Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Зыбина Н.Н.

ФГБУ «Всероссийский центр экстренной и радиационной медицины (ВЦЭРМ) им. А.М. Никифорова» МЧС России

Никонов Е.Л.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Герштейн Е.С.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России

Мамедли З.З.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России

Стилиди И.С.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России

Кушлинский Н.Е.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России

Зонулин как маркер проницаемости клеточных контактов при соматических и онкологических заболеваниях (обзор литературы)

Авторы:

Зыбина Н.Н., Никонов Е.Л., Герштейн Е.С., Мамедли З.З., Стилиди И.С., Кушлинский Н.Е.

Подробнее об авторах

Прочитано: 7361 раз


Как цитировать:

Зыбина Н.Н., Никонов Е.Л., Герштейн Е.С., Мамедли З.З., Стилиди И.С., Кушлинский Н.Е. Зонулин как маркер проницаемости клеточных контактов при соматических и онкологических заболеваниях (обзор литературы). Доказательная гастроэнтерология. 2022;11(1):28‑44.
Zybina NN, Nikonov EL, Gershtein ES, Memdli ZZ, Stilidi IS, Kushlinskii NE. Zonulin is a marker of epithelial and endothelial barrier functions in non-communicable diseases (narrative review). Russian Journal of Evidence-Based Gastroenterology. 2022;11(1):28‑44. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/dokgastro20221101128

Введение

Формирование представления о важной роли нарушения проницаемости кишечного барьера [1], который обладает способностью динамически реагировать на экзогенные и эндогенные факторы [2] и участвует в патогенезе многих заболеваний, способствовало повышенному интересу исследователей к неиммунному компоненту этого процесса, в том числе к белкам, влияющим на функционирование межклеточных плотных контактов (tight junctions — TJ). Один из таких белков — зонулин, человеческий гомолог продуцируемого Vibrio cholerae токсина Zot (zonula occludens toxin) [3, 4], изучение которого внесло важный вклад в понимание связи между нарушением проницаемости кишечного барьера и механизмами развития ряда заболеваний.

Нарушение целостности эпителиального пласта и увеличение его проницаемости способствуют адгезии большого количества различных антигенов и сенсибилизации организма к заболеваниям, ассоциированным с изменением плотности межклеточных TJ [4]. Можно выделить несколько групп таких заболеваний: хронические воспалительные заболевания кишечника: синдром раздраженного кишечника, болезнь Крона [5], некротизирующий энтероколит [6, 7] аллергические и аутоиммунные заболевания: целиакия [8—10], сахарный диабет 1-го типа [11, 12], аутоиммунный гепатит [13], системная красная волчанка [14], анкилозирующий спондилит [15], рассеянный склероз [16, 17], ревматоидный артрит (РА) [18]; заболевания, связанные с нарушением TJ при метаболической патологии: ожирение/резистентность к инсулину [19, 20], в том числе неалкогольная жировая болезнь печени [21], сахарный диабет 2-го типа [22, 23], синдром поликистозных яичников [24, 25]; острое повреждение легких [26], бронхиальная астма [3, 27], ишемическая болезнь сердца [28], системные инфекции — сепсис [29] и ВИЧ [30, 31], экологическая энтеропатия [32], а также аутизм [33] и другие психоневрологические заболевания.

Прорывом в понимании молекулярных механизмов регуляции кишечной проницаемости и ее роли в норме и при различных заболеваниях послужило открытие гомолога холерного токсина Zot зонулина, который стал первым и пока единственным известным белком млекопитающих, модулирующим функциональную активность TJ в основном за счет их ослабления, приводящего к увеличению проницаемости кишечной стенки [34]. Повышенная секреция зонулина обнаружена, в частности, после воздействия как патогенных и условно-патогенных, так и непатогенных штаммов бактерий [35].

Регуляторы кишечной межклеточной проницаемости

Пища переваривается в просвете кишечника в среде, образованной желчью, соком поджелудочной железы и ферментами, там же разлагаются антигены и микроорганизмы [36]. Структура кишечного просвета подвержена динамическим изменениям и определяется физическими, химическими и биологическими компонентами, такими как слизь, эпителиальные, секреторные и иммунные клетки, бактериальная микрофлора [37]. Функционирование интестинального эпителиального барьера (IEB) зависит прежде всего от наличия ряда межклеточных соединений, состоящих из апикального соединительного комплекса (AJC), включающего TJ, адгезионных соединений (AJ) и десмосом.

Основными регуляторами межклеточной проницаемости являются TJ [38], представляющие собой сеть белков, расположенных на вершине боковой мембраны эпителиальных клеток, впервые описанные в 1963 г. M.G. Farquhar и G.E. Palade [39]. Так, TJ состоят из трансмембранных белков, включая 2 класса клаудинов [40] (герметизирующие [41] и порообразующие [42—45]); интегральные белки, связанные с TJ, такие как фосфорилированный трансмембранный белок окклюдин [46, 47], соединительные молекулы адгезии [48], трицеллюлин [49], ангулины [50] и внутриклеточные цитоплазматические каркасные белки, в том числе белки семейства zonula occludens [51].

Белки zonula occludens (ZO-1 (˜220 кДа), ZO-2 (˜160 кДа), ZO-3 (˜130 кДа) относятся к семейству ассоциированных с мембраной гомологов гуанилаткиназы (MAGUK) и сконцентрированы на цитоплазматической стороне TJ в эпителиальных клетках [52]. Хотя эти белки имеют общие структурные и функциональные области, а также взаимодействуют с общими партнерами, они обладают важными функциональными особенностями, придающими им некоторые уникальные функции [53]. Каркасные белки ZO-1, -2, -3 имеют три домена PDZ и домен, подобный гуанилаткиназе (GUK): PDZ1 связывает C-конец клаудинов [51], а домен GUK взаимодействует с окклюдином [54]. C-концевые области ZO взаимодействуют с актином и служат каркасом, связывающим TJ тяжи с цитоскелетом [55—57]. Ассоциация цитоскелета со структурой TJ имеет решающее значение для регуляции и поддержания их функции [58]. Следует также указать на цитоплазматический белок цингулин с молекулярной массой 140—160 кДа, который играет структурную роль, связывая ZO-1, ZO-2, ZO-3, цитоскелетные белки [59] и сигнальный белок, участвующий в контроле пролиферации эпителия [14, 60]. Механизм регуляции ZO-1 осуществляется по PI3K/Akt сигнальному пути [61]. Особый интерес представляет белок ZO-2, продукция которого не только в нормальных, но и в опухолевых клетках зависит от ряда факторов. Так, например, известно, что TGF-β1 снижает экспрессию ZO-2 в клетках скиррозного рака желудка [62], а VEGF-A — в клетках аденокарциномы поджелудочной железы [63]. Витамин D3, напротив, индуцирует экспрессию ZO-2 в клетках колоректального рака (КРР) [64], а прогестерон — в клетках нормального эпидермиса экспериментальных животных [65].

Показано, что TJ связаны с микротрубочками и микрофиламентами цитоскелета. Важную роль в регуляции открытия/закрытия TJ играют микрофиламенты актина и миозина [66, 67], при этом миозин в основном участвует в регуляции сборки TJ [68, 69], в то время как актин связывается с цитоплазматическим каркасом белков [70]. Полимеризующие актин белки и регуляторы актина играют центральную роль в изменениях TJ [42].

Цитокины и межклеточные контакты

Исследования регуляции межклеточных TJ сосредоточены на их цитокин-опосредованной дисфункции при хронических воспалительных процессах, особенно тех, которые поражают слизистую оболочку кишки [71]. Пространственная ориентация эпителиальных клеток кишечника позволяет распознавать антигены на его апикальной стороне для обнаружения сигналов опасности и передачи этой информации в иммунные клетки, секретирующие цитокины. Презентация антигена на макрофагах человека также регулируется зонулином, который связан с изменением профиля цитокинов и сдвигом толерантности к аутоиммунитету [72].

Цитокины поддерживают гомеостаз кишечника, регулируя такие ключевые клеточные процессы, как гибель клеток, пролиферацию, молекулярный транспорт и воспалительные реакции на патогены [73]. Так, показано, что TNF-α связан с воспалительным заболеванием кишечника [74], болезнью «трансплантат против хозяина» [75], а также болезнью Крона [5], лечение которой анти-TNF-препаратами корректировало нарушение барьера, наблюдаемое в эпителии толстой кишки [74]. При этом механизм нарушения барьера TNF-α опосредуется киназой легкой цепи миозина (myosin-light-chain kinase — MLCK), а активация MLCK уменьшает проницаемость TJ как in vivo, так in vitro [76, 77].

IFN-γ увеличивает проницаемость кишечной стенки за счет изменения экспрессии и локализации белков TJ, а также перестройки цитоскелета [78]. IL-1β способствует усилению кишечного воспаления, тогда как IL-33 обладает как провоспалительными, так и противовоспалительными свойствами. Цитокины из семейства IL-1, такие как IL-1β и IL-18, играют решающую роль в поддержании гомеостаза в кишечнике [79]. Высвобождение этих двух цитокинов зависит от активации комплекса инфламмасом, при этом секреция IL-1β управляется различными стимулами, а IL-18 экспрессируется эпителием кишечника конститутивно [80]. Тем не менее поддержание баланса уровня IL-18 важно для целостности эпителия, так как гиперэкспрессия этого цитокина приводит к потере созревших бокаловидных клеток и повышенной восприимчивости к экспериментальному колиту. Известно, что IL-18 эпителиального происхождения может действовать непосредственно на рецепторы IL-18R1, экспрессированные на CD4 + Th17-клетках, а также на Foxp3+ регуляторных T-клетках (Treg), и может контролировать дифференцировку этих клеток как в норме, так и при воспалении [81]. В данном случае IL-18 представляет собой пример опосредованного цитокинами перекрестного взаимодействия, когда кишечный эпителий обучает иммунные клетки необходимому действию. IL-22, входящий в семейство IL-10, напротив, в первую очередь секретируется иммунными клетками и может напрямую влиять на кишечный эпителий через свои рецепторы [82]. IL-22 секретируется T-клетками и так называемыми врожденными лимфоидными клетками (innate lymphoid cells — ILC), не имеющими признаков T или B лимфоцитов. Относящиеся к ILC тканевые резидентные клетки Th1 и Th17 могут секретировать IL-22 под влиянием IL-6 и IL-23, секреция которых может ингибироваться TGF-β [83]. Кроме того, IL-12 и IL-17 могут активировать секрецию IL-22 клетками Th1. Клетки Th22, CD8+Т-клетки, γδ Т-клетки и NKT-клетки также могут продуцировать IL-22 в норме и при воспалении, например, при заражении Citrobacter rodentium [84]. Эти популяции клеток близко контактируют с эпителиальными клетками кишечника, гиперэкспрессирующими рецептор IL-22 (IL-22R1) [85]. При этом IL-22 активирует передачу сигналов через STAT3, способствующую выживанию эпителия во время бактериальной инфекции путем секреции антимикробных пептидов, таких как Reg3β и Reg3γ [86].

Пристальное внимание исследователей привлекают Толл-подобные рецепторы (Toll-like receptors — TLR), представляющие собой класс трансмембранных рецепторов распознавания образов (Pattern recognition receptors — PRR), которые играют важную роль в раннем врожденном иммунном ответе в кишечнике и необходимы для распознавания микробов и контроля иммунного ответа. Одним из членов семейства TLR является TLR2, распознающий консервативные паттерны как на грамотрицательных, так и на грамположительных бактериях и экспрессирующийся на многих типах клеток кишечника, включая эпителиальные [87]. Показано, что стимуляция TLR2 in vitro вызывает повышение трансэпителиального электрического сопротивления через активацию протеинкиназы C и транслокацию ZO-1 к комплексу TJ [61]. Бактерии взаимодействуют с эпителием кишечника через PRR, такие как TLR [88] и его адаптерный белок MYD88 [89], а также через NOD-подобные рецепторы [90].

Однако состав и стабильность интестинального эпителиального барьера (IEB) зависят не только от TJ, но и от взаимодействия AJ с десмосомами [91, 92]. AJ устанавливают межклеточные контакты, которые необходимы для созревания и поддержания TJ. Основным трансмембранным белком, участвующим в сборке AJ, является E-кадгерин [93], внутриклеточный домен которого связан с p120, бета-катенином и альфа-катенином, образуя комплекс, взаимодействующий с актиновыми филаментами [94].

Межклеточную механическую прочность контактам в эпителии придают десмосомы, в состав которых входят два подтипа трансмембранных кадгеринов, десмоглеины и десмоколлины. Эти белки, взаимодействуя с плакофилином и десмоплакином [95], могут связывать промежуточные волокна, обеспечивая устойчивость соединения к механическому напряжению, возникающему из-за перистальтического движения кишки [96].

Рецепторы, активируемые протеиназами (PAR), представляют собой парное семейство конъюгированных с G-белками рецепторов, активирующих протеолитическое расщепление их N-конца при обнаружении соответствующего лиганда. PAR2 находится на апикальной и базолатеральной сторонах энтероцитов [97]. Стимуляция базолатерального PAR2 приводит к увеличению проницаемости путем перераспределения ZO-1, окклюдинов и фактина [98]. Кроме того, A.M. Coelho и соавт. (2002) продемонстрировали, что in vivo апикальная стимуляция PAR2, активирующая пептид SLIGRL, вызывает дозозависимое увеличение проницаемости кишечника [99]. Показано, что стимуляция PAR1 также увеличивает кишечную проницаемость [100].

Зонулин и белки семейства зонулина

К числу ключевых эндогенных модуляторов межклеточной кишечной проницаемости относится зонулин. В настоящее время наше представление о биохимии и патофизиологии зонулина основано в большой степени на двух фундаментальных обзорах, выполненных A. Fasano и опубликованных в 2011 и 2020 гг. [3, 101]. В результате частых мутаций зонулина в процессе эволюции сформировалось семейство структурно и функционально родственных белков, названных «пептидами семейства зонулина», к которому относятся из-за своей идентичности зонулину предшественник гаптоглобина-2 (НР-2), известный как пре-гаптоглобин-2 (пре-НР-2), а также пропердин и другие белки из группы манноза-ассоциированных сериновых протеаз (mannose-associated serine protease — MASP), что доказывает роль этих белков в регуляции кишечной проницаемости [102].

Среди белков, относящихся к семейству зонулина, первым открыт пре-НР-2 [103]. Гаптоглобины относятся к группе белков, эволюционировавших из связанного с комплементом белка MASP. В результате мутации в каталитическом домене пре-НР-2 утратил функцию протеазы и приобрел новые свойства, в том числе способность модулировать TJ.

Зонулин — белок с молекулярной массой около 50 кДа — входит в число 40—50 белков, формирующих TJ между эпителиальными клетками, ограничивающими интенсивность межклеточного транспорта. Дезорганизация белковых комплексов, формирующих структуру TJ, приводит к нарушению проницаемости эпителиальных барьеров, в том числе в кишечнике. Увеличение проницаемости кишечного барьера способствует проникновению в кровоток патогенных агентов, стимулирующих развитие воспалительных и аллергических реакций [104, 105]. Зонулин, благодаря своей способности модулировать активность межклеточного транспорта, выполняет защитную роль против колонизации тонкой кишки микроорганизмами.

Секретируемый в просвет желудочно-кишечного тракта зонулин стимулирует PAR, а также рецепторы эпидермального фактора роста (EGFR), которые в свою очередь индуцируют сложный процесс «открытия» TJ, позволяя молекулам с молекулярной массой более 3,5 кДа преодолевать IEB.

Зонулин как маркер кишечной проницаемости при заболеваниях желудочно-кишечного тракта

В большинстве клинико-лабораторных исследований зонулин определяют в двух биологических средах (кал и кровь) [106—108]. Полагают, что выявление зонулина в крови может свидетельствовать о транспорте этого белка из просвета кишечника в подслизистый слой, между клетками кишечного эпителия, а в кале — о скорости его выработки в энтероцитах [109, 110]. На экспериментальной модели некротизирующего энтероколита показано, что концентрация зонулина в кале повышается одновременно с увеличением пропускной способности кишечника и сохраняется в течение 24 ч, возвращаясь к исходному уровню только через 48 ч [111].

Период полураспада зонулина в крови очень вариабелен и колеблется от 4 мин до 4 ч, поэтому возможен значительный разброс выявляемых концентраций маркера (от неопределимых до очень высоких) [7, 112]. В связи с этим некоторые авторы предлагают даже при оптимальном иммунном ответе для определения стабильности состояния кишечного барьера измерять вместо самого зонулина уровни антител к нему — IgA и IgG [7]. Другие исследователи рекомендуют использовать иммунодиагностические наборы, с помощью которых можно идентифицировать различные белки, структурно и функционально связанные с зонулином, предполагая существование семейства белков зонулина, а не только одного белка, регулирующего проницаемость кишечной стенки [113].

При нарушении проницаемости кишечного барьера в кровь могут попадать эндотоксины — продукты жизнедеятельности кишечных бактерий, поэтому диагностировать повышенную проницаемость можно, определяя иммунный ответ на компоненты микробиома кишечника, липополисахариды или бактериальные токсины в сочетании с определением IgM к зонулину и оценкой дисбиоза кишки.

Известно, что зонулин в основном секретируется эритроцитами, клетками печени, жировой ткани, мозга, иммунной системы, легких, почек и кожи, при этом он может захватываться макрофагами и клетками Браухича—Купфера в печени [7, 113]. Наиболее мощными стимуляторами секреции зонулина являются микроорганизмы (бактерии) и глютен [9]. Увеличивая кишечную проницаемость, зонулин способствует вымыванию бактерий из просвета кишки. Помимо энтероксинов, некоторые кишечные патогены, в том числе комменсальные, лабораторная Escherichia coli, вирулентная E. coli и Salmonella typhi вызывают высвобождение зонулина из кишечника при нанесении на апикальную поверхность энтероцитов. После высвобождения зонулина наблюдается повышенная проницаемость кишечника и выход ZO-1 из TJ комплекса [35].

Одним из триггерных белков, приводящих к выбросу зонулина, является глиадин [114, 115]. Нанесенный на апикальную поверхность энтероцитов глиадин вызывает высвобождение зонулина посредством активации хемокинового рецептора CXCR3, активируемого при взаимодействии с MyD88, и последующее увеличение проницаемости как на моделях клеточных культур, так и в исследованиях тканей кишки ex vivo, что опровергает мнение о влиянии глютена на секрецию зонулина как вредного компонента микроорганизмов [114, 116]. Следует отметить, что определенные домены глиадина оказывают в организме разные эффекты: пептид 31—43 — цитотоксическое действие, 57—89 (называемый 33mer) — иммуномодулирующее действие, 111—130 и 151—170 способны связывать CXCR3 и высвобождать зонулин, а 261—277 вызывает высвобождение интерлейкина IL-8 [116]. Показано, что секреция зонулина, зависимая от MyD88, способствует увеличению межклеточной кишечной проницаемости вследствие выхода белка ZO-1 из комплекса белков TJ [117]. Таким образом, «зонулиновый путь» обеспечивает механизм защиты от «смывов» микроорганизмов, поддерживая реакцию врожденного иммунитета на избыточный бактериальный рост и изменения микробиома в тонкой кишке, а также на дисбиоз.

Рецептор CXCR3 гиперэкспрессирован на апикальной поверхности энтероцитов у пациентов с болезнью Крона [116], что может объяснить увеличение экспрессии зонулина, обнаруженное в кишечных эксплантатах, полученных от пациентов с этим заболеванием при воздействии глиадина [9]. Несмотря на то что полный сигнальный каскад после связывания глиадина с CXCR3, приводящий к высвобождению зонулина, до конца не изучен, уже показана его зависимость от MyD88 — ключевой адаптерной молекулы в сигнальном пути TLR [116]. Глиадин также способен вызывать высвобождение зонулина и провоспалительных цитокинов из макрофагов, сходное с ответом, наблюдаемым после воздействия бактерий [115].

В связи с тем, что зонулин участвует в формировании TJ, повышенный уровень этого белка в крови рассматривают в качестве маркера кишечной проницаемости. Подтверждением этому можно считать изменение уровней зонулина в сыворотке крови в условиях, характеризующихся нарушением IEB, включая глютеновую болезнь, сахарный диабет 1-го типа и нечувствительную к глютену целиакию [1, 104, 118]. Модулирование кишечной проницаемости, в том числе активация зонулинового пути, является частью механизма регуляции гомеостаза слизистой оболочки кишки и может быть не связано с развитием патологического процесса, что показано в экспериментах на зонулин-трансгенных животных, которые оказались более восприимчивыми к колитам, вызванными химическими соединениями.

Исследования последних лет свидетельствуют о том, что нарушение проницаемости кишечного барьера предшествует развитию воспалительных заболеваний кишки. Транспорт антигенов из просвета кишки в кровоток стимулирует иммунный ответ, опосредованный цитокинами, которые в свою очередь способствуют нарушению проницаемости кишечного барьера, формируя замкнутый круг патологического процесса. Представление о зонулине как о маркере повышенной кишечной проницаемости служит основанием для проведения исследований по изучению его содержания в сыворотке крови и кале пациентов с воспалительными заболеваниями кишечника. Повышенные концентрации зонулина в крови и кале обнаружены при заболеваниях, в патогенезе которых основная роль отводится аутоиммунному процессу (болезнь Крона, сахарный диабет 1-го типа) и хроническому воспалению (метаболический синдром, запор) [109, 110, 119], при этом его уровни в сыворотке крови варьировали в широких пределах [12, 104, 118].

В пилотном исследовании, выполненном G.P. Caviglia и соавт. (2019), выявлено существенное возрастание сывороточного уровня зонулина у 118 пациентов с воспалительными заболеваниями кишки, среди которых у 86 выявлена болезнь Крона и у 32 — язвенный колит [120]. При этом различий в содержании зонулина между больными этих двух групп авторы не обнаружили. ROC-анализ показал высокую диагностическую точность при разделении пациентов с воспалительными заболеваниями кишечника и условно здоровых людей при пороговом уровне зонулина 14,2 пг/мл. Выявлена корреляционная взаимосвязь содержания зонулина в сыворотке крови с длительностью заболевания, но не с активностью патологического процесса и уровнем фекального кальпротектина. Не обнаружена связь сывороточного уровня зонулина и его содержания в кале. Основываясь на собственных данных и результатах других исследователей, авторы считают зонулин сыворотки крови более перспективным биологическим маркером, чем его содержание в кале.

Вместе с тем данные литературы о клиническом значении зонулина при гастроинтестинальных заболеваниях неоднозначны. Так, при обследовании 363 лиц, среди которых у 264 диагностированы функциональные и органические гастроинтестинальные заболевания, авторы [109] не выявили связи клинических проявлений с повышенным уровнем зонулина. Даже при язвенном колите, болезни Крона и целиакии указанная выше связь не обнаружена. Повышенный уровень зонулина сыворотки крови в данном исследовании коррелировал с индексом массы тела (QI), объемом талии, высоким уровнем артериального давления, гиперлипидемией и гипергликемией. Авторы объясняют полученные результаты возможной секрецией зонулина не только энтероцитами, но и многими другими клетками, в том числе жировой тканью, в связи с чем сывороточный уровень зонулина может отражать как увеличение кишечной проницаемости, так и степень его секреции другими органами.

Будучи неактивным предшественником гаптоглобина (HP), зонулин может играть роль не только маркера проницаемости, но и маркера вторичного воспаления. В литературе обсуждается сходство эффектов зонулина и HP, предшественником которого он является.

Проводятся клинические исследования зонулина у больных с ожирением, поскольку хорошо известна связь ожирения и его осложнений (сердечно-сосудистых заболеваний и артериальной гипертензии) с хроническим воспалением, в развитии которого заметную роль играет зонулиновый сигнальный путь [20]. Показана связь повышенного уровня HP с ожирением, высоким уровнем артериального давления, гипергликемией, метаболическим синдромом. Считается, что ожирение и метаболический синдром являются факторами риска развития системного воспаления слабой степени. При этом как зонулин, так и HP обладают способностью активировать систему комплемента и инициировать синтез С-реактивного белка [121]. Повышение уровня зонулина у пациентов с ожирением, ассоциированное с повышенной проницаемостью кишечного барьера и выходом в кровь эндотоксинов, провоцирующих сосудистое воспаление, характерное для таких пациентов, коррелировало с высоким потреблением калорий, белков, углеводов и натрия, а низкие уровни зонулина выявляли при повышенной продукции бутират-продуцирующих кишечных бактерий, которые, как известно, способствуют снижению кишечной проницаемости и менее выраженному воспалению [122, 123]. В связи с указанными выше данными некоторые авторы считают, что зонулин следует рассматривать в большей степени как маркер метаболических нарушений, чем как маркер кишечной проницаемости.

При исследовании связи уровня сывороточного зонулина с антропометрическими показателями и с кишечной проницаемостью у практически здоровых людей также выявлена корреляционная связь содержания зонулина с объемом талии и уровнем С-реактивного белка, но не с проницаемостью кишечного эпителия [121].

Показана биологическая роль зонулина и эффективность его использования в качестве биомаркера синдрома поражения печени при ожирении, так как у данной категории пациентов обнаружены повышенные концентрации зонулина в крови и кале [124, 125]. Анализ полученных результатов выявил прямую зависимость между тяжестью заболевания и концентрацией зонулина в крови. В то же время при циррозе печени отмечено уменьшение концентрации зонулина в сыворотке крови, связанное с повреждением функции синтеза белков в печени и не отражающее повышенную проницаемость кишечной стенки [126].

Известно, что первичный склерозирующий холангит часто ассоциирован с воспалительными заболеваниями кишки вследствие нарушения проницаемости кишечного барьера и влияния маркеров бактериальной транслокации на воспаление в билиарной системе. У пациентов с первичным склерозирующим холангитом по сравнению с контрольной группой существенно повышены уровни липополисахаридсвязывающего белка и растворимой формы CD14, но не зонулина, содержание которого даже снижено. При этом сочетание первичного склерозирующего холангита с воспалительными заболеваниями кишки не влияло на полученные результаты [127].

Глютен может стать агентом, вызывающим повышение проницаемости кишечника и уровня зонулина и у пациентов, не больных целиакией. Вызванная факторами окружающей среды кишечная дисфункция (Environmental enteric disfunction — EED) характеризуется потерей барьерной функции и повышенным бактериальным ростом в тонкой кишке, развитием воспаления низкой степени интенсивности с атрофией ворсинок и энтеропатией. Последствием этого заболевания может быть задержка физического и нейрокогнитивного развития ребенка, что подтверждается корреляцией высокого уровня зонулина и других барьерных белков с задержкой роста при EED.

Зонулин при аутоиммунных заболеваниях различной природы

Показано, что у пациентов с рассеянным склерозом наблюдается повышение проницаемости как кишечного, так и гематоэнцефалического барьеров (ГЭБ) [128]. У пациентов с поврежденным ГЭБ, по данным магнитно-резонансной томографии, концентрация зонулина существенно повышена, а базовый уровень маркера позволяет прогнозировать прогрессирование заболевания.

Дисбиоз (значительно пониженный уровень Clostridium leptum, связанный с повышенным уровнем E. coli), субклиническое воспаление кишечника, повышенная проницаемость кишечной стенки выявлены у 70% пациентов с анкилозирующим спондилитом (болезнь Бехтерева) (у примерно 10% из них в последующем разовьются клинические проявления) [129, 130], при котором в сыворотке крови обнаружены высокие уровни липополисахарида, интестинального белка, связывающего жирные кислоты, а также зонулина на фоне развития бактериального илеита. Несмотря на то что системное хроническое иммуноопосредованное заболевание анкилозирующий спондилит характеризуется преимущественно осевым и периферическим повреждением опорно-двигательного аппарата [131], выявлены внесуставные его проявления и среди них гастроинтестинальные, глазные, сердечно-сосудистые и легочные.

Негативное влияние нарушенного микробиома на иммунную систему и воспалительную регуляцию в кишечнике может способствовать развитию аутоиммунных заболеваний щитовидной железы (ЩЖ) [132], среди которых наиболее часто встречаются тиреоидит Хашимото с частотой выявления 10—12% [133—135] и болезнь Грейвса с распространенностью 1—1,5% [136, 137]. Дисбактериоз считают частой находкой при онкологических заболеваниях ЩЖ: анализ микробиома кишечника методом секвенирования на основе гена 16S рибосомной РНК показал, что его состав при новообразованиях ЩЖ изменен, при этом количество Neisseria и Streptococcus статистически значимо ниже, а Butyricimonas и Lactobacillus выше у больных раком ЩЖ (РЩЖ), что позволяет подтвердить клинический диагноз и в дальнейшем помочь в разработке потенциальных пробиотиков для терапии РЩЖ и узловых новообразований ЩЖ. Из-за повышенного воздействия патогенов на иммунные клетки кишечника последние усиленно продуцируют TNF-α и INF-γ, участвующие в воспалительных реакциях в кишечнике [138, 139], с одной стороны, и вовлеченные в патогенез указанных заболеваний ЩЖ — с другой [140—142].

В литературе представлены также данные об увеличении концентрации зонулина в плазме крови детей с нефротическим синдромом, независимо от лечения и уровня протеинурии. Однако вклад этого белка в механизм повреждения клубочкового аппарата почек должен быть изучен дополнительно [143].

Повышение уровня бактериальных токсинов, концентрации зонулина и провоспалительных цитокинов в сыворотке крови выявлено при различных психоневрологических заболеваниях: синдроме хронической усталости, аутизме, депрессии, шизофрении, болезни Паркинсона [144, 145]. В обзоре, выполненном L. Al-Ayadhi и соавт. (2021) [144], указано, что исследования пациентов с различным спектром аутичных нарушений (расстройства, связанные с аномальным развитием мозга, характерные для плохого социального взаимодействия и общения, ограниченного интереса и повторяющегося поведения пациентов) [146] выявили сопутствующие изменения микробиома (повышение содержания Clostridioides difficile, Candida albicans и снижение содержания Bifidobacterium, Lactobacillus), которые могут вызвать раздражение кишечника за счет изменения уровней бактериальных метаболитов, например, короткоцепочечных жирных кислот, липополисахаридов и бактериальных токсинов в крови и моче у детей с аутизмом. Кроме того, показано значение изменений уровней некоторых белков и низкомолекулярных метаболитов в качестве биомаркеров для раннего обнаружения повышенной кишечной проницаемости. Имеется в виду повышение содержания IL-6, TNF-α, INF-γ, кальпротектина, лизоцима, бета-крезола, пропионовой кислоты, альдегидов, производных индола и растворимого CD14 и снижение уровней зонулина и окклюдина.

Дисбактериоз и воспалительные заболевания кишечника (ВЗК) связаны и с повышенным риском развития болезни Паркинсона (БП) [147, 148]. Недавние исследования показали, что уровни фекальных маркеров воспаления кишечника, например, кальпротектина (обычно используется для диагностики и мониторинга ВЗК) и, возможно, маркеров проницаемости кишечного барьера, например, зонулина, у таких пациентов повышены [149, 150]. Воспалительные сдвиги иммунного профиля стула, сравнимые с таковыми при ВЗК, также описаны при БП [151]. L. Dumitrescu и соавт. (2021) установили, что дисбиоз кишечника превалирует у больных БП и может привести к воспалению и нарушению барьерной функции кишечника. При этом авторы выявили повышенные уровни зонулина и кальпротектина как в сыворотке крови, так и в кале больных БП по сравнению со здоровыми лицами [145].

Предполагается, что нарушения проницаемости кишечной стенки играют важную роль в процессе старения. Выявлено более высокое содержание зонулина у людей пожилого и старческого возраста, сочетавшееся с высоким уровнем провоспалительных цитокинов (TNF-α, IL-6). Все это коррелировало со снижением мышечной силы и физической активности, что косвенно свидетельствует о связи зонулин-зависимой кишечной проницаемости с системным воспалительным ответом и основными признаками старения организма человека. Это положение находит подтверждение в данных о более низком уровне зонулина и эндотоксемии у долгожителей, не имеющих тяжелых заболеваний, по сравнению с молодыми пациентами с острым инфарктом миокарда.

Зонулин в онкологии

Высказана гипотеза о том, что дисрегуляция сигнального пути зонулина может вносить вклад в патогенез различных заболеваний, связанных с нарушением межклеточных коммуникаций, в том числе злокачественной трансформации и метастазирования. Опубликованы лишь единичные исследования о роли зонулина при онкологических заболеваниях. Так, M. Skardelly и соавт. (2009) продемонстрировали увеличение тканевой экспрессии этого белка в глиомах, ассоциированное с повышенной экспрессией маркера c-kit, большей степенью злокачественности опухоли, а также с повреждением ГЭБ и тяжестью заболевания [152].

P. Dowling и соавт. (2007) использовали протеомную технологию для поиска биологических маркеров плоскоклеточного рака легкого. Среди прочих белков, уровень которых повышен в сыворотке крови пациентов, обнаружен и HP [153]. Аналогичные данные для аденокарциномы легкого, также полученные протеомным методом, представили S.H. Heo и соавт. (2007) [154]. Увеличение уровня HP обнаружено также при раке поджелудочной железы [155].

Имеются доказательства того, что пре-HP может быть более эффективным маркером, чем HP, и это показано на экспериментальной модели гепатомы [156]. В частности, доказана способность пре-HP увеличивать экспрессию VEGF и его рецептора VEGFR2, что свидетельствует об участии пре-HP наряду с HP в процессах ангиогенеза. Увеличение уровня модифицированных форм пре-HP в сыворотке крови показано и при раке молочной железы [157].

Следует отметить, что во всех этих исследованиях речь идет не об идентичном зонулину пре-HP-2, а непосредственно о HP или подобных ему пептидах. Таким образом, зонулин как маркер онкологических заболеваний практически не изучен.

Интестинальный барьер представляет собой динамическую систему, чувствительную к различным стимулам, таким как уровень секреции медиаторов воспаления, нейрональные и гормональные сигналы и особенности диеты. К гормональным сигналам условно можно отнести и зонулин, который модулирует состояние слизистой оболочки кишки, ослабляя прочность межклеточных контактов, что характерно для ранней стадии воспалительного процесса. Прочность интестинального барьера могут обеспечивать также другие пептиды, например, глюкагоноподобный пептид-2 и эпидермальный фактор роста (EGF). В регуляции кишечной проницаемости принимает участие также грелин, введение которого экспериментальным животным предотвращало повреждение интестинального барьера, вызываемое доксорубицином. В связи с этим актуальными представляются исследования, в которых изучают связь между сывороточными (циркулирующими) уровнями пептидов, кишечной проницаемостью и симптомами желудочно-кишечных расстройств у получающих химиотерапию пациентов с онкологическими заболеваниями.

F. Russo и соавт. (2013) провели исследование по определению в сыворотке крови пептидов, обеспечивающих межклеточные контакты, у больных раком легкого и кишечными расстройствами на фоне химиотерапии. Результаты определения пептидов сопоставляли с данными исследования проницаемости интестинального барьера на основе теста с лактулозой и маннитолом [158]. Изменение кишечной проницаемости оказалось ассоциированным с EGF и грелином, но не с зонулином, содержание которого в сыворотке крови пациентов с диареей и без диареи не различалось.

В обзоре, выполненном С.Н. Нарыжным и О.К. Легиной (2021), представлены данные о возможности использования пре-HP-2, то есть зонулина, в качестве биомаркера целого ряда патологических процессов, в том числе онкологических заболеваний. В работе этих же авторов продемонстрировано использование пре-HP-2 (зонулина) как биомаркера в диагностике глиобластомы [103].

Методические аспекты определения зонулина

Противоречивость результатов клинической значимости повышенного уровня зонулина в сыворотке крови и его способности отражать состояние барьерной функции кишечной стенки стали поводом для исследований по идентификации белка, определяемого коммерческими тест-системами для ИФА. Так, авторы [111, 159] отмечают, что некоторые коммерческие тест-системы не позволяют определить пре-HP, поскольку выявляемая концентрация маркера не коррелировала с генотипами HP у обследованных пациентов. На основании данных иммуноблоттинга, иммунопреципитации и масс-спектрометрии они считают наиболее вероятным белком, выявляемым с помощью исследованной тест-системы, пропердин, который условно причисляют к семейству белков зонулина.

M. Ajamian и соавт. (2019) также с использованием методов иммуноблоттинга, иммунопреципитации и масс-спектрометрии показали, что коммерческие тест-системы ИФА позволяют определить изо-формы HP, компонент комплемента С3 или пропердин, но не белки семейства зонулина [160]. Однако авторы признают, что результаты проведенных экспериментов не дают окончательного ответа о природе белков, определяемых методом ИФА. Кроме того, они не нашли совпадения и даже четкой корреляции результатов количественного определения зонулина двумя различными коммерческими ИФА системами. Поскольку в настоящее время имеются данные о вероятной роли С3 в формировании проницаемости кишечного барьера, и такую же функцию могут выполнять и некоторые белки из семейства HP, авторы справедливо делают вывод о необходимости проведения дальнейших исследований и осторожности при интерпретации данных, полученных при определении белков семейства зонулина методом ИФА.

В целом проблема специфичности наборов для ИФА содержания зонулина в сыворотке крови проанализирована в обзоре A. Fasano (2020). Основываясь на данных описанных выше исследований, автор предполагает, что в сыворотке крови присутствуют третичные и четвертичные структуры белков (мультимеры), и поэтому наборы, основанные на рекомбинантных белках, не способны определять собственно зонулин, но, возможно, позволяют выявлять другие белки семейства зонулина, которые пока неидентифицированы [101].

Лечение ингибиторами зонулина

Изучение механизмов нарушения кишечной проницаемости, в том числе с использованием сывороточного зонулина, формирует основу для поиска новых путей терапевтического воздействия на ВЗК, направленных на восстановление структуры и функции кишечного барьера, в комплексе с противовоспалительной терапией.

В связи с этим внимание исследователей привлекают ингибиторы продукции зонулина, в частности, пробиотики, влияющие на течение заболеваний. В дополнение к обычным методам лечения применяют несколько питательных веществ, в том числе коровье молозиво [161], яблочный пектин [162], витамины A и D [163], которые модулируют проницаемость эпителиального барьера, что сопровождается снижением уровня зонулина в сыворотке.

Имеются данные, свидетельствующие о способности пробиотиков модулировать проницаемость эпителиального барьера посредством снижения уровня сывороточного зонулина. Так, при проведении метаанализа девяти клинических исследований, включавших 496 пациентов и 443 здоровых лиц, получено подтверждение способности пробиотиков снижать уровень зонулина в сыворотке крови больных колоректальным раком (КРР) с метастазами и без метастазов в печени, при ожирении, неалкогольной жировой болезни печени, мигрени [164]. Однако анализ полученных результатов продемонстрировал высокий уровень гетерогенности данных отдельных исследований, обусловленный различиями в возрасте пациентов, длительности наблюдения, количестве обследованных лиц и характере заболевания. Например, у больных КРР с метастазами в печени уровень зонулина в послеопреационном периоде значительно выше, чем у пациентов без метастазов [165]. Продемонстрировано влияние пробиотиков на развитие послеоперационных инфекционных осложнений у больных КРР. На основании обследования 150 больных, 75 из которых получали плацебо, у пациентов, принимавших пробиотики, отметили существенно меньший уровень инфекционных осложнений в послеоперационном периоде, сочетавшийся со снижением проницаемости кишечного барьера и концентрации сывороточного зонулина [166]. По мнению авторов, эффект пробиотиков может быть связан с несколькими механизмами, среди которых способность лактобактерий активировать TLR2, локализованный на мембране клеток кишечного эпителия. Защитную роль пробиотиков объясняют также ингибированием p38 MAPK — Ser/Thr киназы, участвующей в усилении воспалительного ответа.

Частым осложнением химиотерапии при онкологических заболеваниях являются интестинальные отеки, отражающие повреждение всех отделов желудочно-кишечного тракта. В большей степени это касается тонкой кишки, но могут быть повреждены также пищевод, желудок и толстая кишка. Причина интестинального отека вследствие химиотерапии связана с нарушением проницаемости гастроинтестинального барьера из-за токсичного действия лекарственных препаратов на эпителиальные клетки слизистой оболочки кишки. Цитотоксические вещества повреждают круговорот кишечного эпителия, индуцируют слущивание ворсинок и увеличивают время контакта содержимого кишки с криптами. Эти изменения могут лежать в основе часто встречающихся при химиотерапии симптомов желудочно-кишечных расстройств — диареи и абдоминальных болей.

Использование ряда лекарственных препаратов (ингибиторов протонной помпы (ИПП), антибиотиков) при лечении хронических заболеваний желудочно-кишечного тракта дает ряд побочных эффектов, среди которых ассоциированный с ИПП дисбиоз и/или диарея, ассоциированная с антибиотиками. Количественное и качественное изменение микрофлоры толстой кишки (дисбиоз) при данных состояниях сопровождается выраженным воспалением и повышением проницаемости кишечной стенки. Поэтому при длительной пероральной терапии ИПП, как и при приеме антибиотиков, своевременное определение биомаркеров кишечной стабильности, среди которых существенное значение принадлежит неинвазивному методу оценки фекального зонулина, поможет прогнозировать риск развития грозных желудочно-кишечных осложнений [32, 167, 168].

Обсуждается применение специфического ингибитора зонулина ларазотида ацетата при целиакии [169]. Однако необходима доказательная база эффективности и безопасности этого препарата, т.е. имеются основания для проведения масштабных клинических исследований. Совсем недавно S. Di Micco и соавт. (2021) выявили, что фермент нового коронавируса 3CLpro, или основная протеаза (Mpro), играющая важную роль в репликации вируса, может служить мишенью для разработки антивирусных препаратов [170]. В результате поиска возможных путей влияния на вирус выяснилось, что ингибитор зонулина октапептид АТ 1001, или ларазотид ацетат, связывает каталитический домен (Mpro). Авторы провели исследование по выявлению антивирусной активности АТ 1001 и его производных и показали, что это может стать основой для разработки антивирусных препаратов нового поколения.

Заключение

Зонулин, человеческий гомолог холерного токсина Zot, играет ключевую роль в регуляции проницаемости кишечного барьера, модулируя и ослабляя прочность межклеточных TJ. Он, по-видимому, участвует в патогенезе многих воспалительных и аутоиммунных заболеваний не только кишечника, но и ряда других органов и тканей. В этой связи в последнее время зонулин рассматривают и активно изучают в качестве маркера кишечной проницаемости при различных заболеваниях. Вместе с тем данные литературы о клиническом значении зонулина при гастроинтестинальных заболеваниях и симптомах неоднозначны. По мнению ряда авторов, зонулин следует рассматривать в большей степени как маркер метаболических нарушений, чем как маркер кишечной проницаемости. В любом случае, определение зонулина в сыворотке крови и других биологических средах является полезным инструментом для диагностики, мониторинга, а возможно, и коррекции патологических процессов, связанных с нарушениями кишечной проницаемости, что должно быть изучено в дальнейшем.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Allaire JM, Crowley SM, Law HT, Chang SY, Ko HJ, Vallance BA. The intestinal epithelium: central Coordinator of Mucosal Immunity. Trends in Immunology. 2018;39(9):677-696.  https://doi.org/10.1016/j.it.2018.04.002
  2. Serek P, Oleksy-Wawrzyniak M. The Effect of Bacterial Infections, Probiotics and Zonulin on Intestinal Barrier Integrity. International Journal of Molecular Sciences. 2021;22(21):11359. https://doi.org/10.3390/ijms222111359
  3. Fasano A. Zonulin and its regulation of intestinal barrier function: the biological door to inflammation, autoimmunity, and cancer. Physiological Reviews. 2011;91(1):151-175.  https://doi.org/10.1152/physrev.00003.2008
  4. Хавкин А.И., Богданова Н.М., Новикова В.П. Биологическая роль зонулина и эффективность его использования в качестве биомаркера синдрома повышенной кишечной проницаемости. Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2021;66:(1):31-38.  https://doi.org/10.21508/1027-4065-2021-66-1-31-38
  5. Marafini I, Monteleone I, Di Fusco D, Cupi ML, Paoluzi OA, Colantoni A, Ortenzi A, Izzo R, Vita S, De Luca E, Sica G, Pallone F, Monteleone G. TNF-a Producing Innate Lymphoid Cells (ILCs) Are Increased in Active Celiac Disease and Contribute to Promote Intestinal Atrophy in Mice. PLoS One. 2015;10(5):e0126291. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0126291
  6. Bergmann KR, Liu SX, Tian R, Kushnir A, Turner JR, Li HL, Chou PM, Weber CR, De Plaen IG. Bifidobacteria stabilize claudins at tight junctions and prevent intestinal barrier dysfunction in mouse necrotizing enterocolitis. The American Journal of Pathology. 2013;182(5):1595-1606. https://doi.org/10.1016/j.ajpath.2013.01.013
  7. Ling X, Linglong P, Weixia D, Hong W. Protective Effects of Bifidobacterium on Intestinal Barrier Function in LPS Induced Enterocyte Barrier Injury of Caco-2 Monolayers and in a Rat NEC Model. PLoS One. 2016;11(8):e0161635. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0161635
  8. Fasano A, Not T, Wang W, Uzzau S, Berti I, Tommasini A, Goldblum SE. Zonulin, a newly discovered modulator of intestinal permeability, and its expression in coeliac disease. Lancet. 2000;355(9214):1518-1519. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(00)02169-3
  9. Drago S, El Asmar R, Di Pierro M, Grazia Clemente M, Tripathi A, Sapone A, Thakar M, Iacono G, Carroccio A, D’Agate C, Not T, Zampini L, Catassi C, Fasano A. Gliadin, zonulin and gut permeability: Effects on celiac and non-celiac intestinal mucosa and intestinal cell lines. Scandinavian Journal of Gastroenterology. 2006;41(4):408-419.  https://doi.org/10.1080/00365520500235334
  10. Hollon J, Puppa EL, Greenwald B, Goldberg E, Guerrerio A, Fasano A. Effect of gliadin on permeability of intestinal biopsy explants from celiac disease patients and patients with non-celiac gluten sensitivity. Nutrients. 2015;7(3):1565-1576. https://doi.org/10.3390/nu7031565
  11. Mooradian AD, Morley JE, Levine AS, Prigge WF, Gebhard RL. Abnormal intestinal permeability to sugars in diabetes mellitus. Diabetologia. 1986;29(4):221-224.  https://doi.org/10.1007/BF00454879
  12. Sapone A, de Magistris L, Pietzak M, Clemente MG, Tripathi A, Cucca F, Lampis R, Kryszak D, Cartenì M, Generoso M, Iafusco D, Prisco F, Laghi F, Riegler G, Carratu R, Counts D, Fasano A. Zonulin upregulation is associated with increased gut permeability in subjects with type 1 diabetes and their relatives. Diabetes. 2006;55(5):1443-1449. https://doi.org/10.2337/db05-1593
  13. Lin R, Zhou L, Zhang J, Wang B. Abnormal intestinal permeability and microbiota in patients with autoimmune hepatitis. International Journal of Clinical and Experimental Pathology. 2015;8(5):5153-5160.
  14. Pavón EJ, Muñoz P, Lario A, Longobardo V, Carrascal M, Abián J, Martin AB, Arias SA, Callejas-Rubio JL, Sola R, Navarro-Pelayo F, Raya-Alvarez E, Ortego-Centeno N, Zubiaur M, Sancho J. Proteomic analysis of plasma from patients with systemic lupus erythematosus: Increased presence of haptoglobin α2 polypeptide chains over the α1 isoforms. Proteomics. 2006;6(suppl 1):282-292.  https://doi.org/10.1002/pmic.200500404
  15. Liu J, Zhu P, Peng J, Li K, Du J, Gu J, Ou Y. Identification of disease-associated proteins by proteomic approach in ankylosing spondylitis. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2007;357(2):531-536.  https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2007.03.179
  16. Yacyshyn B, Meddings J, Sadowski D, Bowen-Yacyshyn MB. Multiple sclerosis patients have peripheral blood CD45ROC B cells and increased intestinal permeability. Digestive Diseases and Sciences. 1996;41(12):2493-2498. https://doi.org/10.1007/BF02100148
  17. Nouri M, Bredberg A, Weström B, Lavasani S. Intestinal barrier dysfunction develops at the onset of experimental autoimmune encephalomyelitis, and can be induced by adoptive transfer of auto-reactive T cells. PLoS One. 2014;9(9):e106335. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0106335
  18. Mielants H, De Vos M, Goemaere S, Schelstraete K, Cuvelier C, Goethals K, Maertens M, Ackerman C, Veys EM. Intestinal mucosal permeability in inflammatory rheumatic diseases. II. Role of disease. The Journal of Rheumatology. 1991;18(3):394-400. 
  19. Moreno-Navarrete JM, Sabater M, Ortega F, Ricart W, Fernández-Real JM. Circulating zonulin, a marker of intestinal permeability, is increased in association with obesity-associated insulin resistance. PLoS One. 2012;7(5):e37160. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0037160
  20. Zak-Gołąb A, Kocełak P, Aptekorz M, Zientara M, Juszczyk L, Martirosian G, Chudek J, Olszanecka-Glinianowicz M. Gut microbiota, microinflammation, metabolic profile, and zonulin concentration in obese and normal weight subjects. International Journal of Endocrinology. 2013;2013:674106. https://doi.org/10.1155/2013/674106
  21. Pacifico L, Bonci E, Marandola L, Romaggioli S, Bascetta S, Chiesa C. Increased circulating zonulin in children with biopsy-proven nonalcoholic fatty liver disease. World Journal of Gastroenterology. 2014;20(45):17107-17114. https://doi.org/10.3748/wjg.v20.i45.17107
  22. Jayashree B, Bibin YS, Prabhu D, Shanthirani CS, Gokulakrishnan K, Lakshmi BS, Mohan V, Balasubramanyam M. Increased circulatory levels of lipopolysaccharide (LPS) and zonulin signify novel biomarkers of proinflammation in patients with type 2 diabetes. Molecular and Cellular Biochemistry. 2014;388(1-2):203-210.  https://doi.org/10.1007/s11010-013-1911-4
  23. Zhang D, Zhang L, Zheng Y, Yue F, Russell RD, Zeng Y. Circulating zonulin levels in newly diagnosed Chinese type 2 diabetes patients. Diabetes Research and Clinical Practice. 2014;106(2):312-318.  https://doi.org/10.1016/j.diabres.2014.08.017
  24. Diamanti-Kandarakis E, Kandarakis H, Legro RS. The role of genes and environment in the etiology of PCOS. Endocrine. 2006; 30(1):19-26.  https://doi.org/10.1385/ENDO:30:1:19
  25. Zhang D, Zhang L, Yue F, Zheng Y, Russell R. Serum zonulin is elevated in women with polycystic ovary syndrome and correlates with insulin resistance and severity of anovulation. European Journal of Endocrinology. 2015;172(1):29-36.  https://doi.org/10.1530/EJE-14-0589
  26. Rittirsch D, Flierl MA, Nadeau BA, Day DE, Huber-Lang MS, Grailer JJ, Zetoune FS, Andjelkovic AV, Fasano A, Ward PA. Zonulin as prehaptoglobin2 regulates lung permeability and activates the complement system. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology. 2013;304(12):863-872.  https://doi.org/10.1152/ajplung.00196.2012
  27. Hijazi Z, Molla AM, Al-Habashi H, Muawad WM, Molla AM, Sharma PN. Intestinal permeability is increased in bronchial asthma. Archives of Disease in Childhood. 2004;89(3):227-229.  https://doi.org/10.1136/adc.2003.027680
  28. Li C, Gao M, Zhang W, Chen C, Zhou F, Hu Z, Zeng C. Zonulin Regulates Intestinal Permeability and Facilitates Enteric Bacteria Permeation in Coronary Artery Disease. Scientific Reports. 2016;6:29142. https://doi.org/10.1038/srep29142
  29. Klaus DA, Motal MC, Burger-Klepp U, Marschalek C, Schmidt EM, Lebherz-Eichinger D, Krenn CG, Roth GA. Increased plasma zonulin in patients with sepsis. Biochemia Medica. 2013;23(1):107-111.  https://doi.org/10.11613/BM.2013.013
  30. Hunt PW, Sinclair E, Rodriguez B, Shive C, Clagett B, Funderburg N, Robinson J, Huang Y, Epling L, Martin JN, Deeks SG, Meinert CL, Van Natta ML, Jabs DA, Lederman MM. Gut epithelial barrier dysfunction and innate immune activation predict mortality in treated HIV infection. The Journal of Infectious Diseases. 2014;210(8):1228-1238. https://doi.org/10.1093/infdis/jiu238
  31. Serrano-Villar S, Sainz T, Ma ZM, Utay NS, Chun TW, Mann S, Kashuba AD, Siewe B, Albanese A, Troia-Cancio P, Sinclair E, Somasunderam A, Yotter T, Deeks SG, Landay A, Pollard RB, Miller CJ, Moreno S, Asmuth DM. Effects of Combined CCR5/Integrase Inhibitors-Based Regimen on Mucosal Immunity in HIV Infected Patients Naive to Antiretroviral Therapy: A Pilot Randomized Trial. PLoS Pathogens. 2016;12(3):e1005540. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1005540
  32. Guerrant RL, Leite AM, Pinkerton R, Medeiros PH, Cavalcante PA, DeBoer M. Biomarkers of Environmental Enteropathy, Inflammation, Stunting, and Impaired Growth in Northeast Brazil. PLoS One. 2016;11(9):e0158772. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0158772
  33. D’Eufemia P, Celli M, Finocchiaro R, Pacifico L, Viozzi L, Zaccagnini M, Cardi E, Giardini O. Abnormal intestinal permeability in children with autism. Acta Paediatrica. 1996;85(9):1076-1079. https://doi.org/10.1111/j.1651-2227.1996.tb14220.x
  34. Fasano A. Zonulin, regulation of tight junctions, and autoimmune diseases. Annals of the New York Academy of Sciences. 2012; 1258(1):25-33.  https://doi.org/10.1111/j.1749-6632.2012.06538.x
  35. El Asmar R, Panigrahi P, Bamford P, Berti I, Not T, Coppa GV, Catassi C, Fasano A. Host-dependent zonulin secretion causes the impairment of the small intestine barrier function after bacterial exposure. Gastroenterology. 2002;123(5):1607-1615. https://doi.org/10.1053/gast.2002.36578
  36. Keita ÅV, Söderholm JD. The intestinal barrier and its regulation by neuroimmune factors. Neurogastroenterology and Motility. 2010;22(7):718-733.  https://doi.org/10.1111/j.1365-2982.2010.01498.x
  37. Buckley A, Turner JR. Cell Biology of Tight Junction Barrier Regulation and Mucosal Disease. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 2018;10(1):a029314. https://doi.org/10.1101/cshperspect.a029314
  38. Anderson JM, Van Itallie CM. Physiology and function of the tight junction. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 2009; 1(2):a002584. https://doi.org/10.1101/cshperspect.a002584
  39. Farquhar MG, Palade GE. Junctional complexes in various epithelia. The Journal of Cell Biology. 1963;17(2):375-412.  https://doi.org/10.1083/jcb.17.2.375
  40. Furuse M, Fujita K, Hiiragi T, Fujimoto K, Tsukita S. Claudin-1 and -2: novel integral membrane proteins localizing at tight junctions with no sequence similarity to occludin. The Journal of Cell Biology. 1998;141(7):1539-1550. https://doi.org/10.1083/jcb.141.7.1539
  41. Günzel D, Fromm M. Claudins and other tight junction proteins. Comprehensive Physiology. 2012;2(3):1819-1852. https://doi.org/10.1002/cphy.c110045
  42. Van Itallie CM, Anderson JM. Architecture of tight junctions and principles of molecular composition. Seminars in Cell and Developmental Biology. 2014;36:157-165.  https://doi.org/10.1016/j.semcdb.2014.08.011
  43. Shen L, Weber CR, Raleigh DR, Yu D, Turner JR. Tight junction pore and leak pathways: a dynamic duo. Annual Review of Physiology. 2011;73:283-309.  https://doi.org/10.1146/annurev-physiol-012110-142150
  44. Cong X, Kong W. Endothelial tight junctions and their regulatory signaling pathways in vascular homeostasis and disease. Cellular Signalling. 2020;66:109485. https://doi.org/10.1016/j.cellsig.2019.109485
  45. Suzuki T. Regulation of the intestinal barrier by nutrients: the role of tight junctions. Animal Science Journal. 2020;91(1):e13357. https://doi.org/10.1111/asj.13357
  46. Furuse M, Hirase T, Itoh M, Nagafuchi A, Yonemura S, Tsukita S, Tsukita S. Occludin: a novel integral membrane protein localizing at tight junctions. The Journal of Cell Biology. 1993;123(6 Pt 2):1777-1788. https://doi.org/10.1083/jcb.123.6.1777
  47. Wong V. Phosphorylation of occludin correlates with occludin localization and function at the tight junction. The American Journal of Physiology. 1997;273(6):1859-1867. https://doi.org/10.1152/ajpcell.1997.273.6.c1859
  48. Martìn-Padura I, Lostaglio S, Schneemann M, Williams L, Romano M, Fruscella P, Panzeri C, Stoppacciaro A, Ruco L, Villa A, Simmons D, Dejana E. Junctional adhesion molecule, a novel member of the immunoglobulin superfamily that distributes at intercellular junctions and modulates monocyte transmigration. The Journal of Cell Biology. 1998;142(1):117-127.  https://doi.org/10.1083/jcb.142.1.117
  49. Ikenouchi J, Umeda K, Tsukita S, Furuse M, Tsukita S. Requirement of ZO1 for the formation of belt-like adherens junctions during epithelial cell polarization. The Journal of Cell Biology. 2007; 176(6):779-786.  https://doi.org/10.1083/jcb.200612080
  50. Higashi T, Tokuda S, Kitajiri S, Masuda S, Nakamura H, Oda Y, Furuse M. Analysis of the ‘angulin’ proteins LSR, ILDR1 and ILDR2-tricellulin recruitment, epithelial barrier function and implication in deafness pathogenesis. Journal of Cell Science. 2013;126(Pt 4): 966-977.  https://doi.org/10.1242/jcs.116442
  51. Umeda K, Ikenouchi J, Katahira-Tayama S, Furuse K, Sasaki H, Nakayama M, Matsui T, Tsukita S, Furuse M, Tsukita S. ZO-1 and ZO-2 independently determine where claudins are polymerized in tight-junction strand formation. Cell. 2006;126(4):741-754.  https://doi.org/10.1016/j.cell.2006.06.043
  52. González-Mariscal L, Gallego-Gutiérrez H, González-González L, Hernández-Guzmán Ch. ZO-2 Is a Master Regulator of Gene Expression, Cell Proliferation, Cytoarchitecture, and Cell Size. International Journal of Molecular Sciences. 2019;20(17):4128. https://doi.org/10.3390/ijms20174128
  53. González-Mariscal L, Posadas Y, Miranda J, Uc PY, Ortega-Olvera JM, Hernández S. Strategies that Target Tight Junctions for Enhanced Drug Delivery. Current Pharmaceutical Design. 2016;22(35):5313-5346. https://doi.org/10.2174/1381612822666160720163656
  54. González-Mariscal L, Quirós M, Díaz-Coránguez M. ZO proteins and redox-dependent processes. Antioxidants and Redox Signaling. 2011;15(5):1235-1253. https://doi.org/10.1089/ars.2011.3913
  55. Jesaitis LA, Goodenough DA. Molecular characterization and tissue distribution of ZO-2, a tight junction protein homologous to ZO-1 and the Drosophila discs-large tumor suppressor protein. The Journal of Cell Biology. 1994;124(6):949-961.  https://doi.org/10.1083/jcb.124.6.949
  56. Itoh M, Morita K, Tsukita S. Characterization of ZO-2 as a MAGUK family member associated with tight as well as adherens junctions with a binding affinity to occludin and α catenin. The Journal of Biological Chemistry. 1999;274(9):5981-5986. https://doi.org/10.1074/jbc.274.9.5981
  57. Fanning AS, Jameson BJ, Jesaitis LA, Anderson JM. The tight junction protein ZO-1 establishes a link between the transmembrane protein occludin and the actin cytoskeleton. The Journal of Biological Chemistry. 1998;273(45):29745-29753. https://doi.org/10.1074/jbc.273.45.29745
  58. Fanning AS, Ma TY, Anderson JM. Isolation and functional characterization of the actin binding region in the tight junction protein ZO-1. FASEB Journal. 2002;16(13):1835-1837. https://doi.org/10.1096/fj.02-0121fje
  59. Cordenonsi M, D’Atri F, Hammar E, Parry DA, Kendrick-Jones J, Shore D, Citi S. Cingulin contains globular and coiled-coil domains and interacts with ZO-1, ZO-2, ZO-3, and myosin. The Journal of Cell Biology. 1999;147(7):1569-1582. https://doi.org/10.1083/jcb.147.7.1569
  60. Citi S, Paschoud S, Pulimeno P, Timolati F, De Robertis F, Jond L, Guillemot L. The tight junction protein cingulin regulates gene expression and rhoA signaling. Annals of the New York Academy of Sciences. 2009;1165:88-98.  https://doi.org/10.1111/j.1749-6632.2009.04053.x
  61. Cario E, Gerken G, Podolsky DK. Toll-like receptor 2 enhances ZO-1-associated intestinal epithelial barrier integrity via protein kinase C. Gastroenterology. 2004;127(1):224-238.  https://doi.org/10.1053/j.gastro.2004.04.015
  62. Shinto O, Yashiro M, Kawajiri H, Shimizu K, Shimizu T, Miwa A, Hirakawa K. Inhibitory effect of a TGFbeta receptor type-I inhibitor, Ki26894, on invasiveness of scirrhous gastric cancer cells. British Journal of Cancer. 2010;102(5):844-851.  https://doi.org/10.1038/sj.bjc.6605561
  63. Doi Y, Yashiro M, Yamada N, Amano R, Noda S, Hirakawa K. VEGF-A/VEGFR-2 signaling plays an important role for the motility of pancreas cancer cells. Annals of Surgical Oncology. 2012; 19(8):2733-2743. https://doi.org/10.1245/s10434-011-2181-6
  64. Pálmer HG, González-Sancho JM, Espada J, Berciano MT, Puig I, Baulida J, Quintanilla M, Cano A, de Herreros AG, Lafarga M, Muñoz A. Vitamin D(3) promotes the differentiation of colon carcinoma cells by the induction of E-cadherin and the inhibition of beta-catenin signaling. The Journal of Cell Biology. 2001;154(2):369-387.  https://doi.org/10.1083/jcb.200102028
  65. Hernández-Monge J, Garay E, Raya-Sandino A, Vargas-Sierra O, Díaz-Chávez J, Popoca-Cuaya M, Lambert PF, González-Mariscal L, Gariglio P. Papillomavirus E6 oncoprotein up-regulates occludin and ZO-2 expression in ovariectomized mice epidermis. Experimental Cell Research. 2013;319(17):2588-2603. https://doi.org/10.1016/j.yexcr.2013.07.028
  66. Kim S, Coulombe PA. Emerging role for the cytoskeleton as an organizer and regulator of translation. Nature Reviews. Molecular Cell Biology. 2010;11(1):75-81.  https://doi.org/10.1038/nrm2818
  67. Suarez C, Kovar DR. Internetwork competition for monomers governs actin cytoskeleton organization. Nature Reviews. Molecular Cell Biology. 2016;17(12):799-810.  https://doi.org/10.1038/nrm.2016.106
  68. Al-Sadi RM, Ma TY. IL-1β Causes an Increase in Intestinal Epithelial Tight Junction Permeability. Journal of Immunology. 2007; 178(7):4641-4649. https://doi.org/10.4049/jimmunol.178.7.4641
  69. Turner JR. Intestinal mucosal barrier function in health and disease. Nature Reviews. Immunology. 2009;9(11):799-809.  https://doi.org/10.1038/nri2653
  70. Schwayer C, Shamipour S, Pranjic-Ferscha K, Schauer A, Balda M, Tada M, Matter K, Heisenberg CP. Mechanosensation of tight junctions depends on ZO-1 phase separation and flow. Cell. 2019;179(4):937-952.e18.  https://doi.org/10.1016/j.cell.2019.10.006
  71. Mahapatro M, Erkert L, Becker C. Cytokine-Mediated Crosstalk between Immune Cells and Epithelial Cells in the Gut. Cells. 2021;10(1):111.  https://doi.org/10.3390/cells10010111
  72. Watts T, Berti I, Sapone A, Gerarduzzi T, Not T, Zielke R, Fasano A. Role of the intestinal tight junction modulator zonulin in the pathogenesis of type I diabetes in BB diabetic-prone rats. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2005;102(8):2916-2921. https://doi.org/10.1073/pnas.0500178102
  73. Rathinam VA, Chan FK-M. Inflammasome, Inflammation, and Tissue Homeostasis. Trends in Molecular Medicine. 2018;24(3):304-318.  https://doi.org/10.1016/j.molmed.2018.01.004
  74. Noth R, Stüber E, Häsler R, Nikolaus S, Kühbacher T, Hampe J, Bewig B, Schreiber S, Arlt A. Anti-TNF-a antibodies improve intestinal barrier function in Crohn’s disease. Journal of Crohn’s and Colitis. 2012;6(4):464-469.  https://doi.org/10.1016/j.crohns.2011.10.004
  75. Brown GR, Lindberg G, Meddings J, Silva M, Beutler B, Thiele D. Tumor necrosis factor inhibitor ameliorates murine intestinal graft-vs.-host disease. Gastroenterology. 1999;116(3):593-601.  https://doi.org/10.1016/S0016-5085(99)70181-2
  76. Shen L, Black ED, Witkowski ED, Lencer WI, Guerriero V, Schneeberger EE, Turner JR. Myosin light chain phosphorylation regulates barrier function by remodeling tight junction structure. Journal of Cell Science. 2006;119(Pt 10):2095-2106. https://doi.org/10.1242/jcs.02915
  77. Su L, Shen L, Clayburgh DR, Nalle SC, Sullivan EA, Meddings JB, Abraham C, Turner JR. Targeted epithelial tight junction dysfunction causes immune activation and contributes to development of experimental colitis. Gastroenterology. 2009;136(2):551-563.  https://doi.org/10.1053/j.gastro.2008.10.081
  78. Bruewer M, Utech M, Ivanov AI, Hopkins AM, Parkos CA, Nusrat A. Interferon-gamma induces internalization of epithelial tight junction proteins via a macropinocytosis-like process. FASEB Journal. 2005;19(8):923-933.  https://doi.org/10.1096/fj.04-3260com
  79. Palomo J, Dietrich D, Martin P, Palmer G, Gabay C. The interleukin (IL)-1 cytokine family — Balance between agonists and antagonists in inflammatory diseases. Cytokine. 2015;76(1):25-37.  https://doi.org/10.1016/j.cyto.2015.06.017
  80. Nowarski R, Jackson R, Gagliani N, de Zoete MR, Palm NW, Bailis W, Low JS, Harman CC, Graham M, Elinav E, Flavell RA. Epithelial IL-18 Equilibrium Controls Barrier Function in Colitis. Cell. 2015;163(6):1444-1456. https://doi.org/10.1016/j.cell.2015.10.072
  81. Harrison OJ, Srinivasan N, Pott J, Schiering C, Krausgruber T, Ilott NE, Maloy KJ. Epithelial-derived IL-18 regulates Th17 cell differentiation and Foxp3+ Treg cell function in the intestine. Mucosal Immunology. 2015;8(6):1226-1236. https://doi.org/10.1038/mi.2015.13
  82. Shohan M, Dehghani R, Khodadadi A, Dehnavi S, Ahmadi R, Joudaki N, Houshmandfar S, Shamshiri M, Shojapourian S, Bagheri N. Interleukin-22 and intestinal homeostasis: Protective or destructive? IUBMB Life. 2020;72(8):1585-1602. https://doi.org/10.1002/iub.2295
  83. Zheng Y, Danilenko DM, Valdez P, Kasman I, Eastham-Anderson J, Wu J, Ouyang W. Interleukin-22, a TH17 cytokine, mediates IL-23-induced dermal inflammation and acanthosis. Nature. 2006;445(7128):648-651.  https://doi.org/10.1038/nature05505
  84. Satoh-Takayama N, Vosshenrich CA, Lesjean-Pottier S, Sawa S, Lochner M, Rattis F, Mention JJ, Thiam K, Cerf-Bensussan N, Mandelboim O, Eberl G, Di Santo JP. Microbial Flora Drives Interleukin 22 Production in Intestinal NKp46+ Cells that Provide Innate Mucosal Immune Defense. Immunity. 2008;29(6):958-970.  https://doi.org/10.1016/j.immuni.2008.11.001
  85. Lindemans CA, Calafiore M, Mertelsmann AM, O’Connor MH, Dudakov JA, Jenq RR, Velardi E, Young LF, Smith OM, Lawrence G, Ivanov JA, Fu YY, Takashima S, Hua G, Martin ML, O’Rourke KP, Lo YH, Mokry M, Romera-Hernandez M, Cupedo T, Dow L, Nieuwenhuis EE, Shroyer NF, Liu C, Kolesnick R, van den Brink MRM, Hanash AM. Interleukin-22 promotes intestinal-stem-cell-mediated epithelial regeneration. Nature. 2015; 528(7583):560-564.  https://doi.org/10.1038/nature16460
  86. Zheng Y, Valdez PA, Danilenko DM, Hu Y, Sa SM, Gong Q, Abbas AR, Modrusan Z, Ghilardi N, de Sauvage FJ, Ouyang W. Interleukin-22 mediates early host defense against attaching and effacing bacterial pathogens. Nature Medicine. 2008;14(3):282-289.  https://doi.org/10.1038/nm1720
  87. Cario E, Rosenberg IM, Brandwein SL, Beck PL, Reinecker HC, Podolsky DK. Lipopolysaccharide activates distinct signaling pathways in intestinal epithelial cell lines expressing Toll-like receptors. Journal of Immunology. 2000;164(2):966-972.  https://doi.org/10.4049/jimmunol.164.2.966
  88. Thaiss CA, Levy M, Suez J, Elinav E. The interplay between the innate immune system and the microbiota. Current Opinion in Immunology. 2014;26:41-48.  https://doi.org/10.1016/j.coi.2013.10.016
  89. Frantz AL, Rogier EW, Weber CR, Shen L, Cohen DA, Fenton LA, Bruno ME, Kaetzel CS. Targeted deletion of MyD88 in intestinal epithelial cells results in compromised antibacterial immunity associated with downregulation of polymeric immunoglobulin receptor, mucin-2, and antibacterial peptides. Mucosal Immunology. 2012;5(5):501-512.  https://doi.org/10.1038/mi.2012.23
  90. Bouskra D, Brézillon C, Bérard M, Werts C, Varona R, Boneca IG, Eberl G. Lymphoid tissue genesis induced by commensals through NOD1 regulates intestinal homeostasis. Nature. 2008; 456(7221):507-510.  https://doi.org/10.1038/nature07450
  91. Hartsock A, Nelson WJ. Adherens and tight junctions: structure, function and connections to the actin cytoskeleton. Biochimica et Biophysica Acta. 2008;1778(3):660-669.  https://doi.org/10.1016/j.bbamem.2007.07.012
  92. Holthöfer B, Windoffer R, Troyanovsky S, Leube RE. Structure and function of desmosomes. International Review of Cytology. 2007;264:65-163.  https://doi.org/10.1016/S0074-7696(07)64003-0
  93. Shapiro L, Weis WI. Structure and biochemistry of cadherins and catenins. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 2009; 1(3):a003053. https://doi.org/10.1101/cshperspect.a003053
  94. Ivanov AI, Naydenov NG. Dynamics and regulation of epithelial adherens junctions. Recent discoveries and controversies. International Review of Cell and Molecular Biology. 2013;303:27-99.  https://doi.org/10.1016/B978-0-12-407697-6.00002-7
  95. Nekrasova OE, Amargo EV, Smith WO, Chen J, Kreitzer GE, Green KJ. Desmosomal cadherins utilize distinct kinesins for assembly into desmosomes. The Journal of Cell Biology. 2011;195(7): 1185-1203. https://doi.org/10.1083/jcb.201106057
  96. Hatzfeld M, Keil R, Magin TM. Desmosomes and intermediate filaments: their consequences for tissue mechanics. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 2017;9(6):a029157. https://doi.org/10.1101/cshperspect.a029157
  97. Kong W, McConalogue K, Khitin LM, Hollenberg MD, Payan DG, Böhm SK, Bunnett NW. Luminal trypsin may regulate enterocytes through proteinase-activated receptor 2. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 1997;94(16):8884-8889. https://doi.org/10.1073/pnas.94.16.8884
  98. Darmoul D, Marie JC, Devaud H, Gratio V, Laburthe M. Initiation of human colon cancer cell proliferation by trypsin acting at protease-activated receptor-2. British Journal of Cancer. 2001; 85(5):772-779.  https://doi.org/10.1054/bjoc.2001.1976
  99. Coelho AM, Vergnolle N, Guiard B, Fioramonti J, Bueno L. Proteinases and proteinase-activated receptor 2: a possible role to promote visceral hyperalgesia in rats. Gastroenterology. 2002;122(4): 1035-1047. https://doi.org/10.1053/gast.2002.32387
  100. Chin AC, Vergnolle N, MacNaughton WK, Wallace JL, Hollenberg MD, Buret AG. Proteinase-activated receptor 1 activation induces epithelial apoptosis and increases intestinal permeability. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2003;100(19):11104-11109. https://doi.org/10.1073/pnas.1831452100
  101. Fasano A. All disease begins in the (leaky) gut: role of zonulin-mediated gut permeability in the pathogenesis of some chronic inflammatory diseases. F1000Research. 2020;9:F1000 Faculty Rev-69.  https://doi.org/10.12688/f1000research.20510.1
  102. Krakowiak O, Nowak R. Mikroflora przewodu pokarmowego człowieka — znaczenie, rozwój, modyfikacje. Postępy Fitoterapii. 2015;3:193-200. 
  103. Нарыжный С.Н., Легина О.К. Гаптоглобин как биомаркер. Биомедицинская химия. 2021;67(2):105-118.  https://doi.org/10.18097/PBMC20216702105
  104. Tripathi A, Lammers KM, Goldblum S, Shea-Donohue T, Netzel-Arnett S, Buzza MS, Antalis TM, Vogel SN, Zhao A, Yang S, Arrietta MC, Meddings JB, Fasano A. Identification of human zonulin, a physiological modulator of tight junctions, as prehaptoglobin-2. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2009;106(39):16799-16804. https://doi.org/10.1073/pnas.0906773106
  105. Barmeyer C, Schulzke JD, Fromm M. Claudin-related intestinal diseases. Seminars in Cell and Developmental Biology. 2015;42:30-38.  https://doi.org/10.1016/j.semcdb.2015.05.006
  106. Linsalata M, Riezzo G, D’Attoma B, Clemente C, Orlando A, Russo F. Noninvasive biomarkers of gut barrier function identify two subtypes of patients suffering from diarrhoea predominant-IBS: a case-control study. BMC Gastroenterology. 2018;18(1):167.  https://doi.org/10.1186/s12876-018-0888-6
  107. Zhang YG, Xia Y, Lu R, Sun J. Inflammation and intestinal leakiness in older HIV+individuals with fish oil treatment. Genes and Diseases. 2018;5(3):220-225.  https://doi.org/10.1016/j.gendis.2018.07.001
  108. Pastor L, Langhorst J, Schröder D, Casellas A, Ruffer A, Carrillo J, Urrea V, Massora S, Mandomando I, Blanco J, Naniche D. Different pattern of stool and plasma gastrointestinal damage biomarkers during primary and chronic HIV infection. PLoS One. 2019;14(6):e0218000. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0218000
  109. Ohlsson B, Orho-Melander M, Nilsson PM. Higher Levels of Serum Zonulin May Rather Be Associated with Increased Risk of Obesity and Hyperlipidemia, Than with Gastrointestinal Symptoms or Disease Manifestations. International Journal of Molecular Sciences. 2017;18(3):582.  https://doi.org/10.3390/ijms18030582
  110. Łoniewska B, Węgrzyn D, Adamek K, Kaczmarczyk M, Skonieczna-Żydecka K, Adler G, Jankowska A, Uzar I, Kordek A, Celewicz M, Łoniewski I. The Influence of Maternal-Foetal Parameters on Concentrations of Zonulin and Calprotectin in the Blood and Stool of Healthy Newborns during the First Seven Days of Life. An Observational Prospective Cohort Study. Journal of Clinical Medicine. 2019;8(4):47.  https://doi.org/10.3390/jcm8040473
  111. Scheffler L, Crane A, Heyne HO, Toenjes A, Schleinitz D, Ihling CH, Stumvoll M, Kovacs P, Heiker JT. Widely used commercial ELISA for human Zonulin reacts with Complement C3 rather than pre-Haptoglobin 2. bioRxiv. 2017;157578. https://doi.org/10.1101/157578
  112. Wegh CAM, de Roos NM, Hovenier R, Meijerink J, Besseling-van der Vaart I, van Hemert S, Witteman BJM. Intestinal Permeability Measured by Urinary Sucrose Excretion Correlates with Serum Zonulin and Faecal Calprotectin Concentrations in UC Patients in Remission. Journal of Nutrition and Metabolism. 2019;2019:2472754. https://doi.org/10.1155/2019/2472754
  113. Vojdani A, Vojdani E, Kharrazian D. Fluctuation of zonulin levels in blood vs stability of antibodies. World Journal of Gastroenterology. 2017;23(31):5669-5679. https://doi.org/10.3748/wjg.v23.i31.5669
  114. Clemente MG, De Virgiliis S, Kang JS, Macatagney R, Musu MP, Di Pierro MR, Drago S, Congia M, Fasano A.Early effects of gliadin on enterocyte intracellular signalling involved in intestinal barrier function. Gut. 2003;52(2):218-223.  https://doi.org/10.1136/gut.52.2.218
  115. Thomas KE, Sapone A, Fasano A, Vogel SN. Gliadin stimulation of murine macrophage inflammatory gene expression and intestinal permeability are MyD88-dependent: role of the innate immune response in Celiac disease. Journal of Immunology. 2006;176(4):2512-2521. https://doi.org/10.4049/jimmunol.176.4.2512
  116. Lammers KM, Lu R, Brownley J, Lu B, Gerard C, Thomas K, Rallabhandi P, Shea-Donohue T, Tamiz A, Alkan S, Netzel-Arnett S, Antalis T, Vogel SN, Fasano A. Gliadin induces an increase in intestinal permeability and zonulin release by binding to the chemokine receptor CXCR3. Gastroenterology. 2008;135(1):194-204.e3.  https://doi.org/10.1053/j.gastro.2008.03.023
  117. Valitutti F, Fasano A. Breaking Down Barriers: How Understanding Celiac Disease Pathogenesis Informed the Development of Novel Treatments. Digestive Diseases and Sciences. 2019;64(7):1748-1758. https://doi.org/10.1007/s10620-019-05646-y
  118. Barbaro MR, Cremon C, Wrona D, Fuschi D, Marasco G, Stanghellini V, Barbara G. Non-celiac gluten sensitivity in the context of functional gastrointestinal disorders. Nutrients. 2020;12(12):3735. https://doi.org/10.3390/nu12123735
  119. Barengolts E, Green SJ, Chlipala GE, Layden BT, Eisenberg Y, Priyadarshini M, Dugas LR. Predictors of Obesity among Gut Microbiota Biomarkers in African American Men with and without Diabetes. Microorganisms. 2019;7(9):E320. https://doi.org/10.3390/microorganisms7090320
  120. Caviglia GP, Dughera F, Ribaldone DG, Rosso C, Abate ML, Pellicano R, Bresso F, Smedile A, Saracco GM, Astegiano M. Serum zonulin in patients with inflammatory bowel disease: a pilot study. Minerva Medica. 2019;110(2):95-100.  https://doi.org/10.23736/S0026-4806.18.05787-7
  121. Tatucu-Babet OA, Forsyth A, Owen E, Navarro-Perez D, Radcliffe J, Benheim D, Mendis H, Jois M, Itsiopoulos C, Tierney AC. Serum zonulin measured by enzyme-linked immunosorbent assay may not be a reliable marker of small intestinal permeability in healthy adults. Nutrition Research. 2020;78:82-92.  https://doi.org/10.1016/j.nutres.2020.05.003
  122. Mörkl S, Lackner S, Meinitzer A, Mangge H, Lehofer M, Halwachs B, Gorkiewicz G, Kashofer K, Painold A, Holl AK, Bengesser SA, Müller W, Holzer P, Holasek SJ. Affiliations expand: Gut microbiota, dietary intakes and intestinal permeability reflected by serum zonulin in women. European Journal of Nutrition. 2018;57(8):2985-2997. https://doi.org/10.1007/s00394-018-1784-0
  123. Sánchez-Alcoholado L, Ordóñez R, Otero A, Plaza-Andrade I, Laborda-Illanes A, Medina JA, Ramos-Molina B, Gómez-Millán J, Queipo-Ortuño MI. Gut Microbiota-Mediated Inflammation and Gut Permeability in Patients with Obesity and Colorectal Cancer. International Journal of Molecular Sciences. 2020;21(18):6782. https://doi.org/10.3390/ijms21186782
  124. Stenman LK, Lehtinen MJ, Meland N, Christensen JE, Yeung N, Saarinen MT, Courtney M, Burcelin R, Lähdeaho ML, Linros J, Apter D, Scheinin M, Kloster Smerud H, Rissanen A, Lahtinen S. Probiotic With or Without Fiber Controls Body Fat Mass, Associated With Serum Zonulin, in Overweight and Obese Adults-Randomized Controlled Trial. EBioMedicine. 2016;13:190-200.  https://doi.org/10.1016/j.ebiom.2016.10.036
  125. Kim AS, Ko HJ. Plasma concentrations of zonulin are elevated in obese men with fatty liver disease. Diabetes, Metabolic Syndrome and Obesity. 2018;11:149-157.  https://doi.org/10.2147/DMSO.S163062
  126. Комарова О.Н., Хавкин А.И. Взаимосвязь стресса, иммунитета и кишечной микробиоты. Педиатрическая фармакология. 2020;17(1):18-24.  https://doi.org/10.15690/pf.v17i1.2078
  127. Dhillon AK, Kummen M, Trøseid M, Åkra S, Liaskou E, Moum B, Vesterhus M, Karlsen TH, Seljeflot I, Hov JR. Circulating markers of gut barrier function associated with disease severity in primary sclerosing cholangitis. Liver International. 2019;39(2):371-381.  https://doi.org/10.1111/liv.13979
  128. Camara-Lemarroy CR, Silva C, Greenfield J, Liu WQ, Metz LM, Yong VW. Biomarkers of intestinal barrier function in multiple sclerosis are associated with disease activity. Multiple Sclerosis. 2020;(11):1340-1350. https://doi.org/10.1177/1352458519863133
  129. Tsui FW, Tsui HW, Akram A, Haroon N, Inman RD. The genetic basis of ankylosing spondylitis: New insights into disease pathogenesis. The Application of Clinical Genetics. 2014;7:105-115.  https://doi.org/10.2147/TACG.S37325
  130. Costello ME, Ciccia F, Willner D, Warrington N, Robinson PC, Gardiner B, Marshall M, Kenna TJ, Triolo G, Brown MA. Brief report: Intestinal dysbiosis in ankylosing spondylitis. Arthritis and Rheumatology. 2015;67(3):686-691.  https://doi.org/10.1002/art.38967
  131. Taurog JD, Chhabra A, Colbert RA. Ankylosing spondylitis and axial spondyloarthritis. The New England Journal of Medicine. 2016; 374(26):2563-2574. https://doi.org/10.1056/NEJMra1406182
  132. Fröhlich E, Wahl R. Microbiota and thyroid interaction in health and disease. Trends in Endocrinology and Metabolism: TEM. 2019; 30(8):479-490.  https://doi.org/10.1016/j.tem.2019.05.008
  133. Hiromatsu Y, Satoh H, Amino N. Hashimoto’s thyroiditis: History and future outlook. Hormones. 2013;12(1):12-18.  https://doi.org/10.1007/BF03401282
  134. Caturegli P, De Remigis A, Rose NR. Hashimoto thyroiditis: Clinical and diagnostic criteria. Autoimmunity Reviews. 2014;13(4-5): 391-397.  https://doi.org/10.1016/j.autrev.2014.01.007
  135. Cayres LCF, de Salis LVV, Rodrigues GSP, Lengert AVH, Biondi APC, Sargentini LDB, Brisotti JL, Gomes E, de Oliveira GLV. Detection of Alterations in the Gut Microbiota and Intestinal Permeability in Patients with Hashimoto Thyroiditis. Frontiers in Immunology. 2021;12:579140. https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.579140
  136. Morshed SA, Latif R, Davies TF. Delineating the autoimmune mechanisms in Graves’ disease. Immunologic Research. 2012;54(1-3):191-203.  https://doi.org/10.1007/s12026-012-8312-8
  137. Subekti I, Pramono LA. Current diagnosis and management of Graves’ disease. Acta Medica indonesiana. 2018;50(2):177-182. 
  138. Cereijido M, Contreras RG, Flores-Benítez D, Flores-Maldonado C, Larre I, Ruiz A, Shoshani L. New diseases derived or associated with the tight junction. Archives of Medical Research. 2007;38(5):465-478.  https://doi.org/10.1016/j.arcmed.2007.02.003
  139. König J, Wells J, Cani PD, García-Ródenas CL, MacDonald T, Mercenier A, Whyte J, Troost F, Brummer RJ. Human intestinal barrier function in health and disease. Clinical and Translational Gastroenterology. 2016;7(10):e196. https://doi.org/10.1038/ctg.2016.54
  140. Pyzik A, Grywalska E, Matyjaszek-Matuszek B, Roli´nski J. Immune disorders in Hashimoto’s thyroiditis: What do we know so far? Journal of Immunology Research. 2015;2015:979167. https://doi.org/10.1155/2015/979167
  141. Mormile R. Celiac disease and Hashimoto’s thyroiditis: A shared plot? International Journal of Colorectal Disease. 2016;31(4):947.  https://doi.org/10.1007/s00384-015-2370-z
  142. Caio G, Riegler G, Patturelli M, Facchiano A, Magistris L, Sapone A. Pathophysiology of non-celiac gluten sensitivity: Where are we now? Minerva Gastroenterologica e Dietologica. 2017;63(1): 16-21.  https://doi.org/10.23736/S1121-421X.16.02346-1
  143. Wu M, Wu Y, Deng B, Li J, Cao H, Qu Y, Qian X, Zhong G. Isoliquiritigenin decreases the incidence of colitis-associated colorectal cancer by modulating the intestinal microbiota. Oncotarget. 2016;7(51):85318-85331. https://doi.org/10.18632/oncotarget.13347
  144. Al-Ayadhi L, Zayed N, Bhat RS, Moubayed NMS, Al-Muammar MN, El-Ansary A. The use of biomarkers associated with leaky gut as a diagnostic tool for early intervention in autism spectrum disorder: a systematic review. Gut Pathogens. 2021;13(1):54.  https://doi.org/10.1186/s13099-021-00448-y
  145. Dumitrescu L, Marta D, Dănău A, Lefter A, Tulbă D, Cozma L, Manole E, Gherghiceanu M, Ceafalan LC, Popescu BO. Serum and Fecal Markers of Intestinal Inflammation and Intestinal Barrier Permeability Are Elevated in Parkinson’s Disease. Frontiers in Neuroscience. 2021;15:689723. https://doi.org/10.3389/fnins.2021.689723
  146. Xu G, Strathearn L, Liu B, Bao W. Corrected prevalence of autism spectrum disorder among US children and adolescents. JAMA. 2018;319(5):505.  https://doi.org/10.1001/jama.2018.0001
  147. Baldini F, Hertel J, Sandt E, Thinnes CC, Neuberger-Castillo L, Pavelka L, Betsou F, Krüger R, Thiele I; NCER-PD Consortium. Parkinson’s disease-associated alterations of the gut microbiome predict disease-relevant changes in metabolic functions. BMC Biology. 2020;18(1):62.  https://doi.org/10.1186/s12915-020-00775-7
  148. Lee HS, Lobbestael E, Vermeire S, Sabino J, Cleynen I. Inflammatory bowel disease and Parkinson’s disease: common pathophysiological links. Gut. 2021;70(2):408-417.  https://doi.org/10.1136/gutjnl-2020-322429
  149. Schwiertz A, Spiegel J, Dillmann U, Grundmann D, Bürmann J, Faßbender K, Schäfer KH, Unger MM. Fecal markers of intestinal inflammation and intestinal permeability are elevated in Parkinson’s disease. Parkinsonism and Related Disorders. 2018;50:104-107.  https://doi.org/10.1016/j.parkreldis.2018.02.022
  150. Mulak A, Koszewicz M, Panek-Jeziorna M, Koziorowska-Gawron E, Budrewicz S. Fecal Calprotectin as a Marker of the Gut Immune System Activation Is Elevated in Parkinson’s Disease. Frontiers in Neuroscience. 2019;13:992.  https://doi.org/10.3389/fnins.2019.00992
  151. Houser MC, Chang J, Factor SA, Molho ES, Zabetian CP, Hill-Burns EM, Payami H, Hertzberg VS, Tansey MG. Stool immune profiles evince gastrointestinal inflammation in Parkinson’s disease. Movement Disorders. 2018;33(5):793-804.  https://doi.org/10.1002/mds.27326
  152. Skardelly M, Armbruster FP, Meixensberger J, Hilbig H. Expression of Zonulin, c-kit, and Glial Fibrillary Acidic Protein in Human Gliomas. Translational Oncology. 2009;2(3):117-120.  https://doi.org/10.1593/tlo.09115
  153. Dowling P, O’Driscoll L, Meleady P, Henry M, Roy S, Ballot J, Moriarty M, Crown J, Clynes M. 2-D difference gel electrophoresis of the lung squamous cell carcinoma versus normal sera demonstrates consistent alterations in the levels of ten specific proteins. Electrophoresis. 2007;28(23):4302-4310. https://doi.org/10.1002/elps.200700246
  154. Heo SH, Lee SJ, Ryoo HM, Park JY, Cho JY. Identification of putative serum glycoprotein biomarkers for human lung adenocarcinoma by multilectin affinity chromatography and LC-MS/MS. Proteomics. 2007;7(23):4292-4302. https://doi.org/10.1002/pmic.200700433
  155. Sun ZL, Zhu Y, Wang FQ, Chen R, Peng T, Fan ZN, Xu ZK, Miao Y. Serum proteomic-based analysis of pancreatic carcinoma for the identification of potential cancer biomarkers. Biochimica et Biophysica Acta. 2007;1774(6):764-771.  https://doi.org/10.1016/j.bbapap.2007.04.001
  156. Oh MK, Park HJ, Lee JH, Bae HM, Kim IS. Single chain precursor prohaptoglobin promotes angiogenesis by upregulating expression of vascular endothelial growth factor (VEGF) and VEGF receptor2. FEBS Letters. 2015;589(9):1009-1017. https://doi.org/10.1016/j.febslet.2015.03.006
  157. Hamrita B, Chahed K, Trimeche M, Guillier CL, Hammann P, Chaïeb A, Korbi S, Chouchane L. Proteomics-based identification of alpha1-antitrypsin and haptoglobin precursors as novel serum markers in infiltrating ductal breast carcinomas. Clinica Chimica Acta. 2009;404(2):111-118.  https://doi.org/10.1016/j.cca.2009.03.033
  158. Russo F, Linsalata M, Clemente C, D’Attoma B, Orlando A, Campanella G, Giotta F, Riezzo G. The effects of fluorouracil, epirubicin, and cyclophosphamide (FEC60) on the intestinal barrier function and gut peptides in breast cancer patients: an observational study. BMC Cancer. 2013;13:56.  https://doi.org/10.1186/1471-2407-13-56
  159. Scheffler L, Crane A, Heyne H, Tönjes A, Schleinitz D, Ihling CH, Stumvoll M, Freire R, Fiorentino M, Fasano A, Kovacs P, Heiker JT. Widely Used Commercial ELISA Does Not Detect Precursor of Haptoglobin2, but Recognizes Properdin as a Potential Second Member of the Zonulin Family. Frontiers in Endocrinology. 2018;9:22.  https://doi.org/10.3389/fendo.2018.00022
  160. Ajamian M, Steer D, Rosella G, Gibson PR. Serum zonulin as a marker of intestinal mucosal barrier function: May not be what it seems. PLoS One. 2019;14(1):e0210728. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0210728
  161. Hałasa M, Maciejewska D, Baśkiewicz-Hałasa M, Machaliński B, Safranow K, Stachowska E. Oral Supplementation with Bovine Colostrum Decreases Intestinal Permeability and Stool Concentrations of Zonulin in Athletes. Nutrients. 2017;9(4):370.  https://doi.org/10.3390/nu9040370
  162. Jiang T, Gao X, Wu C, Tian F, Lei Q, Bi J, Xie B, Wang HY, Chen S, Wang X. Apple-Derived Pectin Modulates Gut Microbiota, Improves Gut Barrier Function, and Attenuates Metabolic Endotoxemia in Rats with Diet-Induced Obesity. Nutrients. 2016;8(3):126.  https://doi.org/10.3390/nu8030126
  163. Xiao L, Cui T, Liu S, Chen B, Wang Y, Yang T, Li T, Chen J. Vitamin A supplementation improves the intestinal mucosal barrier and facilitates the expression of tight junction proteins in rats with diarrhea. Nutrition. 2019;57:97-108.  https://doi.org/10.1016/j.nut.2018.06.007
  164. Ramezani Ahmadi A, Sadeghian M, Alipour M, Ahmadi Taheri S, Rahmani S, Abbasnezhad A. The Effects of Probiotic/Synbiotic on Serum Level of Zonulin as a Biomarker of Intestinal Permeability: A Systematic Review and Meta-Analysis. Iranian Journal of Public Health. 2020;49(7):1222-1231. https://doi.org/10.18502/ijph.v49i7.3575
  165. Liu Z, Li C, Huang M, Tong C, Zhang X, Wang L, Peng H, Lan P, Zhang P, Huang N, Peng J, Wu X, Luo Y, Qin H, Kang L, Wang J. Positive regulatory effects of perioperative probiotic treatment on postoperative liver complications after colorectal liver metastases surgery: a double-center and double-blind randomized clinical trial. BMC Gastroenterology. 2015;15:34.  https://doi.org/10.1186/s12876-015-0260-z
  166. Liu ZH, Huang MJ, Zhang XW, Wang L, Huang NQ, Peng H, Lan P, Peng JS, Yang Z, Xia Y, Liu WJ, Yang J, Qin HL, Wang JP. The effects of perioperative probiotic treatment on serum zonulin concentration and subsequent postoperative infectious complications after colorectal cancer surgery: a double-center and double-blind randomized clinical trial. The American Journal of Clinical Nutrition. 2013;97(1):117-126.  https://doi.org/10.3945/ajcn.112.040949
  167. Horvath A, Rainer F, Bashir M, Leber B, Schmerboeck B, Klymiuk I, Groselj-Strele A, Durdevic M, Freedberg DE, Abrams JA, Fickert P, Stiegler P, Stadlbauer V. Biomarkers for oralization during long-term proton pump inhibitor therapy predict survival in cirrhosis. Scientific Reports. 2019;9(1):12000. https://doi.org/10.1038/s41598-019-48352-5
  168. Pietrukaniec M, Migacz M, Żak-Gołąb A, Olszanecka-Glinianowicz M, Chudek J, Duława J, Holecki M. Zonulin Family Peptide Levels in Ascites and Serum in Patients with Liver Cirrhosis: A Preliminary Study. Disease Markers. 2019;2019:2804091. https://doi.org/10.1155/2019/2804091
  169. Khaleghi S, Ju JM, Lamba A, Murray JA. The potential utility of tight junction regulation in celiac disease: Focus on larazotide acetate. Therapeutic Advances in Gastroenterology. 2016;9(1):37-49.  https://doi.org/10.1177/1756283X15616576
  170. Di Micco S, Musella S, Sala M, Scala MC, Andrei G, Snoeck R, Bifulco G, Campiglia P, Fasano A. Peptide Derivatives of the Zonulin Inhibitor Larazotide (AT1001) as Potential AntiSARS-CoV-2: Molecular Modelling, Synthesis and Bioactivity Evaluation. International Journal of Molecular Sciences. 2021; 22(17):9427. https://doi.org/10.3390/ijms22179427

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.