340. https://doi.org/10.1161/hypertensionaha.115.05315
  9. Li J, Zhao F, Wang Y, Chen J, Tao J, Tian G, Wu S, Liu W, Cui Q, Geng B, Zhang W, Weldon R, Auguste K, Yang L, Liu X, Chen L, Yang X, Zhu B, Cai J. Gut microbiota dysbiosis contributes to the development of hypertension. Microbiome. 2017;5(1):1-19.  https://doi.org/10.1186/s40168-016-0222-x
  10. Verhaar BJH, Collard D, Prodan A, Levels JHM, Zwinderman AH, Bäckhed F, Vogt L, Peters MJL, Muller M, Nieuwdorp M, van den Born BH. Associations between gut microbiota, faecal short-chain fatty acids, and blood pressure across ethnic groups: the HELIUS study. European Heart Journal. 2020;41(44):4259-4267. https://doi.org/10.1093/eurheartj/ehaa704
  11. Seungbum K, Rigatto K, Gazzana MB, Knorst MM, Richards EM, Pepine CJ, Raizada MK. Altered Gut Microbiome Profile in Patients with Pulmonary Arterial Hypertension. Hypertension. 2020;75(4):1063-1071. https://doi.org/10.1161/HYPERTENSIONAHA.119.14294
  12. Pasini E, Aquilani R, Testa C, Baiardi P, Angioletti S, Boschi F, Verri M, Dioguardi F. Pathogenic Gut Flora in Patients With Chronic Heart Failure. JACC: Heart Failure. 2016;4(3):220-227.  https://doi.org/10.1016/j.jchf.2015.10.009
  13. Cui X, Ye L, Li J, Jin L, Wang W, Li S, Bao M, Wu S, Li L, Geng B, Zhou X, Zhang J, Cai J. Metagenomic and metabolomic analyses unveil dysbiosis of gut microbiota in chronic heart failure patients. Scientific Reports. 2018;8(1):635.  https://doi.org/10.1038/s41598-017-18756-2
  14. Lanter BB, Sauer K, Davies DG. Bacteria Present in Carotid Arterial Plaques are Found as Biofilm Deposits which May Contribute to Enhanced Risk of Plaque Rupture. mBio. 2014;5(3):e01206-14.  https://doi.org/10.1128/mbio.01206-14
  15. Jonsson LA, Hallenius FF, Akrami R, Johansson E, Wester P, Arnerlöv C, Backhed F, Bergström G. Bacterial profile in human atherosclerotic plaques. Atherosclerosis. 2017;263:177-183.  https://doi.org/10.1016/j.atherosclerosis.2017.06.016
  16. Liu H, Chen X, Hu X, Niu H, Tian R, Wang H, Pang H, Jiang L, Qiu B, Chen X, Zhang Y, Ma Y, Tang S, Li H, Feng S, Zhang S, Zhang C. Alterations in the gut microbiome and metabolism with coronary artery disease severity. Microbiome. 2019;7(1):68.  https://doi.org/10.1186/s40168-019-0683-9
  17. Koeth RA, Wang Z, Levison BS, Buffa JA, Org E, Sheehy BT, Britt EB, Fu X, Wu Y, Li L, Smith JD, DiDonato JA, Chen J, Li H, Wu GD, Lewis JD, Warrier M, Brown JM, Krauss RM, Tang WHW, Bushman FD, Lusis AJ, Hazen SL. Intestinal microbiota metabolism of L-carnitine, a nutrient in red meat, promotes atherosclerosis. Nature Medicine. 2013;19(5):576-585.  https://doi.org/10.1038/nm.3145
  18. Wang Z, Klipfell E, Bennett BJ, Koeth RS, Levison B, DuGar B, Feldstein A E, Britt E B, Fu X, Chung Y-M, Wu Y, Schauer Ph, Smith JD, Allayee H, Wilson Tang WH, DiDonato JA, Lusis A J, Hazen SL. Gut flora metabolism of phosphatidylcholine promotes cardiovascular disease. Nature. 2011;472(7341):57-63.  https://doi.org/10.1038/nature09922
  19. Chen K, Zheng X, Feng M, Li D, Zhang H. Gut Microbiota-Dependent Metabolite Trimethylamine N-Oxide Contributes to Cardiac Dysfunction in Western Diet-Induced Obese Mice. Frontiers in Physiology. 2017;8:139.  https://doi.org/10.3389/fphys.2017.00139
  20. Raetz CRH, Whitfield C. Lipopolysaccharide Endotoxins. Annual Review of Biochemistry. 2002;71:635-700.  https://doi.org/10.1146/annurev.biochem.71.110601.135414
  21. Masson GS, Nair AR, Dange RB, Silva-Soares PP, Michelini LC, Francis J. Toll-Like Receptor 4 Promotes Autonomic Dysfunction, Inflammation and Microglia Activation in the Hypothalamic Paraventricular Nucleus: Role of Endoplasmic Reticulum Stress. PLoS ONE. 2015;10(3):e0122850. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0122850
  22. Santisteban MM, Qi YF, Zubcevic J, Kim S, Yang T, Shenoy V, Cole-Jeffrey CT, Lobaton G, Stewart DC, Rubiano A, Simmons CS, Garcia-Pereira F, Johnson RD, Pepine CJ, Raizada MK. Hypertension-Linked Pathophysiological Alterations in the Gut. Circulation Research. 2017;120(2):312-323.  https://doi.org/10.1161/CIRCRESAHA.116.309006
  23. Morrison DJ, Preston T. Formation of short chain fatty acids by the gut microbiota and their impact on human metabolism. Gut Microbes. 2016;7(3):189-200.  https://doi.org/10.1080/19490976.2015.1134082
  24. Le Poul E, Loison C, Struyf S, Springael J-Y, Lannoy V, Decobecq M-E, Brézillon S, Dupriez V, Vassart G, Van Damme J, Parmentier M, Detheux M. Functional characterization of human receptors for short chain fatty acids and their role in polymorphonuclear cell activation. The Journal of Biological Chemistry. 2003;278(28):25481-25489. https://doi.org/10.1074/jbc.M301403200
  25. Busnelli M, Manzini S, Chiesa G. The Gut Microbiota Affects Host Pathophysiology as an Endocrine Organ: A Focus on Cardiovascular Disease. Nutrients. 2019;27:12(1):79.  https://doi.org/10.3390/nu12010079
  26. Ohsawa I, Ishikawa M, Takahashi K, Watanabe M, Nishimaki K, Yamagata K, Katsura K, Katayama Y, Asoh S, Ohta S. Hydrogen acts as a therapeutic antioxidant by selectively reducing cytotoxic oxygen radicals. Nature Medicine. 2007;13(6):688-694.  https://doi.org/10.1038/nm1577
  27. Ohsawa I, Nishimaki K, Yamagata K, Ishikawa M, Ohta S. Consumption of hydrogen water prevents atherosclerosis in apolipoprotein E knockout mice. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2008;377(4):1195-1198. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2008.10.156
  28. Iketani M, Sekimoto K, Igarashi T, Takahashi M, Komatsu M, Sakane I, Takahashi H, Kawaguchi H, Ohtani-Kaneko R, Ohsawa I. Administration of hydrogen-rich water prevents vascular aging of the aorta in LDL receptor-deficient mice. Scientific Reports. 2018;8(1):16822. https://doi.org/10.1038/s41598-018-35239-0
  29. Chi J, Li Z, Hong X, Zhao T, Bie Y, Zhang W, Yang J, Feng Z, Yu Z, Xu Q, Zhao L, Liu W, Gao Y, Yang H, Yang J, Liu J, Yang W. Inhalation of Hydrogen Attenuates Progression of Chronic Heart Failure via Suppression of Oxidative Stress and P53 Related to Apoptosis Pathway in Rats. Frontiers in Physiology. 2018;9:1026. https://doi.org/10.3389/fphys.2018.01026
  30. Li X, Li L, Liu X, Wu J, Sun X, Li Z, Geng YJ, Liu F, Zhou Y. Attenuation of Cardiac Ischaemia-reperfusion Injury by Treatment with Hydrogen-rich Water. Current Molecular Medicine. 2019;19(4):294-302.  https://doi.org/10.2174/1566524019666190321113544
  31. Gao Q, Song H, Wang XT, Liang Y, Xi YJ, Gao Y, Guo QJ, LeBaron T, Luo YX, Li SC, Yin X, Shi HS, Ma YX. Molecular hydrogen increases resilience to stress in mice. Scientific Reports. 2017;7(1):9625. https://doi.org/10.1038/s41598-017-10362-6
  32. Sakai T, Sato B, Hara K, Hara Y, Naritomi Y, Koyanagi S, Hara H, Nagao T, Ishibashi T. Consumption of water containing over 3.5 mg of dissolved hydrogen could improve vascular endothelial function. Vascular Health and Risk Management. 2014;10:591-597.  https://doi.org/10.2147/VHRM.S68844
  33. Ishibashi T, Kawamoto K, Matsuno K, Ishihara G, Baba T, Komori N. Peripheralendothelial function can be improved by daily consumption of water containing over 7 ppm of dissolved hydrogen: A randomized controlled trial. PLoS ONE. 2020;15(5):e0233484. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0233484
  34. Kawamura T, Wakabayashi N, Shigemura N, Huang CS, Masutani K, Tanaka Y, Noda K, Peng X, Takahashi T, Billiar TR, Okumura M, Toyoda Y, Kensler TW, Nakao A. Hydrogen gas reduces hyperoxic lung injury via the Nrf2 pathway in vivo. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology. 2013;304(10):L646-656.  https://doi.org/10.1152/ajplung.00164.2012
  35. Duncan SH, Aminov RI, Scott KP, Louis P, Stanton TB, Flint HJ. Proposal of Roseburia faecis sp. nov., Roseburia hominis sp. nov. and Roseburia inulinivorans sp. nov., based on isolates from human faeces. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2006;56(Pt 10):2437-2441. https://doi.org/10.1099/ijs.0.64098-0
  36. Calusinska M, Happe T, Joris B, Wilmotte The surprising diversity of clostridial hydrogenases: a comparative genomic perspective. Microbiology (Reading). 2010;156(Pt 6):1575-1588. https://doi.org/10.1099/mic.0.032771-0
  37. Simmering R, Taras D, Schwiertz A, Le Blay G, Gruhl B, Lawson PA, Collins MD, Blaut M. Ruminococcus luti sp. nov., isolated from a human faecal sample. Systematic and Applied Microbiology. 2002;25(2):189-193.  https://doi.org/10.1078/0723-2020-00112
  38. Suzuki A, Ito M, Hamaguchi T, Mori H, Takeda Y, Baba R, Watanabe T, Kurokawa K, Asakawa S, Hirayama M, Ohno K. Quantification of hydrogen production by intestinal bacteria that are specifically dysregulated in Parkinson’s disease. PLoS One. 2018;13(12):e0208313. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0208313
  39. Duncan SH, Flint HJ. Proposal of a neotype strain (A1-86) for Eubacterium rectale. Request for an opinion. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2008;58(Pt 7):1735-1736. https://doi.org/10.1099/ijs.0.2008/004580-0
  40. Steer T, Collins MD, Gibson GR, Hippe H, Lawson PA. Clostridium hathewayi sp. nov., from human faeces. Systematic and Applied Microbiology. 2001;24(3):353-357.  https://doi.org/10.1078/0723-2020-00044
  41. Chassard C, Delmas E, Lawson PA, Bernalier-Donadille A. Bacteroides xylanisolvens sp. nov., a xylan-degrading bacterium isolated from human faeces. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2008;58(Pt 4):1008-1013. https://doi.org/10.1099/ijs.0.65504-0
  42. Carbonero F, Benefiel AC, Gaskins HR. Contributions of the microbial hydrogen economy to colonic homeostasis. Nature Reviews. Gastroenterology and Hepatology. 2012;9(9):504-518.  https://doi.org/10.1038/nrgastro.2012.85
  43. Levitt MD. Volume and Composition of Human Intestinal Gas Determined by Means of an Intestinal Washout Technic. New England Journal of Medicine. 1971;284(25):1394-1398. https://doi.org/10.1056/nejm197106242842502
  44. Flourié B, Etanchaud F, Florent C, Pellier P, Bouhnik Y, Rambaud JC. Comparative study of hydrogen and methane production in the human colon using caecal and faecal homogenates. Gut. 1990;31(6):684-685.  https://doi.org/10.1136/gut.31.6.684
  45. Strocchi A, Levitt MD. Factors affecting hydrogen production and consumption by human fecal flora. The critical roles of hydrogen tension and methanogenesis. The Journal of Clinical Investigation. 1992;89(4):1304-1311. https://doi.org/10.1172/JCI115716
  46. Berean KJ, Ha N, Ou JZ, Chrimes AF, Grando D, Yao CK, Muir JG, Ward SA, Burgell RE, Gibson PR, Kalantar-Zadeh K. The safety and sensitivity of a telemetric capsule to monitor gastrointestinal hydrogen production in vivo in healthy subjects: a pilot trial comparison to concurrent breath analysis. Alimentary Pharmacology and Therapeutics. 2018;48(6):646-654.  https://doi.org/10.1111/apt.14923
  47. Levitt MD. Production and Excretion of Hydrogen Gas in Man. New England Journal of Medicine. 1969;281(3):122-127.  https://doi.org/10.1056/nejm196907172810303
  48. Cummings JH, Englyst HN. Measurement of starch fermentation in the human large intestine. Canadian Journal of Physiology and Pharmacology. 1991;69(1):121-129.  https://doi.org/10.1139/y91-018
  49. Sheflin AM, Borresen EC, Kirkwood JS, Boot CM, Whitney AK, Lu S, Brown RJ, Broeckling CD, Ryan EP, Weir TL. Dietary supplementation with rice bran or navy bean alters gut bacterial metabolism in colorectal cancer survivors. Molecular Nutrition & Food Research. 2017;61(1):10.1002/mnfr.201500905. https://doi.org/10.1002/mnfr.201500905
  50. de Lorgeril M, Salen P, Martin JL, Monjaud I, Delaye J, Mamelle N. Mediterranean diet, traditional risk factors, and the rate of cardiovascular complications after myocardial infarction: final report of the Lyon Diet Heart Study. Circulation. 1999;99(6):779-785.  https://doi.org/10.1161/01.cir.99.6.779
  51. Иванова А.Ю., Трунов С.С., Широков И.В., Белоусова М.А., Медведева Н.А., Медведев О.С. Изменение функциональной активности микробиоты кишечника крыс на фоне диеты с повышенным содержанием жировых продуктов с различным жирнокислотным составом. Технологии живых систем. 2020;17(4):29-41. 
  52. Suzuki Y, Sano M, Hayashida K, Ohsawa I, Ohta S, Fukuda K. Are the effects of alpha-glucosidase inhibitors on cardiovascular events related to elevated levels of hydrogen gas in the gastrointestinal tract? FEBS Letters. 2009;583(13):2157-2159. https://doi.org/10.1016/j.febslet.2009.05.052
  53. Hanefeld M, Cagatay M, Petrowitsch T, Neuser D, Petzinna D, Rupp M. Acarbose reduces the risk for myocardial infarction in type 2 diabetic patients: meta-analysis of seven long-term studies. European Heart Journal. 2004;25(1):10-16.  https://doi.org/10.1016/s0195-668x(03)00468-8
  54. Eckburg PB, Bik EM, Bernstein CN, Purdom E, Dethlefsen L, Sargent M, Gill SR, Nelson KE, Relman DA. Microbiology: diversity of the human intestinal microbial flora. Science. 2005;308(5728):1635-1638. https://doi.org/10.1126/science.1110591
  55. Nava GM, Carbonero F, Croix JA, Greenberg E, Gaskins HR. Abundance and diversity of mucosa-associated hydrogenotrophic microbes in the healthy human colon. The ISME Journal. 2012;6(1):57-70.  https://doi.org/10.1038/ismej.2011.90
  56. Gottlieb K, Wacher V, Sliman J, Pimentel M. Review article: inhibition of methanogenic archaea by statins as a targeted management strategy for constipation and related disorders. Alimentary Pharmacology and Therapeutics. 2016;43(2):197-212.  https://doi.org/10.1111/apt.13469

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.