Корсакова Н.В.

ФГБОУ ВО «Чувашский государственный университет им. И.Н. Ульянова»;
Чебоксарский филиал ФГАУ НМИЦ «МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Федорова» Минздрава России

Особенности кровяного давления мышей с генетическим дефектом различных подтипов α1-адренорецепторов

Авторы:

Корсакова Н.В.

Подробнее об авторах

Журнал: Вестник офтальмологии. 2020;136(5): 103‑108

Прочитано: 2236 раз


Как цитировать:

Корсакова Н.В. Особенности кровяного давления мышей с генетическим дефектом различных подтипов α1-адренорецепторов. Вестник офтальмологии. 2020;136(5):103‑108.
Korsakova NV. Features of blood pressure in mice with a genetic defect of different subtypes of α1-adrenoreceptors. Russian Annals of Ophthalmology. 2020;136(5):103‑108. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/oftalma2020136051103

Рекомендуем статьи по данной теме:
Фун­да­мен­таль­ные ос­но­вы ста­ре­ния па­ро­дон­та. Часть 1. Опе­ра­тив­ная хи­рур­гия и кли­ни­чес­кая ана­то­мия (Пи­ро­гов­ский на­уч­ный жур­нал). 2025;(2):63-69
Фун­да­мен­таль­ные ос­но­вы ста­ре­ния па­ро­дон­та. Часть 2. Опе­ра­тив­ная хи­рур­гия и кли­ни­чес­кая ана­то­мия (Пи­ро­гов­ский на­уч­ный жур­нал). 2025;(3):62-69

Все вегетативные функции в организме человека, в том числе и уровень кровяного давления, обеспечивает вегетативная нервная система, принимающая активное участие в поддержании нормальных обменных процессов в его тканях и органах [1—5]. Бесспорно важна сосудосуживающая функция α-адренорецепторов в регуляции системного артериального давления [1, 6—14]. Установлено, что α-адренорецепторы задействованы как в регулировании процессов функционирования нервной и сосудистой систем (таких как модуляция синаптической пластичности [15], уровня кровяного давления, диаметра просвета артериол, проницаемости сосудистой стенки), так и в обеспечении локальных моторных и трофических реакций, например, глазного яблока, инициируя сужение зрачка, регулируя гемодинамику глаза, объем секреции и скорость оттока внутриглазной жидкости, участвуя в поддержании циркадных ритмов внутриглазного давления и т.д. [7, 8, 10, 11, 16, 17]. В связи с этим важно помнить, что в настоящее время помимо повышенного внутриглазного давления глубоко изучаются и иные патогенетические факторы первичной открытоугольной глаукомы (ПОУГ) — пониженное системное кровяное давление, ухудшение глазного кровотока, а также сосудистая дисрегуляция, реперфузионное повреждение и оксидативный стресс тканей глазного яблока [3, 18, 19]. Однако остается практически не изученной роль отдельных подтипов α1-адренорецепторов (α1a-, α1b- и α1d-подтипы) в регуляции гемодинамики различных тканей организма, при этом участие названных подтипов α1-адренорецепторов в регуляции глазного и ретинального кровотока, проницаемости сосудистой стенки и диаметра зрачка уже описано [3, 4, 9, 20]. Кроме того, известно, что α2-адренорецепторы в регуляции гемодинамики заднего сегмента глаза участия не принимают и не способны модулировать его вазомоторную активность, при этом они демонстрируют свое активное участие в регуляции гидродинамики глаза с доказанной способностью к значительному снижению внутриглазного давления [21—24]. Таким образом, изучение роли подтипов α1-адренорецепторов в регуляции системного кровяного давления организма будет способствовать более глубокому изучению этиопатогенеза ПОУГ. Обоснованием высказанного предположения могут служить, например, недавно полученные сведения о значительных различиях уровня внутриглазного давления и количества ганглиозных клеток сетчатки у особых нокаутных мышей с генетическим дефектом по одному из названных выше подтипов α1-адренорецепторов [16, 25].

Цель исследования — выявить влияние α1a-, α1b- и α1d-подтипов адренорецепторов на уровень кровяного давления лабораторных мышей.

Материал и методы

Настоящее исследование выполнено на 36 лабораторных мышах-самцах (экспериментальная группа), имеющих генетический дефект одного из трех названных подтипов α1-адренорецепторов: α1a (15 мышей линии ADRA-1A), α1b (11 мышей линии ADRA-1B) и α1d (10 мышей линии ADRA-1D). Десять интактных лабораторных мышей-самцов линии C57Bl/6NTac такого же возраста включены в группу контроля. Указанные выше линии экспериментальных животных предоставлены Университетом имени Гутенберга (Майнц, Германия) в рамках совместного научного исследования, проведенного в 2015—2016 гг.

Все замеры системного кровяного давления произведены с помощью современной высокоточной неинвазивной системы измерения [26—28] CodaTM Standard (производитель Kent Scientific, США), рекомендованной Американской кардиологической ассоциацией для применения в экспериментальных исследованиях на животных, в том числе с генетическими дефектами [27]. Независимые исследования университетов Бостона, Нью-Йорка и других крупных исследовательских центров доказали, что значения кровяного давления, полученные с помощью данной неинвазивной системы, на 99% коррелируют с прямым инвазивным методом измерения кровяного давления (радиотелеметрия) при средней ошибке измерения равной или меньшей 0,25 мм рт.ст. [27, 29].

Животные контрольной и экспериментальной групп содержались в помещении вивария в одинаковых условиях. Температура воздуха в виварии, согласно разработанным рекомендациям [29], поддерживалась на уровне 26 °C. Измерение кровяного давления проведено в утренние часы в строго установленное время (суббота, с 08:00 до 09:00), длительность цикла производимых измерений у одного животного составила 15 мин, из которых 10 мин предназначены для адаптации животного. Кроме того, строго соблюдены рекомендации относительно температуры поддерживающего столика системы CodaTM Standard на уровне 35 °C в течение всего периода подготовки и измерения кровяного давления мыши. Также, следуя разработанным рекомендациям, в течение трех дней, предшествующих введению животных в эксперимент (среда, четверг, пятница), проведены обучающие тренировки выделенных лабораторных животных с целью их максимально полной адаптации к условиям измерения [29]. Кровяное давление каждого отдельного животного измерено десятикратно.

Методы статистической обработки. Для математической обработки статистических данных применена программа Statistica 6.0 («StatSoft Inc.2, США). Полученные цифровые данные измерения уровня кровяного давления представлены в формате: M±m, где M — среднее арифметическое значение, а m — стандартная ошибка среднего арифметического. Статистическая достоверность результатов определена с помощью критерия Стьюдента.

Проведенная работа с лабораторными животными осуществлена в соответствии с принципами Хельсинкской декларации Всемирной медицинской ассоциации и «Принципами надлежащей лабораторной практики» (национальный стандарт РФ ГОСТ Р 53434—2009).

Результаты исследования

Выявленные во всех трех экспериментальных группах особенности кровяного давления нокаутных мышей линий ADRA-1A, ADRA-1B и ADRA-1D в сравнении с интактными мышами линии C57Bl/6NTac из контрольной группы животных представлены в таблице.

Особенности кровяного давления интактных и нокаутных мышей линий ADRA-1A, ADRA-1B и ADRA-1D в утренние часы

Линия лабораторных мышей

Среднее кровяное давление, мм рт.ст.

Среднее пульсовое давление, мм рт.ст.

Диапазон абсолютных значений пульсового давления, мм рт.ст.

систолическое

диастолическое

C57Bl/6NTac (интактные мыши)

124,74±3,24

98,56±2,93

26,18±3,09

От 23,09 до 29,27 (6,18)

ADRA-1A

92,70±4,64*

62,30±3,12*

30,40±3,88*

От 26,52 до 34,28 (7,76)

ADRA-1B

95,51±3,78*

65,13±2,26*

30,38±3,02*

От 27,36 до 33,40 (6,04)

ADRA-1D

80,85±4,04*

58,32±2,92*

22,53±3,48*

От 19,05 до 26,01 (6,96)

Примечание. *p<0,05 (при сравнении линий нокаутных мышей с интактными).

Установлено, что среднее значение кровяного систолического давления исследованных интактных мышей контрольной группы (линия C57Bl/6NTac) составило 124,74±3,24 мм рт.ст., а среднее значение кровяного диастолического давления у мышей этой же группы в среднем равно 98,56±2,93 мм рт.ст.

Систолическое кровяное давление нокаутных мышей линии ADRA-1A в сравнении с показателями контроля было достоверно ниже и зарегистрировано в среднем на уровне 92,70±4,64 мм рт.ст. Диастолическое кровяное давление нокаутных мышей линии ADRA-1A также было достоверно ниже, чем у мышей контрольной группы, и составило в среднем 62,30±3,12 мм рт.ст.

Среднее систолическое и диастолическое кровяное давление нокаутных мышей линии ADRA-1B также достоверно ниже аналогичных показателей интактных мышей и равно 95,51±3,78 и 65,13±2,26 мм рт.ст. соответственно.

Самые низкие достоверно значимые уровни среднего систолического и диастолического кровяного давления установлены в экспериментальной группе нокаутных мышей линии ADRA-1D — 80,85±4,04 и 58,32±2,92 мм рт.ст. соответственно.

Важно отметить, что значения среднего пульсового давления (разница между средним уровнем систолического и диастолического кровяного давления) у исследованных экспериментальных мышей линий ADRA-1A, ADRA-1B и ADRA-1D в сопоставлении с показателями интактных мышей группы контроля (линия C57Bl/6NTac) также имеют существенные отличия и составляют: 30,40±3,88; 30,38±3,02 и 22,53±3,48 мм рт.ст. соответственно; среднее значение пульсового давления интактных мышей контрольной группы (линия C57Bl/6NTac) составило 26,18±3,09 мм рт.ст.

Установлен и диапазон абсолютных значений уровня пульсового давления (разница между наибольшим уровнем систолического и наименьшим уровнем диастолического давления) животных во всех изучаемых группах, который составил в группе контроля 6,18 мм рт.ст. При этом достоверно наибольший диапазон абсолютных значений уровня пульсового давления выявлен у мышей линии ADRA-1A (7,76 мм рт.ст.), а достоверно наименьший — у мышей линии ADRA-1B (6,04 мм рт.ст.).

Таким образом, изученные нокаутные мыши в сравнении с контролем обладают, кроме достоверно более низкого уровня систолического и диастолического кровяного давления, существенно отличающимися характеристиками среднего пульсового давления (у мышей линий ADRA-1A и ADRA-1B достоверно повышено, а у мышей линии ADRA-1D — понижено), а также значительными отличиями диапазона зафиксированных абсолютных значений пульсового давления (наибольший диапазон — у мышей линии ADRA-1A, наименьший — у мышей линии ADRA-1B).

Обсуждение

Из научной литературы известно, что участие α-адренорецепторов в регуляции функций нервной системы организма, его кровяного давления, гемо- и гидродинамики при определенных условиях способствует возникновению реперфузионного повреждения тканей организма [4, 20, 30].

В связи с этим важно обратить внимание на выявленные в настоящем исследовании различия в диапазоне абсолютных значений уровня пульсового давления изученных групп животных (при разных условиях функционирования симпатического отдела вегетативной нервной системы), патогенетическое значение которых в развитии ПОУГ подтверждено и другими исследованиями [2, 4, 31].

Также известно, что в развитии возрастных сосудистых заболеваний, например, миокарда, головного мозга, глаза (таких как инфаркт миокарда, инсульт, ПОУГ и др.) большое значение имеет не только уровень кровяного давления, но и нестабильность гемодинамических показателей, которая провоцирует прогрессирующую гибель клеток вследствие запускаемого в них механизма реперфузионного повреждения [2—4, 20].

Вспомним, что каждая клетка, ткань, орган или живой организм должны постоянно приспосабливаться к различным условиям среды для выживания в ходе эволюции. При этом регуляция сосудистого тонуса даже в интактном организме на разных уровнях сосудистого ложа (крупные и мелкие артерии, капилляры, вены) имеет особые механизмы [1, 7, 9, 10, 11]. В условиях, когда местная регуляция сосудистого тонуса не осуществляется в полном соответствии с потребностями органа или ткани, возникает сосудистая дисрегуляция. Например, генетически обусловленная первичная сосудистая дисрегуляция создает условия для возникновения парадоксальных сосудистых реакций на предъявляемые раздражители (например, эмоциональный, механический, термический стресс, холод, жажду и др.) [3, 4, 8, 32, 33]. Молекулярные механизмы развития первичной сосудистой дисрегуляции окончательно не установлены, однако доказано, что организм, функционирующий в условиях первичной сосудистой дисрегуляции, имеет более низкое артериальное давление (особенно в период сна), более высокое пульсовое давление и выраженные резкие перепады уровня артериального давления [7—11, 20].

Очевидно, что генетически обусловленный дефект рецепторной обеспеченности организма, в том числе и сосудов, проявляющийся периодически возникающей нестабильностью общего и регионарного кровоснабжения, вызывает и согласованное с ней (также периодическое) реперфузионное повреждение кровоснабжаемой ткани. При этом сопутствующее реперфузионному повреждению ткани увеличение продукции активных форм кислорода приводит к развитию хронического оксидативного стресса (особенно в митохондриях), что вызывает прежде всего повреждение всех частей клетки, а в дальнейшем способно приводить либо к ремоделированию данной ткани, либо к ее гибели, становясь морфологическим проявлением развивающего дистрофического процесса, в том числе и возрастного [1, 4, 34].

Выявленные особенности кровяного давления нокаутных мышей-самцов линий ADRA-1A, ADRA-1B и ADRA-1D в утренние часы позволили сделать следующие выводы:

1. Уровень систолического и диастолического кровяного давления у нокаутных мышей линий ADRA-1A, ADRA-1B и ADRA-1D всех трех экспериментальных групп достоверно ниже, чем у интактных мышей контрольной группы.

2. Уровень среднего пульсового давления у нокаутных мышей линий ADRA-1A и ADRA-1B достоверно выше, а у мышей линии ADRA-1D — ниже, чем у интактных.

3. Диапазон абсолютных значений пульсового давления у нокаутных мышей линии ADRA-1A — наибольший, а у мышей линии ADRA-1B — наименьший.

4. Для мышей линии ADRA-1A характерны умеренно пониженное систолическое и диастолическое кровяное давление, максимально высокое значение среднего пульсового давления, а также наибольшие колебания абсолютных значений пульсового давления в сравнении с другими изученными линиями мышей.

5. Для мышей линии ADRA-1B характерны наиболее высокие уровни систолического и диастолического кровяного давления среди всех изученных линий мышей с генетическими дефектами α1-адренорецепторов.

6. Для мышей линии ADRA-1D характерны наименьшее систолическое и диастолическое кровяное давление и минимальные значения среднего пульсового давления в сравнении с другими изученными линиями мышей.

Заключение

Полученные результаты подтверждают важность модулирующих влияний вегетативной нервной системы и свидетельствуют о специфическом вкладе α1a-, α1b- и α1d-подтипов адренорецепторов в регуляцию уровня кровяного давления, поддержание стабильности гемодинамики, а также о потенциально важной роли прежде всего α1a-подтипа адренорецепторов в патогенезе возрастных дистрофических заболеваний (например, ПОУГ), связанных с развитием реперфузионного и хронического оксидативного повреждения тканей, что требует дальнейшего более глубокого изучения. Кроме того, можно предположить, что преобладание в организме одних подтипов α1-адренорецепторов и отсутствие (или недостаточная экспрессия) других подтипов могут лежать в основе развития первичной сосудистой дисрегуляции.

Благодарность

Работа выполнена при поддержке Германской службы академических обменов (DAAD) и Министерства образования и науки Российской Федерации в рамках программы академического обмена (соглашение с исследователем № 91578056). Автор выражает благодарность своему коллеге A. Gericke за помощь в организации экспериментов.

Автор заявляет об отсутствии конфликта интересов.

The author declares no conflicts of interest.

Литература / References:

  1. Адо А.Д. Патологическая физиология. М.: Триада-Х; 2000.
  2. Еричев В.П., Козлова И.В., Макарова А.С., Цзинь Д. Особенности системной гемодинамики у больных первичной открытоугольной глаукомой, компенсированным внутриглазным давлением и нестабилизированным течением. Глаукома. 2013;3:22-25. 
  3. Курышева Н.И., Царегородцева М.А., Иртегова Е.Ю., Рябова Т.Я. и др. Глазное перфузионное давление и первичная сосудистая дисрегуляция у больных глаукомой нормального давления. Глаукома. 2011; 3:11-17. 
  4. Мозаффари М., Фламмер Й. Кровообращение глаза и глаукомная оптическая нейропатия. СПб.: Эко-Вектор; 2013.
  5. Шляхто Е.В., Баранцевич Е.Р., Щербак Н.С., Галагудза М.М. Молекулярные механизмы формирования ишемической толерантности головного мозга (Часть 1). Вестник Российской академии медицинских наук. 2012;6:42-50. 
  6. Любовцева Е.В., Любовцева Л.А., Гурьянова Е.А., Голубцова Н.Н., Московский А.В. и др. Местная регуляция органов биоаминсодержащими клетками. Морфология. 2009;136(4):91b. 
  7. Cavalli A, Lattion A-L, Hummler E, Nenniger M. Decreased blood pressure response in mice deficient of the a1b-adrenergic receptor. Proc Natl Acad Sci USA. 1997;94:11589-11594. https://doi.org/10.1073/pnas.94.21.11589
  8. Guimaraes S, Moura D. Vascular adrenoreceptors: an update. Pharmacol Rev. 2001;53(2):451. 
  9. Kordasz M, Manicam C, Steege A, Goloborodko E, et al. Role of a1-adrenoceptor subtypes in pupil dilation studied with gene-targeted mice. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2014;55(12):8295-8301. https://doi.org/10.1167/iovs.14-15706
  10. Rokosh D, Simpson P. Knockout of the α1A/C-adrenergic receptor subtype: the α1A/C is expressed in resistance arteries and is required to maintain arterial blood pressure. Proc Natl Acad Sci USA. 2002;99(14):9474-9479. https://doi.org/10.1073/pnas.132552699
  11. Tanoue A, Nasa Y, Koshimizu T, Shinoura H, et al. The a1D-adrenergic receptor directly regulates arterial blood pressure via vasoconstriction. J Clin Invest. 2002;109(6):765-775.  https://doi.org/10.1172/jci14001
  12. Sebastiani A, Parmeggiani F, Costagliola C, Ciancaglini M, et al. Effects of acute topical administration of clonidine 0.125%, apraclonidine 1.0% and brimonidine 0.2% on visual field parameters and ocular perfusion pressure in patients with primary open-angle glaucoma. Acta Ophthalmol Scand Suppl. 2002;236:29-30.  https://doi.org/10.1034/j.1600-0420.80.s236.18.x
  13. Rosa RH Jr, Hein TW, Yuan Z, Xu W, et al. Brimonidine evokes heterogeneous vasomotor response of retinal arterioles: diminished nitric oxide-mediated vasodilation when size goes small. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2006;291(1):231-238.  https://doi.org/10.1152/ajpheart.01281.2005
  14. Costagliola C, Parmeggiani F, Ciancaglini M, D’Oronzo E, et al. Ocular perfusion pressure and visual field indice modifications induced by alpha-agonist compound (clonidine 0.125%, apraclonidine 1.0% and brimonidine 0.2%) topical administration. An acute study on primary open-angle glaucoma patients. Ophthalmologica. 2003;217(1):39-44.  https://doi.org/10.1159/000068249
  15. Pankratov Y, Lalo U. Role for astroglial α1-adrenoreceptors in gliotransmission and control of synaptic plasticity in the neocortex. Front Cell Neurosci. 2015;9:230.  https://doi.org/10.3389/fncel.2015.00230
  16. Корсакова Н.В. Особенности внутриглазного давления мышей с генетическим дефектом различных подтипов альфа-1-адренорецепторов в утренние и вечерние часы. Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. 2017;103(5):562-569. 
  17. Dalvin L, Fautsch M. Analysis of circadian rhythm gene expression with reference to diurnal pattern of intraocular pressure in mice. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2015;56(4):2657-2663. https://doi.org/10.1167/iovs.15-16449
  18. Moore D, Harris A, Wudunn D, Kheradiya N, et al. Dysfunctional regulation of ocular blood flow: a risk factor for glaucoma? Clin Ophthalmol. 2008; 2(4):849-861.  https://doi.org/10.2147/opth.s2774
  19. Ulrich A, Ulrich C, Barth T, Ulrich WD. Detection of disturbed autoregulation of the peripapillary choroid in primary open angle glaucoma. Ophthalmic Surg Lasers. 1996;27(9):746-757. 
  20. Terelak-Borys B, Czechowicz-Janicka K. Investigation into the vasospastic mechanisms in the pathogenesis of glaucomatous neuropathy. Klin Oczna. 2011;113(7-9):201-208. 
  21. Carlsson AM, Chauhan BC, Lee AA, Leblanc RP. The effect of brimonidine tartrate on retinal blood flow in patients with ocular hypertension [corrected]. Am J Ophthalmol. 1999;128(6):697-701  https://doi.org/10.1016/s0002-9394(99)00228-7
  22. Yu M, Li Y, Liu X, Ling Y, et al. Effect of 0.2% brimonidine on retinal blood flow. Yan Ke Xue Bao. 2001;17(1):42-45. 
  23. Lachkar Y, Migdal C, Dhanjil S. Effect of brimonidine tartrate on ocular hemodynamic measurements. Arch Ophthalmol. 1998;116(12):1591-1594. https://doi.org/10.1001/archopht.116.12.1591
  24. Schmidt KG, Klingmuller V, Gouveia SM, Osborne NN, et al. Short posterior ciliary artery, central retinal artery, and choroidal hemodynamics in brimonidine-treated primary open-angle glaucoma patients. Am J Ophthalmol. 2003;136(6):1038-1048. https://doi.org/10.1016/s0002-9394(03)00631-7
  25. Korsakova NV. Numbers of retinal ganglion cells in mice with genetic defects in different A1-adrenoreceptor subtypes. Neurosci Behav Physiol. 2019; 49(8):1027-1031. https://doi.org/10.1007/s11055-019-00833-w
  26. Daugherty A, Rateri D, Hong L, Balakrishnan A. Measuring blood pressure in mice using volume pressure recording, a tail-cuff method. J Vis Exp. 2009;15(27):1291. https://doi.org/10.3791/1291
  27. Feng M, Whitesall S, Zhang Y, Beibel M, et al. Validation of volume-pressure recording tail-cuff blood pressure measurements. Am J Hypertens. 2008; 21(12):1288-1291. https://doi.org/10.1038/ajh.2008.301
  28. Wang Y, Thatcher S, Cassis L. Measuring blood pressure using a noninvasive tail cuff method in mice. Methods Mol Biol. 2017;1614:69-73.  https://doi.org/10.1007/978-1-4939-7030-8_6
  29. CODATM Non-Invasive Blood Pressure System Owner`s Manual. For Standard and High-Throughput. Kent Scientific Corporation, Documentation Version 1.01.07, For Software Version 4.1. 2013;37. 
  30. Kurysheva NI, Maslova EV, Zolnikova IV, Fomin AV, et al. A comparative study of structural, functional and circulatory parameters in glaucoma diagnostics. PLoS ONE. 2018;13(8):e0201599. https://doi.org/10.1371/journal. pone.0201599
  31. Fuchsjager-Mayrl G, Wally B, Georgopoulos M, Rainer G, et al. Ocular blood flow and systemic blood pressure in patients with primary open-angle glaucoma and ocular hypertension. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2004;45(3): 834-839.  https://doi.org/10.1167/iovs.03-0461
  32. Kurysheva N. Heart rate variability in normal tension glaucoma: a case-control study. J Pharm Sci Res. 2017;9(5):527-536.  https://doi.org/10.1097/MD.0000000000009744
  33. Kurysheva N, Shlapak VN, Ryabova TN. Heart rate variability: the comparison between high tension and normal tension glaucoma. EPMA J. 2018; 9(1):35-45.  https://doi.org/10.1007/s13167-017-0124-4
  34. Алиханов Р.Б., Кубышкин В.А. Патофизиологические аспекты реперфузионных повреждений печени. Кубанский научный медицинский вестник. 2013;7(142):170-173. 

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.